$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Podczas regeneracji kości osteoblasty - komórki kościotwórcze - są rekrutowane do miejsca złamania, gdzie namnażają się i wydzielają osteoid - macierz kolagenową. Po okresie dojrzewania osteoblasty mineralizują osteoid poprzez regulowane odkładanie jonów wapnia i fosforanów, inicjując nową syntezę kości.
Aby określić ilościowo stopień mineralizacji osteoblastów in vitro, należy uzyskać pierwotną zawiesinę osteoblastów w odpowiednich podłożach. Wysiać zawiesinę na wielodołkową płytkę zawierającą porowate krążki substytutów przeszczepu kostnego i inkubować.
Dyski służą jako rusztowanie, umożliwiając adhezję i proliferację komórek.
Zastąp zużyte pożywki świeżymi pożywkami zawierającymi suplementy osteogenne. Inkubować przez dłuższy czas. Suplementy osteogenne stymulują osteoblasty do wytwarzania, a następnie mineralizacji macierzy kolagenowej.
Po utrwaleniu zabarwić zmineralizowaną matrycę roztworem czerwieni alizarynowej S, ARS. ARS, ujemnie naładowany barwnik, wiąże się z dodatnio naładowanymi jonami wapnia w matrycy, tworząc kompleks o czerwonym zabarwieniu. Usuń nadmiar plamy. Zobrazuj płytkę, aby wykryć czerwone złogi wapnia, sugerujące mineralizację osteoblastów.
Następnie dodaj chlorek cetylopirydyniowy, CPC, roztwór. CPC, dodatnio naładowany środek powierzchniowo czynny, w formie micelarnej, łączy się poprzez swoje grupy główne z przeciwnie naładowanym ARS związanym z jonami wapnia w matrycy, ułatwiając ekstrakcję barwnika do roztworu.
Zebrać i odwirować roztwór. Przenieść supernatant zawierający kompleksy barwnika CPC na płytkę wielodołkową i zmierzyć absorbancję za pomocą czytnika mikropłytek.
Absorbancja kompleksów barwnikowych CPC wskazuje na ilość złogów wapnia w matrycy, co jest oszacowaniem stopnia mineralizacji osteoblastów.
Przenieś pobarwione krążki fosforanu beta-trójwapniowego do nowej studzienki i zeskanuj płytki za pomocą skanera płaskiego, aby zarejestrować mineralizację.
Po przechwyceniu obrazu dodaj 250 mikrolitrów 10% roztworu chlorku cetylopirydyniowego i wstrząsaj przez 15 minut, aby wyekstrahować czerwony barwnik S alizaryny. Następnie przenieś roztwór z dołków do pojedynczych 1,5-mililitrowych probówek i odwiruj przy 17 000 razy g przez 5 minut w temperaturze pokojowej.
Rozcieńczyć ekstrakt 10% roztworem chlorku cetylopirydyniowego w stosunku rozcieńczenia 1:10 do 1:20 w probówce o pojemności 1,5 mililitra. Następnie przenieś 300 mikrolitrów każdej rozcieńczonej próbki do dołków 96-dołkowej płytki. Uwzględnij dwie ślepe studzienki zawierające tylko 10% chlorku cetylopirydyniowego.
Następnie przygotuj siedem wzorców referencyjnych czerwieni alizarynowej S w zakresie od 4 do 400 mikromolów, rozcieńczając 40-milimolowy roztwór barwiący czerwień S alizaryny 10% roztworem chlorku cetylopirydyniowego w celu wygenerowania krzywej standardowej.
Załaduj 300 mikrolitrów każdego wzorca do płytki. Na koniec odczytaj absorbancję próbek, ślepych prób i wzorców referencyjnych przy 520 nanometrach.