$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Weź splenocyty zubożone w krwinki czerwone w buforze zawierającym wrażliwy na wapń barwnik fluorescencyjny Indo-1 AM.
Wewnątrzkomórkowe esterazy rozszczepiają Indo-1 AM na nieprzepuszczalny dla błony Indo-1, który wiąże się z jonami wapnia, zmieniając sygnał fluorescencji Indo-1 z niebieskiego na fioletowy.
Wprowadź przeciwciała specyficzne dla antygenu sprzężonego z fluoroforem, które wiążą się specyficznie z odpowiednimi antygenami na komórkach.
Za pomocą cytometrii przepływowej zidentyfikuj limfocyty B znakowane fluoroforem i zmierz ich stosunek fluorescencji fioletowo-niebieskiej Indo-1.
Teraz potraktuj komórki antygenowymi liposomami zawierającymi fragmenty IgM Fab sprzężone z dwuwarstwami liposomów.
Receptory komórek B wiążą się z antygenami sprzężonymi z liposomami, aktywując związane z nimi cytoplazmatyczne kinazy tyrozynowe i wyzwalając aktywację gamma-2 fosfolipazy-C.
Aktywowana fosfolipaza-C rozszczepia błonę fosfolipid, fosfatydyloinozytol 4,5-bisfosforan, wytwarzając drugie przekaźniki, w tym inozytol 1,4,5-trifosforan lub IP3.
IP3 wiąże się z kanałami wapniowymi bramkowanymi IP3 na retikulum endoplazmatycznym, uwalniając jony wapnia do cytoplazmy.
Te jony wapnia wiążą niezwiązane cząsteczki Indo-1, zwiększając fioletową fluorescencję.
Wyższy stosunek fluorescencji fioletowo-niebieskiej Indo-1 w znakowanych komórkach B potwierdza ich skuteczną aktywację przez liposomy antygenowe.
Aby monitorować odpowiedź limfocytów B na aktywację liposomów antygenowych, ponownie zawieś 1,5 x 107 splenocytów w buforze ładującym strumień wapnia i dodaj 1,5 mikromolowego Indo-1 do komórek, kilkakrotnie odwracając roztwór w probówce w celu wymieszania. Po 30-minutowej inkubacji w łaźni wodnej w temperaturze 37 stopni Celsjusza chronionej przed światłem, dodaj 5-krotność objętości buforu ładującego strumień wapnia i odwiruj komórki znakowane Indo-1.
W przypadku bramkowania limfocytów B wybarwić komórki przeciwciałami anty-CD5 i anty-B220 w 0,5 mililitra buforu ładującego w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez 20 minut, chroniąc przed światłem. Pod koniec inkubacji umyć komórki w świeżym buforze ładującym strumień wapnia i ponownie zawiesić osad w ilości 1 do 2 x 107 komórek na mililitr świeżego buforu do pracy w topniku wapnia do przechowywania na lodzie chronionym przed światłem, do czasu analizy.
Następnie dodaj 0,5 mililitra komórek do zaślepionej 5-mililitrowej rurki z polistyrenu o okrągłym dnie i podgrzej komórki do 37 stopni Celsjusza w łaźni wodnej. Po 3 do 5 minutach przenieś probówkę do komory z płaszczem wodnym o temperaturze 37 stopni Celsjusza połączonej z recyrkulacyjną łaźnią wodną i uruchom rurkę w płaszczu wodnym na cytometrze przepływowym.
Po zebraniu od 5 000 do 10 000 zdarzeń na sekundę pozwól komórkom ustabilizować się przez 15 do 30 sekund i ponownie zainicjuj akwizycję danych, zbierając dane przez co najmniej 10 sekund w celu ustalenia odczytu tła. Po upływie 10 sekund szybko wyjmij probówkę z cytometru przepływowego i dodaj odpowiednie eksperymentalne stężenie liposomów antygenowych. Następnie pulsacyjnie wiruj komórki i odczytuj probówkę na cytometrze przez dodatkowe 3 do 5 minut.