Technika oceny lokalizacji in vivo przeciwciał specyficznych dla nowotworu

0 wyświetleń4:13 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Weźmy zawiesinę komórek ludzkiego raka jajnika. Dodaj podłoże z matrycą błony podstawnej i trzymaj na lodzie, aby uniknąć tworzenia się żelu.

Załaduj mieszaninę do strzykawki i wstrzyknij podskórnie do atymicznej myszy nude. Usunąć igłę, gdy matryca zostanie poddana żelowaniu, zapobiegając wydaleniu mieszaniny.

Brak odpowiedzi immunologicznej u myszy z niedoborem odporności zachowuje żywotność wstrzykniętych komórek. Białka macierzy zewnątrzkomórkowej i czynniki wzrostu zawarte w żelu dostarczają sygnałów stymulujących wzrost, ułatwiając powstawanie guza.

Komórki nowotworowe nadmiernie eksprymują powierzchniowy receptor kwasu foliowego alfa-1 lub FOLR1.

Weź przeciwciała specyficzne dla FOLR1. Dodać barwnik fluorescencyjny i inkubować, umożliwiając koniugację barwnika z przeciwciałami.

Dożylnie wstrzyknąć znakowane przeciwciała do znieczulonej myszy z guzem.

Przeciwciała docierają do guza poprzez krążenie i wiążą się z FOLR1 na komórkach nowotworowych, znakując fluorescencyjnie powierzchnię komórki.

Wykonaj obrazowanie fluorescencyjne in vivo. Po wzbudzeniu barwnik wydziela fluorescencję, ułatwiając ocenę lokalizacji przeciwciał w guzie.

Dializować 0,5 mililitra przeciwciała za pomocą kasety dializacyjnej w 1 litrze buforu koniugacyjnego. Po czterech godzinach przenieś kasetę dializacyjną do nowego buforu i dializuj przez noc. Aby wywołać reakcję koniugacji, dodaj 0,03 mikrograma IRDye 800CW na 1 miligram przeciwciała w całkowitej objętości 500 mikrolitrów.

Inkubować mieszaninę przez dwie godziny w temperaturze 20 stopni Celsjusza. Następnie oczyść znakowane koniugaty przez intensywną dializę przeciwko PBS. Oszacuj stopień znakowania, mierząc absorbancję barwnika przy 780 nanometrach i absorbancję białka przy 280 nanometrach.

Aby rozwinąć ksenoprzeszczepy myszy, delikatnie podnieś skórę zwierzęcia i oddziel ją od leżącej poniżej warstwy mięśniowej. Powoli wstrzyknąć 100 mikrolitrów zawiesiny komórkowej pod skórę za pomocą igły o rozmiarze 26. Odczekać kilka sekund przed wyjęciem igły, aby podłoże z macierzy podstawowej mogło utworzyć półstałą strukturę przypominającą żel wraz z komórkami pod skórą, co zapobiegnie wydostawaniu się mieszaniny z miejsca wstrzyknięcia.

Aby wykonać obrazowanie in vivo, wstrzyknij przeciwciało znakowane barwnikiem przez żyłę ogonową. Po znieczuleniu myszy sprawdź, czy nie ma reakcji na odruchy pedałowania i rozszerz żyłę, podając ciepłą wodę. Użyj strzykawki insulinowej o pojemności 1 CC z igłą o rozmiarze 26, aby wstrzyknąć 25 mikrogramów znakowanego przeciwciała w objętości 100 mikrolitrów. Jako kontrolę ujemną należy oznaczyć i wstrzyknąć niespecyficzne przeciwciało izotypu IgG, które nie jest skierowane przeciwko komórkom nowotworowym.

Wykonaj obrazowanie in vivo 8, 24 i 48 godzin po wstrzyknięciu przeciwciał. W oprogramowaniu do przetwarzania obrazu kliknij przycisk Inicjuj. Upewnij się, że temperatura stage wynosi 37 stopni Celsjusza. W panelu sterowania skonfiguruj obrazowanie fluorescencyjne za pomocą kreatora obrazowania i ustaw wzbudzenie na 773 nanometry, a emisję na 792 nanometry.

Przenieś znieczuloną mysz do komory obrazowania i umieść ją w polu obrazowania za pomocą stożka nosowego. Gdy wszystko będzie gotowe, kliknij przycisk Acquire (Pobieraj) w panelu sterowania, aby uzyskać informacje o pobieranym obrazie, a następnie kliknij przycisk Auto Expose. Wygenerowany obraz jest nałożeniem fluorescencji na obraz fotograficzny, przy czym intensywność fluorescencji optycznej jest wyświetlana w jednostkach zliczeń lub fotonów.

08:28

Ex vivo Obrazowanie rezydentnych limfocytów T CD8 w wycinkach ludzkiego guza płuc za pomocą mikroskopii konfokalnej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:13

Bispecyficzne przeciwciało ukierunkowane na GPC3, GPC3-S-Fab, o silnej cytotoksyczności

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:53

Lokalizacja immunofluorescencji in vivo do oceny terapeutycznej i diagnostycznej biodystrybucji przeciwciał w badaniach nad rakiem

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:28

Znakowanie mysich limfocytów T Helper za pomocą znakowanych radioaktywnie przeciwciał monoklonalnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:15

Metoda lokalizacji immunofluorescencji in vivo do badania biodystrybucji przeciwciał

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:10

Obrazowanie fluorescencyjne in vivo w celu zlokalizowania przeciwciał w mysim modelu ksenoprzeszczepu guza

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:39

Technika obrazowania PET in vivo do wykrywania guzów w modelu mysim przy użyciu przeciwciał znakowanych radioaktywnie

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:44

Technika in vivo do śledzenia transportu limfocytów T indukowanych przez bispecyficzne przeciwciała do nowotworów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:09

Walidacja eksperymentów obrazowania NIRF in vivo na podstawie ksenoprzeszczepu nowotworowego na myszach przy użyciu cytometrii przepływowej i mikroskopii ex vivo

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:34

Znakowanie mysich limfocytów za pomocą receptora przeciwciał Cu 64w celu transportu komórek in vivo za pomocą PET / CT

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026