$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Wielokrotne fosforylacje w białku polegają na dodawaniu grup fosforanowych do białka w różnych pozycjach, w szczególności na resztach seryny i treoniny.
Aby zidentyfikować wielokrotne fosforylacje w białku, zacznij od rurki zawierającej fosforylowane białka znakowane azotem-15, który pomaga odróżnić wodór amidowy od innych wodorów w białku.
Dodaj wewnętrzny związek referencyjny NMR, aby uzyskać dokładny pomiar względnych częstotliwości rezonansowych. Przenieś mieszaninę do probówki magnetycznego rezonansu jądrowego (NMR). Włóż rurkę do wirującego otworu i umieść ją w spektrometrze NMR.
Obecność fosforanów wykazuje działanie wycofujące elektrony w fosforylowanych resztach seryny i treoniny. W rezultacie, wodory amidowe fosforylowanych reszt wydają się być odekranowane z mniejszą gęstością elektronów w porównaniu z innymi wodorami amidowymi.
Wodór amidowy o różnym środowisku elektronicznym doświadcza zróżnicowanych pól magnetycznych wokół jąder, osiągając stany niskoenergetyczne.
Zastosuj krótki impuls o częstotliwości radiowej, aby wzbudzić jądra wodoru do wyższego stanu energetycznego o określonej częstotliwości rezonansowej w oparciu o ich środowisko elektroniczne.
Podczas relaksacji jądra powracają do stanu niskoenergetycznego poprzez uwolnienie pochłoniętej energii, która jest wykrywana w celu wytworzenia sygnału NMR.
Wykreślić dwuwymiarowe widmo NMR reprezentujące poszczególne wodory amidowe.
Porównaj widmo białka fosforylowanego z widmem białka nieufosforylowanego. Pojawienie się dodatkowych rezonansów w widmie NMR fosforylowanego białka potwierdza wielokrotne fosforylacje.
Rozpuścić 4 miligramy liofilizowanego 15N i 13C wzbogaconego ERK-fosforylowanego-Tau w 400 mikrolitrach buforu NMR. Dodaj 5% tlenku deuteru do blokowania pola spektrometru NMR i 1 milimolowy TMSP jako wewnętrzne odniesienie sygnału NMR. Dodaj również 10 mikrolitrów 40-krotnego roztworu podstawowego kompletnego koktajlu inhibitorów proteazy.
Przenieść próbkę w 5-mililitrowej probówce NMR za pomocą elektronicznej strzykawki z długą igłą lub za pomocą pipety Pasteura. Zamknąć rurkę NMR za pomocą tłoka. Usunąć wszelkie pęcherzyki powietrza uwięzione między tłokiem a cieczą, przesuwając tłok.
Umieść probówkę NMR w wirówce. Użyj odpowiedniego miernika, aby dostosować jego pionowe położenie w wirówce, tak aby większość roztworu próbki znajdowała się wewnątrz cewki NMR. Następnie uruchom przepływ powietrza w przyrządzie NMR, klikając "Podnieś" w oknie systemu sterowania magnesem. Ostrożnie umieść kołpak z rurką w strumieniu powietrza w górnej części otworu magnesu, a następnie zatrzymaj przepływ powietrza i pozwól, aby rurka opadła na miejsce wewnątrz głowicy sondy w magnesie.
Po zrównoważeniu próbki do 25 stopni Celsjusza, wpisz "atmm" w wierszu poleceń, aby przeprowadzić półautomatyczne strojenie i dopasowanie głowicy sondy w celu optymalizacji przenoszenia mocy. Następnie kliknij "Zablokuj" w oknie systemu sterowania magnesem, aby włączyć blokadę częstotliwości pola spektrometru.
Rozpocznij procedurę podkładkowania, aby zoptymalizować jednorodność pola magnetycznego w pozycji próbki, wpisując najpierw "topshim gui" w wierszu poleceń, aby otworzyć okno podkładki. Następnie kliknij "Start" w oknie podkładki. Sprawdź resztkowe odchylenie standardowe B zera, aby upewnić się, że podkładki regulacyjne są optymalne.
Następnie skalibruj parametr P1, który jest długością impulsu o częstotliwości radiowej protonów w mikrosekundach. Ten parametr jest niezbędny do uzyskania 90-stopniowego obrotu namagnesowania spinu protonu. Celuj w impuls 360 stopni za pomocą jednowymiarowego spektrum protonów wody.
Dostosuj przesunięcie częstotliwości, ustawiając parametr 01 na częstotliwość wody protonowej w widmie jednowymiarowym. Na koniec rozpocznij akwizycję jednowymiarowego widma protonów, wpisując "zg" w wierszu poleceń.