$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Wewnątrzgatunkowa konkurencja między dwoma szczepami bakteryjnymi powoduje, że szczep inhibitora uwalnia toksyczne cząsteczki efektorowe, które zabijają populację docelową.
Aby zobrazować konkurencyjne interakcje między dwoma szczepami bakterii Gram-ujemnych, zacznij od kokultury składającej się ze szczepu inhibitora i szczepu docelowego w równych ilościach.
Oba szczepy są zaprojektowane tak, aby wyrażać różnokolorowe białka fluorescencyjne w celu wizualnego rozróżnienia ich podczas obrazowania. Skoncentruj kulturę, aby zmaksymalizować kontakt między komórkami między szczepami bakterii. Umieść wymieszaną kulturę na szkiełku nakrywkowym umieszczonym na dnie naczynia.
Umieść zestaloną podkładkę agarozową na miejscu, pozwalając bakteriom na unieruchomienie, i przykryj ją kolejnym szkiełkiem nakrywkowym. Inkubuj, aby umożliwić wzrost bakterii, symulując warunki stłoczenia bakterii.
Otoczka komórkowa szczepu hamującego zawiera wyspecjalizowany system wydzielniczy - system wydzielania typu szóstego lub T6SS. Składa się z kompleksu membranowego, płytki bazowej i rurki wewnętrznej otoczonej kurczliwą osłoną.
Po wykryciu kontaktu szczep inhibitora aktywuje T6SS, co powoduje skurcz osłonki i wydalenie rurki, co ostatecznie prowadzi do perforacji docelowej błony komórkowej bakterii. Ułatwia to dostarczanie cząsteczek efektorowych do bakterii docelowych, prowadząc do ich śmierci.
Obraz za pomocą mikroskopu fluorescencyjnego w celu identyfikacji różnie fluoryzujących szczepów bakterii. Okrągła morfologia docelowych bakterii i zmniejszenie ich liczby potwierdzają skuteczne zabijanie przez bakterie inhibitorowe.
Zmierz i zapisz gęstość optyczną przy 600 nanometrach dla wszystkich próbek. Znormalizować każdą próbkę do gęstości optycznej 1, rozcieńczając kulturę pożywką LBS.
Wymieszaj dwa konkurujące ze sobą szczepy w równych proporcjach, dodając 30 mikrolitrów każdego znormalizowanego szczepu do oznaczonej 1,5-mililitrowej probówki. Wiruj kulturę mieszanego szczepu przez 1 do 2 sekund. Wymieszaj konkurujące ze sobą szczepy dla każdej kontrpróby biologicznej i zabiegu, aby uzyskać łącznie 4 probówki z mieszanymi szczepami.
Każdą mieszaną kulturę należy zagęścić trzykrotnie przez odwirowanie, aby zapewnić wystarczająco gęste konkurujące komórki do zabijania zależnego od kontaktu podczas jednoczesnej inkubacji. Odrzucić supernatant. Ponownie zawiesić każdą osadkę i 20 mikrolitrów pożywki LBS i przeprowadzić procedury zatężania dla każdej próbki.
W przypadku obrazowania pod mikroskopem odwróconym, zacznij od zauważenia dwóch mikrolitrów mieszanej kultury na dnie szkiełka nakrywkowego #1,5 35-milimetrowej szalki Petriego i umieść podkładkę agarozową nad miejscem wspólnej inkubacji. Umieść 12-milimetrowe okrągłe szklane szkiełko nakrywkowe na waciku agarozowym. Powtórz plamienie i umieszczanie szkiełka nakrywkowego dla pozostałych 3 mieszanych kultur, co spowoduje, że 4 szalki zostaną zobrazowane.
Zanim przejdziesz dalej, pozostaw szkiełka na blacie na stole przez około 5 minut, aby komórki mogły osiąść na podkładce agarowej, aby uniknąć ruchu podczas procesu obrazowania.
Zacznij od skupienia się na komórkach za pomocą DIC, aby zminimalizować efekty fotowybielania. Opierając się na średniej wielkości pojedynczej komórki bakteryjnej, użyj obiektywu olejkowego 100x. Dostosuj czas ekspozycji i ustawienia akwizycji dla każdego kanału przy minimalnym wykrywaniu tła. Wybierz co najmniej 5 pól widzenia i uzyskaj obrazy w każdym odpowiednim kanale.