$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Weźmy zawiesinę komórek ludzkiego raka jajnika. Dodaj podłoże z matrycą błony podstawnej i trzymaj na lodzie, aby uniknąć tworzenia się żelu.
Załaduj mieszaninę do strzykawki i wstrzyknij podskórnie do atymicznej myszy nude. Usunąć igłę, gdy matryca zostanie poddana żelowaniu, zapobiegając wydaleniu mieszaniny.
Brak odpowiedzi immunologicznej u myszy z niedoborem odporności zachowuje żywotność wstrzykniętych komórek. Białka macierzy zewnątrzkomórkowej i czynniki wzrostu zawarte w żelu dostarczają sygnałów stymulujących wzrost, ułatwiając powstawanie guza.
Komórki nowotworowe nadmiernie eksprymują powierzchniowy receptor kwasu foliowego alfa-1 lub FOLR1.
Weź przeciwciała specyficzne dla FOLR1. Dodać barwnik fluorescencyjny i inkubować, umożliwiając koniugację barwnika z przeciwciałami.
Dożylnie wstrzyknąć znakowane przeciwciała do znieczulonej myszy z guzem.
Przeciwciała docierają do guza poprzez krążenie i wiążą się z FOLR1 na komórkach nowotworowych, znakując fluorescencyjnie powierzchnię komórki.
Wykonaj obrazowanie fluorescencyjne in vivo. Po wzbudzeniu barwnik wydziela fluorescencję, ułatwiając ocenę lokalizacji przeciwciał w guzie.
Dializować 0,5 mililitra przeciwciała za pomocą kasety dializacyjnej w 1 litrze buforu koniugacyjnego. Po czterech godzinach przenieś kasetę dializacyjną do nowego buforu i dializuj przez noc. Aby wywołać reakcję koniugacji, dodaj 0,03 mikrograma IRDye 800CW na 1 miligram przeciwciała w całkowitej objętości 500 mikrolitrów.
Inkubować mieszaninę przez dwie godziny w temperaturze 20 stopni Celsjusza. Następnie oczyść znakowane koniugaty przez intensywną dializę przeciwko PBS. Oszacuj stopień znakowania, mierząc absorbancję barwnika przy 780 nanometrach i absorbancję białka przy 280 nanometrach.
Aby rozwinąć ksenoprzeszczepy myszy, delikatnie podnieś skórę zwierzęcia i oddziel ją od leżącej poniżej warstwy mięśniowej. Powoli wstrzyknąć 100 mikrolitrów zawiesiny komórkowej pod skórę za pomocą igły o rozmiarze 26. Odczekać kilka sekund przed wyjęciem igły, aby podłoże z macierzy podstawowej mogło utworzyć półstałą strukturę przypominającą żel wraz z komórkami pod skórą, co zapobiegnie wydostawaniu się mieszaniny z miejsca wstrzyknięcia.
Aby wykonać obrazowanie in vivo, wstrzyknij przeciwciało znakowane barwnikiem przez żyłę ogonową. Po znieczuleniu myszy sprawdź, czy nie ma reakcji na odruchy pedałowania i rozszerz żyłę, podając ciepłą wodę. Użyj strzykawki insulinowej o pojemności 1 CC z igłą o rozmiarze 26, aby wstrzyknąć 25 mikrogramów znakowanego przeciwciała w objętości 100 mikrolitrów. Jako kontrolę ujemną należy oznaczyć i wstrzyknąć niespecyficzne przeciwciało izotypu IgG, które nie jest skierowane przeciwko komórkom nowotworowym.
Wykonaj obrazowanie in vivo 8, 24 i 48 godzin po wstrzyknięciu przeciwciał. W oprogramowaniu do przetwarzania obrazu kliknij przycisk Inicjuj. Upewnij się, że temperatura stage wynosi 37 stopni Celsjusza. W panelu sterowania skonfiguruj obrazowanie fluorescencyjne za pomocą kreatora obrazowania i ustaw wzbudzenie na 773 nanometry, a emisję na 792 nanometry.
Przenieś znieczuloną mysz do komory obrazowania i umieść ją w polu obrazowania za pomocą stożka nosowego. Gdy wszystko będzie gotowe, kliknij przycisk Acquire (Pobieraj) w panelu sterowania, aby uzyskać informacje o pobieranym obrazie, a następnie kliknij przycisk Auto Expose. Wygenerowany obraz jest nałożeniem fluorescencji na obraz fotograficzny, przy czym intensywność fluorescencji optycznej jest wyświetlana w jednostkach zliczeń lub fotonów.