$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Po wystawieniu na działanie alergenu - antygenu niepatogennego - komórki prezentujące antygen przetwarzają i prezentują alergen limfocytom T pomocniczym typu 2. Te limfocyty T pobudzają limfocyty B do różnicowania się w komórki plazmatyczne i wytwarzania przeciwciał immunoglobuliny E, IgE, które wiążą się z receptorami Fc specyficznymi dla IgE o wysokim powinowactwie na powierzchni krążących bazofili - komórek wydzielniczych zawierających ziarnistości.
Po późniejszej ekspozycji na alergen, kompleksy IgE-Fc rozpoznają alergen i sieciują się z nim, aktywując bazofile do uwalniania granulek zawierających mediatory, takie jak cytokiny i enzymy lizosomalne, w tym β-heksozaminidazę, wywołując silną reakcję zapalną.
Aby zbadać potencjał alergiczny badanego antygenu in vitro, należy rozpocząć od zawiesiny transdukowanych bazofili rakowych szczurów wykazujących ekspresję ludzkich receptorów IgE specyficznych dla IgE. Leczyć surowicą ludzką zawierającą IgE od dawcy alergicznego. Przeciwciała IgE wiążą się z bazofilowymi receptorami Fc i uwrażliwiają je.
Następnie dodać bufor i odpowiednią objętość testowego antygenu do uczulonych bazofili. Antygen, w zależności od jego powinowactwa do IgE związanych z receptorami Fc, sieciuje się z przeciwciałami i inicjuje degranulację bazofili, uwalniając mediatory, w tym β-heksozaminidazę do roztworu.
Zebrać roztwór do świeżej płytki wielodołkowej zawierającej fluorogenny substrat β-heksozaminidazy i inkubować. β-heksozaminidaza hydrolizuje substrat, wytwarzając produkt fluorescencyjny. Po inkubacji dodać bufor o wysokim pH, aby zahamować aktywność β-heksozoaminidazy i zatrzymać reakcję.
Za pomocą czytnika mikropłytek zmierz fluorescencję utworzonego produktu, wskazującą na uwolnioną aktywność β-heksozaminidazy, a co za tym idzie, potencjał alergiczny antygenu do indukowania degranulacji bazofili.
Odwirować wstępnie inkubowaną zawiesinę Ag8 / surowicy i przenieść 50 mikrolitrów odwirowanej zawiesiny Ag8 / surowicy do każdej studzienki zawierającej humanizowane komórki RBL bez naruszania osadu komórek Ag8.
Używaj uczulonych, niestymulowanych komórek bez antygenu, jako kontroli bez antygenu do wskazania dolnego plateau sygnałowego lub tła i nie uwrażliwiaj tła i studzienek kontrolnych maksymalnej lizy. Przykryj płytkę pokrywką i inkubuj przez noc w temperaturze 37 stopni Celsjusza i 5% do 7% dwutlenku węgla.
Odessać pożywkę komórkową zawierającą surowice. Odwróć i postukaj płytką o papier chłonny, aby opróżnić płytkę do mycia humanizowanych komórek RBL. Umyj komórki trzy razy, dodając 200 mikrolitrów buforu Tyrode'a na studzienkę i inkubuj przez około 30 sekund na płukanie, przez pierwsze dwa płukania. Po dodaniu buforu Tyrode'a po raz trzeci, odessać bufor i pozostawić roztwór w studzienkach, aż będzie gotowy do dodania rozcieńczenia antygenu.
Przenieś 100 mikrolitrów roztworu antygenu do każdej studzienki zawierającej wstępnie uczulone, humanizowane komórki RBL, ale nie stymuluj antygenem maksymalnej lizy i nieuczulonych komórek tła.
Dodaj 100 mikrolitrów buforu Tyrode'a do studzienek kontrolnych o maksymalnej lizie, nieuczulonych studzienek kontrolnych w tle i uczulonych studzienek bez antygenu. Inkubuj komórki przez godzinę w temperaturze 37 stopni Celsjusza i od 5% do 7% dwutlenku węgla.
Potraktuj maksymalne studzienki kontrolne lizy 10 mikrolitrami 10% Triton X-100 na studzienkę i odpowiednio wymieszaj, aby całkowicie zlizować komórki w celu 100% uwolnienia beta-heksozaminidazy. Dodać 50 mikrolitrów roztworu substratu do nowej niewiążącej płytki 96-dołkowej.
Przenieś 50 mikrolitrów supernatantu z dołków humanizowanej płytki zawierającej komórki RBL do nowej płytki zawierającej roztwór substratu i inkubuj płytkę przez godzinę w temperaturze 37 stopni Celsjusza, aby umożliwić konwersję substratu fluorogenicznego.
Dodać 100 mikrolitrów roztworu zatrzymującego do studzienki i zmierzyć fluorescencję zgodnie z opisem w rękopisie tekstowym.