Anizotropia fluorescencyjna w celu określenia powinowactwa wiązania czynnika transkrypcyjnego i DNA

0 wyświetleń5:00 min • July 8th, 2025

Czynnik transkrypcyjny, TF, jest białkiem, które wiąże się ze specyficznym regionem DNA genu i reguluje transkrypcję.

Aby zmierzyć interakcje TF-DNA za pomocą anizotropii fluorescencji, weź płytkę wielodołkową. Dodać stopiony żel zmieszany z buforowym roztworem, zawierającym znane stężenia referencyjnego DNA znakowanego fluoroforem, składającego się z miejsca wiązania TF i wyższego stężenia cząsteczek TF, do dołka i inkubować.

Gdy znakowane referencyjne DNA rozprowadza się w żelu, wyższe stężenie cząsteczki TF zapewnia, że wszystkie cząsteczki DNA są związane z TF. Dodać buforowany roztwór zawierający nieznakowane DNA konkurenta z mutacją jednopunktową.

Przeanalizuj żel płytki za pomocą wysokowydajnej mikroskopii anizotropii fluorescencyjnej.

Światło spolaryzowane wzbudza referencyjny fluorofor związany z DNA, który zmienia orientację w wyniku wirowania molekularnego i emituje wielokierunkowe zdepolaryzowane światło ― zjawisko zwane anizotropią fluorescencji, FA.

Po związaniu się z TF, masa cząsteczkowa referencyjnego fluoroforu związanego z DNA wzrasta i opada wolniej, emitując więcej spolaryzowanego światła, które zwiększa FA.

Nieznakowane DNA konkurenta dyfunduje z czasem po matrycy żelu, tworząc gradient stężeń od wysokiego do najniższego. Wyższe stężenie nieznakowanego DNA konkurenta wypiera znakowane DNA referencyjne, wiążąc się z TF. Uwolnione oznaczone oligomery referencyjne opadają szybciej, zmniejszając FA.

Wykreśl FA fluoroforu i gradient stężenia konkurencyjnego DNA w czasie ― który maleje, gdy więcej cząsteczek konkurencyjnego DNA wypiera referencyjne DNA.

Aby przygotować studzienki miareczkowania i kalibracyjne na 96-dołkowej płytce, należy przenieść dwie porcje żelu do wytrząsarki inkubatora o temperaturze 75 stopni Celsjusza.

Do każdego dołka miareczkowania dodać 1,4 nanomola referencyjnego DNA, białko czynnika transkrypcyjnego o końcowym stężeniu od 20 do 60 nanomoli, 0,2 milimolowego DTT i bufor wiążący do 240 mikrolitrów stopionego żelu.

Dokładnie wymieszaj, odwracając i potrząsając probówką. Następnie powoli pipetować 200 mikrolitrów na dołek żelu zawierającego DNA w wyznaczonych dołkach miareczkowania na 96-dołkowej płytce. Do każdej studzienki kalibracyjnej dodaj 5 nanomoli niebieskiego barwnika nilowego do 240 mikrolitrów stopionego żelu. Unikając pęcherzyków powietrza, powoli odpipetuj 200 mikrolitrów roztworu żelu zawierającego barwnik w pięciu do sześciu dołkach 96-dołkowej płytki.

Umieść żel na idealnie poziomej powierzchni i inkubuj przez 10 minut w temperaturze pokojowej i kolejne 10 minut w temperaturze 4 stopni Celsjusza. Użyj wielodołkowego czytnika płytek, aby sprawdzić jednorodność poziomów wysokości żelu w różnych dołkach płytki.

Aby przygotować konkurencyjny roztwór DNA, najpierw połącz znakowane referencyjne DNA, białko i trzykrotnie skoncentrowany bufor wiążący. Następnie wymieszaj 20 mikrolitrów roztworu z 40 mikrolitrami każdego z wyżarzonych roztworów DNA konkurencji.

Dla każdej studzienki kalibracyjnej należy połączyć odpowiednie ilości jednego z wyżarzonych konkurencyjnych roztworów DNA i trzykrotnie skoncentrowanego buforu wiążącego zawierającego 15-milimolowy roztwór barwnika błękitu nilowego. Na koniec dodaj 50 mikrolitrów zmieszanych roztworów konkurencji na żele tak równocześnie, jak to możliwe.

Aby rozpocząć akwizycję obrazu, umieść 96-dołkową płytkę na stoliku mikroskopu. Następnie wykonaj serię czasową obrazów stosu z dołków, aż do całkowitego rozwiązania białka z referencyjnego DNA.

Wykonać test miareczkowania zgodnie z manuskryptem. Następnie za pomocą oprogramowania HiP-FA można utworzyć krzywe miareczkowania dla poszczególnych sekwencji konkurencji. Następnie kliknij przycisk "Eksportuj", aby uzyskać stałą dysocjacji i stężenie aktywnego białka w każdym dołku miareczkowania.

11:25

Ulepszone badania przesiewowe hybryd drożdży w celu identyfikacji powiązania czynnika transkrypcyjnego z sekwencjami ludzkiego DNA

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:45

Zastosowanie termoforezy w mikroskali do pomiaru interakcji białko-lipid

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:02

Określanie asocjacji termodynamicznej i kinetycznej aptameru DNA i tetracykliny za pomocą izotermicznej kalorymetrii miareczkowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:41

Wykrywanie interakcji białko-białko oparte na anizotropii fluorescencyjnej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:31

Test przesunięcia ruchliwości elektroforetycznej do wykrywania kompleksów czynnik transkrypcyjny-DNA

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:43

Test ilościowy do badania interakcji białko-DNA, odkrywania transkrypcyjnych regulatorów ekspresji genów i identyfikowania nowych środków przeciwnowotworowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:44

Anizotropia fluorescencyjna jako narzędzie do badania oddziaływań białko-białko

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:08

Izolacja elementów regulatorowych wspomagana formaldehydem w celu pomiaru dostępności chromatyny w komórkach ssaków

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:38

Pomiar wysokiej czułości powinowactwa wiązania czynnika transkrypcyjnego z DNA za pomocą miareczkowania kompetencyjnego przy użyciu mikroskopii fluorescencyjnej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

14:34

Oznaczanie trójstronnej interakcji między dwoma monomerami czynnika transkrypcyjnego MADS-box i białka czujnika wapnia za pomocą testu BiFC-FRET-FLIM

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026