JoVE Encyclopedia of Experiments
Techniki biologiczne
0 wyświetleń • 4:48 min • July 8th, 2025
Makrofagi to wyspecjalizowane komórki odpornościowe, które usuwają komórki ulegające apoptozie - zaprogramowanej śmierci komórki przez fagocytozę.
Aby ocenić pochłanianie komórek apoptotycznych, zacznij od szklanego szkiełka zawierającego utrwalone komórki embrionalne Drosophila, w tym ciała apoptotyczne pochłonięte przez hemocyty - makrofagi bezkręgowców.
Najpierw potraktuj komórki odczynnikiem blokującym, który blokuje niespecyficzne miejsca. Dodaj przeciwciała pierwszorzędowe, które wiążą receptory croquemort - markery fagocytarne hemocytów. Zmyj nadmiar przeciwciał.
Dodaj przeciwciała drugorzędowe znakowane fosfatazą alkaliczną, które wiążą się z przeciwciałami pierwszorzędowymi. Teraz dodaj odpowiedni roztwór substratu chromogennego na szkiełko i inkubuj. Podczas inkubacji fosfataza alkaliczna reaguje z substratem chromogennym, dając fioletowo zabarwione granulki w hemocytach.
Następnie dodaj mieszaninę reakcyjną zawierającą końcową deoksynukleotydylotransferazę, enzym TdT i nukleotydy związane z digoksygeniną. TdT katalizuje przyłączanie nukleotydów związanych z digoksygeniną do odsłoniętych końców 3' OH rozdrobnionego DNA w ciałach apoptotycznych.
Następnie dodaj przeciwciała anty-digoksygeniny sprzężone z reporterem peroksydazy, które wiążą się z nukleotydami w miejscu uszkodzenia DNA. Potraktuj komórki roztworem substratu chromogennego specyficznym dla peroksydazy i inkubuj. Peroksydaza katalizuje utlenianie substratu, generując kolorowe osady i barwiąc ciała apoptotyczne na brązowo.
Na koniec zwizualizuj komórki pod mikroskopem świetlnym. Współobecność fioletowych granulek i brązowych sygnałów z komórek wskazuje na hemocyty zawierające fagocytozowane ciała apoptotyczne.
Aby wybarwić immunologicznie komórki przeciwciałem anty-Croquemort, najpierw seryjnie namocz szkiełko w metanolu, następnie PBS uzupełniony 0,2% Triton X-100, a następnie sam PBS. Następnie zablokuj niespecyficzne wiązanie 20 mikrolitrami 5% surowicy całej świni w PBS + 0,2% Triton X-100 przez 20 minut w temperaturze pokojowej. Usuń nadmiar roztworu blokującego i oznacz komórki 20 mikrolitrami surowicy anty-Croquemort w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez noc.
Następnego ranka umyj szkiełko w PBS + Triton X-100 przez pięć 10-minutowych inkubacji. Po ostatnim praniu płucz szkiełko w PBS przez 10 minut. Następnie oznacz komórki 20 mikrolitrami anty-szczurzej IgG znakowanej fosfatazą alkaliczną w temperaturze pokojowej przez 1 godzinę.
Pod koniec inkubacji przemyć szkiełko pięciokrotnie w PBS + Triton X-100, jak pokazano, a następnie zanurzyć je w roztworze buforowym przez 10 minut. Następnie oznacz komórki roztworem substratu fosfatazy i obserwuj komórki pod mikroskopem świetlnym.
Gdy w granulkach hemocytu pojawią się silne fioletowe sygnały, usuń nadmiar substratu i zanurz szkiełko w buforze uzupełnionym EDTA na 5 do 10 minut. Pod koniec inkubacji przepłukać komórki dwoma 5-minutowymi płukaniami PBS i traktować je buforem równowagowym przez 10 minut.
Po usunięciu roztworu oznacz komórki 20 mikrolitrami końcowego roztworu deoksynukleotydylotransferazy w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 1 godzinę. Następnie wyjmij roztwór ze szkiełka i zanurz komórki w 0,5 mililitra buforu do przemywania w 17 mililitrach wody przez 10 minut. Następnie przepłucz komórki trzema 5-minutowymi płukaniami PBS i oznacz je 20 mikrolitrami peroksydazy anty-digoksygeninowej przez 30 minut w temperaturze pokojowej.
Pod koniec inkubacji umyj komórki cztery razy w PBS, jak pokazano, i zanurz szkiełko w substracie peroksydazy przez 30 sekund, aż komórki apoptozy staną się brązowe. Po uzyskaniu optymalnego zabarwienia namocz szkiełko w wodzie, aby zatrzymać reakcję peroksydazy.
Niniejszy artykuł szczegółowo opisuje metodę oceny pochłaniania komórek apoptotycznych przez makrofagi z wykorzystaniem komórek embrionalnych Drosophila. Proces ten obejmuje techniki immunobarwienia w celu wizualizacji fagocytozy ciał apoptotycznych przez hemocyty.
Ta technika immunobarwienia umożliwia wizualizację usuwania apoptotycznych komórek przez komórki fagocytarne, co wspiera walidację celów w badaniach nad immunologią oraz odkrywaniem leków onkologicznych. Poprzez ilościowe określenie wydajności fagocytozy, badacze mogą zminimalizować ryzyko związane z hipotezami mechanistycznymi dotyczącymi funkcji makrofagów i szlaków sygnalizacji apoptotycznej. Test ten zapewnia wiarygodność prognostyczną przy ocenie związków immunomodulujących w modelach przedklinicznych.
Metoda ta integruje się z procesami badawczymi, zapewniając funkcjonalne odczyty zaangażowania celu immunomodulacyjnego pomiędzy etapami wczesnego potwierdzenia trafienia a optymalizacją związku wiodącego.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026