Technika spektroskopii dichroizmu kołowego do badania interakcji DNA-białko

0 wyświetleń4:38 min • July 8th, 2025

Białka przebudowujące chromatynę zależne od ATP regulują ekspresję genów w ciasno upakowanej chromatynie, zmieniając konformację DNA w sposób zależny od ATP.

Aby zbadać interakcje remodelera chromatyny z DNA za pomocą spektroskopii dichroizmu kołowego lub CD, weź roztwór dwuniciowych oligonukleotydów DNA. Podgrzej, aby zdenaturować oligonukleotydy i umieść na lodzie.

Szybkie chłodzenie powoduje renaturę DNA, tworząc struktury drugorzędowe. Dwuniciowy i jednoniciowy region przejściowy zapewnia optymalne miejsce wiązania dla osób przebudowujących chromatynę.

Dodaj schłodzone na gorąco DNA do kuwety. Dodaj bufor zawierający zależny od ATP remodeler chromatyny, ATP i jony magnezu.

Czynnik przebudowujący wiąże się z DNA, a następnie wiąże się ATP skompleksowany z jonami magnezu z białkiem - aktywując je. Aktywowany remodeler hydrolizuje ATP - indukując konformację pętli macierzystej w DNA.

Przepuść przez próbkę światło spolaryzowane kołowo w lewo i w prawo — z różnicą faz 90°. Optycznie chiralne DNA w różnym stopniu absorbuje lewe i prawe światło spolaryzowane kołowo.

Absorpcja różnicowa, zwana dichroizmem kołowym, powoduje, że przepuszczane światło jest spolaryzowane eliptycznie, co jest mierzone jako eliptyczność. Dwa dodatnie piki na określonych długościach fal w widmach CD potwierdzają strukturę pętli macierzystej.

Dodaj EDTA, aby chelatować jony magnezu, hamując aktywność ATPazy.

Zmiana widm CD po chelatacji – wykazująca ujemny pik i szeroki dodatni pik przy określonych długościach fal – wskazuje na zakłócenie konformacji pnia i pętli przy braku hydrolizy ATP.

Zbierz widma CD w kuwetach kwarcowych o wysokiej przezroczystości. Używaj kuwet prostokątnych lub cylindrycznych. Aby wyczyścić kuwety, umyj je kilkakrotnie wodą, a następnie wykonaj skan wody lub bufora w kuwecie, aby sprawdzić, czy jest czysta.

Do reakcji użyj oligonukleotydów DNA oczyszczonych przez PAGE. Aby uzyskać szybkie chłodzenie, podgrzej DNA w temperaturze 94 stopni Celsjusza przez 3 minuty na bloku grzewczym i natychmiast schłodzić je na lodzie. W przypadku powolnego chłodzenia, po podgrzaniu DNA w temperaturze 94 stopni Celsjusza przez 3 minuty, pozwól mu ostygnąć do temperatury pokojowej z szybkością 1 stopnia Celsjusza na minutę.

Aby zarejestrować widma podstawowe, ustaw łącznie 5 reakcji kontrolnych, jedna po drugiej, w 1,5-mililitrowych probówkach wirówkowych. Utrzymuj objętość reakcji na poziomie 300 mikrolitrów we wszystkich reakcjach.

Aby zarejestrować widma CD, należy ustawić w sumie pięć reakcji eksperymentalnych jedna po drugiej w 1,5-mililitrowych probówkach wirówkowych.

Aby nagrać skan, włącz gaz i włącz spektrometr CD. Po 10 do 15 minutach włącz lampę, włącz łaźnię wodną i ustaw temperaturę oprawki na 37 stopni Celsjusza.

Następnie otwórz oprogramowanie widma CD i ustaw temperaturę na 37 stopni Celsjusza, zakres długości fali od 180 do 300 nanometrów, czas na punkt na 0,5 sekundy, a liczbę skanowania na 5. Następnie kliknij przeglądarkę Pro-Data, utwórz nowy plik i zmień jego nazwę, podając szczegóły eksperymentu i datę.

Następnie wymieszać linię podstawową i reakcję eksperymentalną przez pipetowanie i ostrożnie przenieść mieszaniny reakcyjne jedna po drugiej do kuwety, upewniając się, że nie ma pęcherzyków powietrza.

Jeśli wykonujesz eksperyment z biegiem czasu, inkubuj reakcje w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez wymagany czas. Następnie wykonaj skanowanie. Dodaj EDTA do buforu zawierającego DNA, ATP, magnez i białko, aby zatrzymać hydrolizę ATP. Aby całkowicie zahamować aktywność ATPazy, należy zwiększyć stężenie EDTA i czas inkubacji.

Odejmij linie podstawowe od odpowiadających im reakcji w oprogramowaniu i wygładź dane w oprogramowaniu widma CD lub w oprogramowaniu do tworzenia wykresów danych. Następnie narysuj wykres długości fali w stosunku do średniej eliptyczności pozostałości i przeanalizuj piki.

09:40

Analiza promotora ligandu c-KIT z wykorzystaniem immunoprecypitacji chromatyny

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:37

Protokół syntezy w fazie stałej oligomerów RNA zawierających modyfikację 2'-O-tiofenylometylu i charakterystykę za pomocą dichroizmu kołowego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:54

Synteza i charakterystyka samoorganizujących się peptydów modyfikowanych 1,2-ditiolanem

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:16

Różnicowa kalorymetria skaningowa do badania interakcji DNA aptamer-termolabilny ligand

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

14:43

Połączenie manipulacji pojedynczymi cząsteczkami i obrazowania w celu badania interakcji białko-DNA

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

13:26

Oznaczanie oddziaływań białko-ligand za pomocą różnicowej fluorymetrii skaningowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:44

Anizotropia fluorescencyjna jako narzędzie do badania oddziaływań białko-białko

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

14:12

Dwukolorowa spektroskopia korelacji krzyżowej fluorescencji w celu zbadania interakcji białko-białko i dynamiki białek w żywych komórkach

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:48

Spektroskopia CD do badania interakcji DNA-białko

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:32

Rozszyfrowanie molekularnego mechanizmu składania histonów za pomocą techniki kurtyny DNA

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026