Test fagocytozy: technika barwienia immunologicznego do wizualizacji pochłaniania komórek apoptotycznych w komórkach embrionalnych Drosophila melanogaster

0 wyświetleń4:48 min • July 8th, 2025

Makrofagi to wyspecjalizowane komórki odpornościowe, które usuwają komórki ulegające apoptozie - zaprogramowanej śmierci komórki przez fagocytozę.

Aby ocenić pochłanianie komórek apoptotycznych, zacznij od szklanego szkiełka zawierającego utrwalone komórki embrionalne Drosophila, w tym ciała apoptotyczne pochłonięte przez hemocyty - makrofagi bezkręgowców.

Najpierw potraktuj komórki odczynnikiem blokującym, który blokuje niespecyficzne miejsca. Dodaj przeciwciała pierwszorzędowe, które wiążą receptory croquemort - markery fagocytarne hemocytów. Zmyj nadmiar przeciwciał.

Dodaj przeciwciała drugorzędowe znakowane fosfatazą alkaliczną, które wiążą się z przeciwciałami pierwszorzędowymi. Teraz dodaj odpowiedni roztwór substratu chromogennego na szkiełko i inkubuj. Podczas inkubacji fosfataza alkaliczna reaguje z substratem chromogennym, dając fioletowo zabarwione granulki w hemocytach.

Następnie dodaj mieszaninę reakcyjną zawierającą końcową deoksynukleotydylotransferazę, enzym TdT i nukleotydy związane z digoksygeniną. TdT katalizuje przyłączanie nukleotydów związanych z digoksygeniną do odsłoniętych końców 3' OH rozdrobnionego DNA w ciałach apoptotycznych.

Następnie dodaj przeciwciała anty-digoksygeniny sprzężone z reporterem peroksydazy, które wiążą się z nukleotydami w miejscu uszkodzenia DNA. Potraktuj komórki roztworem substratu chromogennego specyficznym dla peroksydazy i inkubuj. Peroksydaza katalizuje utlenianie substratu, generując kolorowe osady i barwiąc ciała apoptotyczne na brązowo.

Na koniec zwizualizuj komórki pod mikroskopem świetlnym. Współobecność fioletowych granulek i brązowych sygnałów z komórek wskazuje na hemocyty zawierające fagocytozowane ciała apoptotyczne.

Aby wybarwić immunologicznie komórki przeciwciałem anty-Croquemort, najpierw seryjnie namocz szkiełko w metanolu, następnie PBS uzupełniony 0,2% Triton X-100, a następnie sam PBS. Następnie zablokuj niespecyficzne wiązanie 20 mikrolitrami 5% surowicy całej świni w PBS + 0,2% Triton X-100 przez 20 minut w temperaturze pokojowej. Usuń nadmiar roztworu blokującego i oznacz komórki 20 mikrolitrami surowicy anty-Croquemort w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez noc.

Następnego ranka umyj szkiełko w PBS + Triton X-100 przez pięć 10-minutowych inkubacji. Po ostatnim praniu płucz szkiełko w PBS przez 10 minut. Następnie oznacz komórki 20 mikrolitrami anty-szczurzej IgG znakowanej fosfatazą alkaliczną w temperaturze pokojowej przez 1 godzinę.

Pod koniec inkubacji przemyć szkiełko pięciokrotnie w PBS + Triton X-100, jak pokazano, a następnie zanurzyć je w roztworze buforowym przez 10 minut. Następnie oznacz komórki roztworem substratu fosfatazy i obserwuj komórki pod mikroskopem świetlnym.

Gdy w granulkach hemocytu pojawią się silne fioletowe sygnały, usuń nadmiar substratu i zanurz szkiełko w buforze uzupełnionym EDTA na 5 do 10 minut. Pod koniec inkubacji przepłukać komórki dwoma 5-minutowymi płukaniami PBS i traktować je buforem równowagowym przez 10 minut.

Po usunięciu roztworu oznacz komórki 20 mikrolitrami końcowego roztworu deoksynukleotydylotransferazy w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 1 godzinę. Następnie wyjmij roztwór ze szkiełka i zanurz komórki w 0,5 mililitra buforu do przemywania w 17 mililitrach wody przez 10 minut. Następnie przepłucz komórki trzema 5-minutowymi płukaniami PBS i oznacz je 20 mikrolitrami peroksydazy anty-digoksygeninowej przez 30 minut w temperaturze pokojowej.

Pod koniec inkubacji umyj komórki cztery razy w PBS, jak pokazano, i zanurz szkiełko w substracie peroksydazy przez 30 sekund, aż komórki apoptozy staną się brązowe. Po uzyskaniu optymalnego zabarwienia namocz szkiełko w wodzie, aby zatrzymać reakcję peroksydazy.

10:43

Ocena uszkodzeń DNA in vitro za pomocą testu komety

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:37

Wykorzystanie końcowego znakowania końca dUTP Nick za pośrednictwem transferazy końcowej (TUNEL) i testów kaspazy 3/7 do pomiaru śmierci komórek naskórka u żab z chytridiomykozą

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:15

Kwantyfikacja efektozy za pomocą mikroskopii fluorescencyjnej pojedynczych komórek

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:35

Obrazowanie na żywo migracji hemocytów embrionalnych Drosophila melanogaster

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:16

Disekcja i obrazowanie pojedynczego ommatidium Drosophila

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:57

Test esterocytozy utrwalonych: metoda badania wychwytu efferocytarnego komórek apoptotycznych przez makrofagi przy użyciu mikroskopii fluorescencyjnej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:50

Test in vivo do ilościowego określenia fagocytozy bakteryjnej u dorosłych much Drosophila

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:59

Obrazowanie na żywo apoptotycznego usuwania komórek podczas embriogenezy Drosophila

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:10

Wspomagane sonikacją barwienie immunofluorescencyjne tkanek drobnoustrojowych i larwalnych drobnoustrojowych i larwalnych Drosophila in situ

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:06

Test fagocytozy na obecność komórek apoptotycznych w zarodkach Drosophila

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026