Spektroskopia magnetycznego rezonansu jądrowego w celu identyfikacji wielokrotnych fosforylacji białek

0 wyświetleń4:47 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wielokrotne fosforylacje w białku polegają na dodawaniu grup fosforanowych do białka w różnych pozycjach, w szczególności na resztach seryny i treoniny.

Aby zidentyfikować wielokrotne fosforylacje w białku, zacznij od rurki zawierającej fosforylowane białka znakowane azotem-15, który pomaga odróżnić wodór amidowy od innych wodorów w białku.

Dodaj wewnętrzny związek referencyjny NMR, aby uzyskać dokładny pomiar względnych częstotliwości rezonansowych. Przenieś mieszaninę do probówki magnetycznego rezonansu jądrowego (NMR). Włóż rurkę do wirującego otworu i umieść ją w spektrometrze NMR.

Obecność fosforanów wykazuje działanie wycofujące elektrony w fosforylowanych resztach seryny i treoniny. W rezultacie, wodory amidowe fosforylowanych reszt wydają się być odekranowane z mniejszą gęstością elektronów w porównaniu z innymi wodorami amidowymi.

Wodór amidowy o różnym środowisku elektronicznym doświadcza zróżnicowanych pól magnetycznych wokół jąder, osiągając stany niskoenergetyczne.

Zastosuj krótki impuls o częstotliwości radiowej, aby wzbudzić jądra wodoru do wyższego stanu energetycznego o określonej częstotliwości rezonansowej w oparciu o ich środowisko elektroniczne.

Podczas relaksacji jądra powracają do stanu niskoenergetycznego poprzez uwolnienie pochłoniętej energii, która jest wykrywana w celu wytworzenia sygnału NMR.

Wykreślić dwuwymiarowe widmo NMR reprezentujące poszczególne wodory amidowe.

Porównaj widmo białka fosforylowanego z widmem białka nieufosforylowanego. Pojawienie się dodatkowych rezonansów w widmie NMR fosforylowanego białka potwierdza wielokrotne fosforylacje.

Rozpuścić 4 miligramy liofilizowanego 15N i 13C wzbogaconego ERK-fosforylowanego-Tau w 400 mikrolitrach buforu NMR. Dodaj 5% tlenku deuteru do blokowania pola spektrometru NMR i 1 milimolowy TMSP jako wewnętrzne odniesienie sygnału NMR. Dodaj również 10 mikrolitrów 40-krotnego roztworu podstawowego kompletnego koktajlu inhibitorów proteazy.

Przenieść próbkę w 5-mililitrowej probówce NMR za pomocą elektronicznej strzykawki z długą igłą lub za pomocą pipety Pasteura. Zamknąć rurkę NMR za pomocą tłoka. Usunąć wszelkie pęcherzyki powietrza uwięzione między tłokiem a cieczą, przesuwając tłok.

Umieść probówkę NMR w wirówce. Użyj odpowiedniego miernika, aby dostosować jego pionowe położenie w wirówce, tak aby większość roztworu próbki znajdowała się wewnątrz cewki NMR. Następnie uruchom przepływ powietrza w przyrządzie NMR, klikając "Podnieś" w oknie systemu sterowania magnesem. Ostrożnie umieść kołpak z rurką w strumieniu powietrza w górnej części otworu magnesu, a następnie zatrzymaj przepływ powietrza i pozwól, aby rurka opadła na miejsce wewnątrz głowicy sondy w magnesie.

Po zrównoważeniu próbki do 25 stopni Celsjusza, wpisz "atmm" w wierszu poleceń, aby przeprowadzić półautomatyczne strojenie i dopasowanie głowicy sondy w celu optymalizacji przenoszenia mocy. Następnie kliknij "Zablokuj" w oknie systemu sterowania magnesem, aby włączyć blokadę częstotliwości pola spektrometru.

Rozpocznij procedurę podkładkowania, aby zoptymalizować jednorodność pola magnetycznego w pozycji próbki, wpisując najpierw "topshim gui" w wierszu poleceń, aby otworzyć okno podkładki. Następnie kliknij "Start" w oknie podkładki. Sprawdź resztkowe odchylenie standardowe B zera, aby upewnić się, że podkładki regulacyjne są optymalne.

Następnie skalibruj parametr P1, który jest długością impulsu o częstotliwości radiowej protonów w mikrosekundach. Ten parametr jest niezbędny do uzyskania 90-stopniowego obrotu namagnesowania spinu protonu. Celuj w impuls 360 stopni za pomocą jednowymiarowego spektrum protonów wody.

Dostosuj przesunięcie częstotliwości, ustawiając parametr 01 na częstotliwość wody protonowej w widmie jednowymiarowym. Na koniec rozpocznij akwizycję jednowymiarowego widma protonów, wpisując "zg" w wierszu poleceń.

08:54

Spektroskopia NMR jako solidne narzędzie do szybkiej oceny profilu lipidowego suplementów oleju rybnego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:24

Testy aktywności oparte na NMR do określania inhibicji związku, wartości IC50, aktywności artefaktów i aktywności całych komórek rybohydrolaz nukleozydowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:26

Izolacja lizatów białkowych całych komórek z procesów twarzy myszy i hodowanych komórek mezenchymy podniebienia do analizy fosfoprotein

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

15:41

Ilościowa fosfoproteomika w Saccharomyces cerevisiae stymulowanych kwasami tłuszczowymi

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:14

Test jednocząsteczkowy pull-down do analizy fosforylacji białek: wysokoprzepustowa technika ilościowego określania fosforylacji białek w lizacie komórkowym

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:31

Znakowanie metaboliczne bogatych w leucynę kinaz powtórzeniowych 1 i 2 radioaktywnym fosforanem

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:07

Identyfikacja modyfikacji potranslacyjnych kompleksów białek roślinnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:47

Spektroskopia magnetycznego rezonansu jądrowego do identyfikacji wielokrotnych fosforylacji białek wewnętrznie nieuporządkowanych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:16

Test konkurencji oligopeptydowej do oznaczania miejsca fosforylacji

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:26

Identyfikacja miejsc fosforylacji specyficznych dla kinazy 1 zależnej od cykliny za pomocą testu kinazy in vitro

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026