$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Rekombinowane wirusy związane z adenowirusami, rAAV, genetycznie modyfikowane, bezotoczkowe, jednoniciowe wirusy DNA, są obiecującymi terapeutycznymi nośnikami genów.
rAAV przyłączają się do docelowych receptorów błony komórkowej i przechodzą endocytozę za pośrednictwem klatryny, ułatwiając dostarczanie genomu rAAV do jądra i ekspresję genów terapeutycznych. Jednak neutralizujące przeciwciała układu odpornościowego skierowane przeciwko rAAV wiążą się ze specyficznym epitopem rAAV, zakłócając wiązanie błony komórkowej, wnikanie komórkowe i transfer genów.
Aby wykryć przeciwciała neutralizujące przeciwko specyficznym rAAV w surowicy owczej, najpierw należy uzyskać odpowiednie stężenia rozcieńczonej surowicy. Dodaj rekombinowane AAV wyrażające ludzką fosfatazę alkaliczną łożyska, gen hPLAP. Pozwól przeciwciałom neutralizującym wiązać się i neutralizować AAV.
Przenieść tę mieszaninę do studzienek wielodołkowej płytki zawierającej przylegającą hodowlę ludzkich komórek nabłonkowych. Podczas inkubacji AAV ulegają endocytozie komórkowej. Transdukowane komórki wyrażają hPLAP związany z błoną komórkową. Jednak zneutralizowane AAV nie mogą dostać się do komórek.
Wyrzuć pożywkę ze studzienek. Użyj paraformaldehydu, aby naprawić komórki. Dodaj wstępnie podgrzany bufor i podgrzej komórki, aby dezaktywować endogenną komórkową fosfatazę alkaliczną; hPLAP jest odporny na inaktywację termiczną.
Dodać substraty hPLAP - fosforan bromochloroindolilo, BCIP i tetrazolium nitro niebieskie, NBT. hPLAP defosforyluje BCIP, który ulega dimeryzacji, tworząc niebieski produkt pośredni. Uwolnione jony wodorowe redukują NBT, wytwarzając nierozpuszczalny fioletowy osad. Obraz do obserwacji fioletowych osadów otaczających transdukowane komórki.
Mniejsza proporcja fioletowego obszaru sugeruje zwiększone stężenie przeciwciał neutralizujących AAV.
Rozpocznij powlekanie komórek HT1080 pierwszego dnia, rozcieńczając komórki do stężenia 1 x 105 komórek/ml we wstępnie podgrzanym, kompletnym pożywce DMEM.
Następnie wysiewaj 100 mikrolitrów komórek na dołek do przezroczystych 96-dołkowych płaskodennych płytek do stężenia 1 x 104 komórek na studzienkę. Inkubuj płytkę w temperaturze 37 stopni Celsjusza z 5% dwutlenkiem węgla przez noc przez 16 do 22 godzin.
Drugiego dnia wygeneruj seryjne rozcieńczenia interesujących próbek surowicy w 1,5-mililitrowych probówkach mikrowirówek przy użyciu wstępnie podgrzanego kompletnego DMEM.
Do każdej probówki z rozcieńczonymi próbkami surowicy dodać 66 mikrolitrów genomu wirusa 7,5 x 106 na mikrolitr roztworu roboczego wirusa. Wymieszać rozcieńczenia wirusa/surowicy przez pipetowanie, a następnie umieścić probówki zawierające mieszaninę wirusa/surowicy w inkubatorze w temperaturze 37 stopni Celsjusza z 5% dwutlenkiem węgla na 30 minut, aby umożliwić potencjalną neutralizację.
Po 30 minutach odpipetować 100 mikrolitrów mieszaniny wirus/surowica do każdego dołka na 96-dołkowej płytce zawierającej 1 x 104 komórki na studzienkę, a następnie zawinąć płytkę w folię i umieścić w inkubatorze w temperaturze 37 stopni Celsjusza z 5% dwutlenkiem węgla przez noc przez 16 do 24 godzin.
Trzeciego dnia odessać pożywkę z dołków 96-dołkowej płytki za pomocą odkurzacza pod wyciągiem bez naruszania przylegających komórek i dodać 50 mikrolitrów 4% paraformaldehydu do każdej studzienki. Po zawinięciu talerza w folię pozostaw go na 10 minut w temperaturze pokojowej.
Później umyj i odessaj komórki dwukrotnie 200 mikrolitrami PBS w temperaturze pokojowej. Po drugim płukaniu odpipetować 200 mikrolitrów wstępnie podgrzanego PBS do każdego dołka i zawinąć płytkę w folię, a następnie inkubować w temperaturze 65 stopni Celsjusza przez 90 minut, aby zdenaturować endogenną aktywność fosfatazy alkalicznej.
Po inkubacji dodać 50 mikrolitrów świeżo przygotowanego, rozpuszczonego BCIP/NBT do każdej studzienki i inkubować owinięte płytki w temperaturze pokojowej przez 2 do 24 godzin. Później zrób zdjęcia każdej studni za pomocą obiektywu o powiększeniu 4x w kamerze mikroskopu świetlnego, zapewniając spójne stosowanie tej samej ekspozycji, balansu bieli i ustawień światła we wszystkich testach.