RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
W systemach biologicznych bliskość białka do jego specyficznego partnera jest kluczowym wyznacznikiem udanej interakcji białko-białko. Przy obecności małych cząsteczek hamujących białka te nie mogą się do siebie zbliżać, zakłócając ich interakcje.
Aby przebadać cząsteczki hamujące pod kątem zakłócania interakcji między dwoma białkami - opiekuńczym i ko-opiekuńczym - weź wielodołkową płytkę zawierającą różne małe cząsteczki. Uzupełnij studzienki koralikami donorowymi z ko-chaperonami przymocowanymi do ich powierzchni. Koraliki te zawierają fotouczulacze do oznaczania chemiluminescencji.
Dodaj zawiesinę kulek akceptorowych sprzężonych z sekwencjami peptydowymi pochodzącymi z białka opiekuńczego, które wiążą się specyficznie z ko-chaperonem. Koraliki zawierają barwnik na bazie tioksenu i fluorofory niezbędne do wizualizacji.
W studzienkach z cząsteczkami niehamującymi wysokie powinowactwo między peptydami wiążącymi białka opiekuńcze a koopiekuńczymi przyciąga kulki akceptorowe i donorowe. Podczas gdy kulki pozostają daleko, gdy obecne są inhibitory.
Korzystając z czytnika chemiluminescencyjnego, zbadaj interakcję. Po oświetleniu określoną długością fali, fotouczulacze kulkowe donorowe emitują wysoce reaktywne tleny singletowe.
Bez cząsteczek hamujących emitowane gatunki docierają do blisko proksymalnie położonych kulek akceptorowych i reagują z cząsteczkami barwnika, powodując chemiluminescencję. Energia ta aktywuje fluorofory kulek akceptorowych, powodując emisję światła.
Natomiast w studzienkach z cząsteczkami hamującymi tleny singletowe ulegają rozpadowi, co prowadzi do braku emisji światła, co wskazuje na skuteczne hamowanie interakcji białko-białko.
Dodaj kulki donorowe glutationu w stężeniu 10 mikrogramów na mililitr w PBS. Dodaj GST-FKBP51 do końcowego stężenia 10 mikrogramów na mililitr i inkubuj reakcję przez 10 minut w temperaturze 25 stopni Celsjusza w ciemności.
Wykonać seryjne rozcieńczenia badanego związku w DMSO. Dodać 0,25 mikrolitra rozcieńczeń badanego związku w trzech powtórzeniach, w rogu każdego dołka płytki 384-dołkowej.
W celu kontroli ujemnej dodaj 0,25 mikrolitra DMSO, a w celu kontroli pozytywnej dodaj 0,25 mikrolitra peptydu C-końcowego Hsp90 w studzienkach.
Do każdej studzienki dodać 22,5 mikrolitra roztworu zawierającego kulki donorowe glutationu z białkami oznaczonymi GST. Dokładnie potrząśnij płytką rękami i inkubuj w ciemności w temperaturze 25 stopni Celsjusza przez 15 minut.
Rozcieńczyć kulki akceptora dołączonym peptydem C-końcowym Hsp90 do stężenia 100 mikrogramów na mililitr w 0,5x PBS. Dodaj 2,25 mikrolitra rozcieńczonych koralików akceptorowych do każdej studzienki. Wstrząsnąć i inkubować płytkę w ciemności przez 15 minut, jak pokazano.
Włącz czytnik płytek, zmierz sygnał tabliczki i przeanalizuj dane zgodnie z opisem w rękopisie tekstowym.
Related Videos
10:20
Related Videos
8.7K Views
05:55
Related Videos
6.9K Views
09:39
Related Videos
3.5K Views
07:42
Related Videos
11K Views
11:15
Related Videos
21.6K Views
04:49
Related Videos
1K Views
11:46
Related Videos
23.3K Views
07:44
Related Videos
18.3K Views
08:34
Related Videos
10.2K Views
13:10
Related Videos
10.3K Views