$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Rozwijające się neurony rozszerzają procesy cytoplazmatyczne ze swoich ciał komórkowych poprzez rozrost neurytów, aby rozwinąć dendryty i aksony, które są niezbędne do komunikacji między neuronami.
Aby zbadać wpływ białka docelowego na wzrost neurytów, należy wziąć płytkę wielodołkową z szkiełkiem nakrywkowym pokrytym poli-D-lizyną u podstawy. Na powierzchni szkiełka nakrywkowego znajduje się przylegająca kultura pierwotnych neuronów korowych pochodzących z embrionalnego mózgu szczura.
Potraktuj neurony mieszanką zawierającą dwa typy plazmidów - plazmid EGFP kodujący wzmocnione białko zielonej fluorescencji i drugi plazmid kodujący białko docelowe w odpowiednim odczynniku do transfekcji.
Odczynnik do transfekcji ułatwia wnikanie plazmidów do komórek.
Po transfekcji oba plazmidy ulegają ekspresji, wytwarzając białka zielonej fluorescencji i białka docelowe. Ekspresja EGFP nadaje zieloną fluorescencję komórkom ulegającym transfekcji.
Białka docelowe o potencjale stymulującym wzrost neurytów inicjują sygnalizację komórkową, która sprzyja reorganizacji cytoszkieletu i prowadzi do rozwoju projekcji neuronalnych i ich rozszerzeń.
Odessać zużyte podłoże i utrwalić komórki paraformaldehydem. Przeciwbarwić komórki za pomocą znakowanych czerwoną fluorescencją przeciwciał przeciwko białku docelowemu, które specyficznie wiążą wyrażone białka docelowe i nadają komórkom dodatkową czerwoną fluorescencję.
Usuń szkiełko nakrywkowe z płytki hodowlanej i obserwuj je pod mikroskopem fluorescencyjnym.
Komórki współtransfekowane wykazujące dwukolorowy sygnał fluorescencyjny wykazują dłuższe procesy neuronalne niż komórki pozbawione czerwonej fluorescencji, co potwierdza stymulujący wpływ białka docelowego na wzrost neurytów.
Po dwóch dniach w temperaturze 37 stopni Celsjusza i 5% dwutlenku węgla rozcieńczyć EGFP i plazmidowe DNA z białkiem docelowym oraz odczynnik do transfekcji w dwóch oddzielnych probówkach o pojemności 1,5 mililitra, a następnie wymieszaj je ze sobą. Transfekcja komórek za pomocą konstruktu EGFP poprzez dodanie mieszanki transfekcyjnej do studzienek.
Po 24 godzinach umyj komórki PBS o temperaturze 37 stopni Celsjusza i utrwal je 4% paraformaldehydem w PBS przez 10 minut w ciemności w temperaturze pokojowej.
Pod koniec inkubacji przemyć utrwalone komórki trzy razy świeżym PBS na przemycie i dodać minimalną objętość pożywki do montażu fluorescencji na jednym szkiełku mikroskopowym na próbkę. Następnie ostrożnie przenieś powlekane szkiełka nakrywkowe na podłoże montażowe, tak aby próbki były skierowane w stronę szkiełek podstawowych.
Aby zobrazować wzrost neurytów, wybierz obiektyw 40x w mikroskopie epifluorescencyjnym i kliknij "Start", aby uchwycić obrazy z co najmniej 40 nienaruszonych neuronów EGFP-dodatnich na transfekcję.
Po zobrazowaniu wszystkich nowych praw otwórz przechwycone obrazy w ImageJ za pomocą wtyczki NeuronJ i zmierz długość najdłuższego neurytu każdego neuronu od ciała komórki do czubka stożka wzrostu. Następnie przeanalizuj dane uzyskane za pomocą oprogramowania, aby określić wpływ docelowych białek na wzrost neurytów.