$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Niektóre dziedziczne zaburzenia neurodegeneracyjne obejmują białka z długim ciągiem reszt glutaminy, zwane poliglutaminą, poliQ, traktem. Te strukturalnie niestabilne, podatne na nieprawidłowe fałdowanie białka ostatecznie gromadzą się, tworząc toksyczne agregaty, negatywnie wpływając na funkcje neuronów i przeżycie.
Aby ocenić potencjał ochronny badanego związku w zakresie przeżywalności neuronów przed neurotoksycznością za pośrednictwem polyQ, należy rozpocząć od zawiesiny transgenicznych larw Caenorhabditis elegans wykazujących ekspresję białek fluorescencyjnych i polyQ w neuronach ASH - sparowanych chemosensorycznych.
Przenieść do studzienek na płytce wielodołkowej zawierającej pożywkę i bakteryjne źródło pokarmu. Dodaj badany związek do jednego zestawu studzienek. Uszczelnij płytę, minimalizując odwodnienie i zanieczyszczenie mediów. Inkubować.
Podczas rozwoju robaków białka polyQ tworzą agregaty w neuronach ASH, prowadząc do neurotoksyczności związanej z agregacją i wpływając na przeżycie neuronów.
Jeśli jest obecny, badany związek dostaje się do neuronów i, w oparciu o jego zdolność neuroprotekcyjną, może hamować agregację białek polyQ, łagodząc związaną z tym neurotoksyczność i poprawiając przeżycie neuronów.
Zbierz dorosłe robaki i odwiruj. Ponownie zawiesić robaki w odpowiednim buforze i przenieść na podkładkę agarozową z odpowiednią substancją chemiczną do unieruchomienia.
Za pomocą mikroskopu fluorescencyjnego wizualizuj neurony ASH w celu wykrycia białek fluorescencyjnych, wskaźnika przeżycia neuronów.
Wyższa fluorescencja w leczeniu niż w studzienkach kontrolnych sugeruje zwiększony wskaźnik przeżycia neuronów, co wskazuje na neuroprotekcyjne potencjał badanego związku w hamowaniu agregacji poliQ i związanej z tym neurotoksyczności.
Aby przygotować nicienie do testu neurotoksyczności polyQ, przenieś 300 do 500 zsynchronizowanych larw L1 nicieni HA759 do każdej studzienki 48-dołkowej płytki z 500 mikrolitrami pożywki S zawierającej szczep OP50 E. coli i 5 miligramów na mililitr astragalanu. Po uszczelnieniu płytek należy inkubować, zbierać i ponownie zawieszać nicienie w buforze M9, jak pokazano.
Teraz przygotuj podkładkę agarozową, dodając 2 gramy agarozy do 100 mililitrów buforu M9 i podgrzej roztwór w kuchence mikrofalowej do prawie wrzenia. Dozuj 0,5 mililitra stopionej agarozy na środek szklanego szkiełka mikroskopowego o grubości 1 milimetra, umieszczonego między dwoma kawałkami szklanych płytek o grubości 2 milimetrów, przykrywając pionowo innym szkiełkiem. Delikatnie zdejmij górne szkiełko, gdy agaroza ostygnie i zastygnie.
Rozpocznij test przeżycia neuronów ASH, dodając kroplę 20-milimolowego azydku sodu na podkładkę agarozową, a następnie przenosząc 15 do 20 nicieni HA759 do kropli w celu ich unieruchomienia. Delikatnie nałóż szkiełko nakrywkowe na nicienie.
Teraz trzymaj szkiełko pod mikroskopem fluorescencyjnym wyposażonym w kamerę cyfrową. Wybierz soczewkę obiektywu 40x i filtr FITC, aby wykryć neurony ASH GFP-dodatnie w obszarze głowy nicieni.
Wybierz losowo ponad 50 nicieni w każdej grupie, aby policzyć liczbę nicieni z obustronnymi neuronami ASH znakowanymi GFP w regionie głowy, a następnie obliczyć wskaźnik przeżycia neuronów ASH.