Monitorowanie aktywacji limfocytów B za pomocą liposomów antygenowych przy użyciu testu strumienia wapnia

0 wyświetleń3:54 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Weź splenocyty zubożone w krwinki czerwone w buforze zawierającym wrażliwy na wapń barwnik fluorescencyjny Indo-1 AM.

Wewnątrzkomórkowe esterazy rozszczepiają Indo-1 AM na nieprzepuszczalny dla błony Indo-1, który wiąże się z jonami wapnia, zmieniając sygnał fluorescencji Indo-1 z niebieskiego na fioletowy.

Wprowadź przeciwciała specyficzne dla antygenu sprzężonego z fluoroforem, które wiążą się specyficznie z odpowiednimi antygenami na komórkach.

Za pomocą cytometrii przepływowej zidentyfikuj limfocyty B znakowane fluoroforem i zmierz ich stosunek fluorescencji fioletowo-niebieskiej Indo-1.

Teraz potraktuj komórki antygenowymi liposomami zawierającymi fragmenty IgM Fab sprzężone z dwuwarstwami liposomów.

Receptory komórek B wiążą się z antygenami sprzężonymi z liposomami, aktywując związane z nimi cytoplazmatyczne kinazy tyrozynowe i wyzwalając aktywację gamma-2 fosfolipazy-C.

Aktywowana fosfolipaza-C rozszczepia błonę fosfolipid, fosfatydyloinozytol 4,5-bisfosforan, wytwarzając drugie przekaźniki, w tym inozytol 1,4,5-trifosforan lub IP3.

IP3 wiąże się z kanałami wapniowymi bramkowanymi IP3 na retikulum endoplazmatycznym, uwalniając jony wapnia do cytoplazmy.

Te jony wapnia wiążą niezwiązane cząsteczki Indo-1, zwiększając fioletową fluorescencję.

Wyższy stosunek fluorescencji fioletowo-niebieskiej Indo-1 w znakowanych komórkach B potwierdza ich skuteczną aktywację przez liposomy antygenowe.

Aby monitorować odpowiedź limfocytów B na aktywację liposomów antygenowych, ponownie zawieś 1,5 x 107 splenocytów w buforze ładującym strumień wapnia i dodaj 1,5 mikromolowego Indo-1 do komórek, kilkakrotnie odwracając roztwór w probówce w celu wymieszania. Po 30-minutowej inkubacji w łaźni wodnej w temperaturze 37 stopni Celsjusza chronionej przed światłem, dodaj 5-krotność objętości buforu ładującego strumień wapnia i odwiruj komórki znakowane Indo-1.

W przypadku bramkowania limfocytów B wybarwić komórki przeciwciałami anty-CD5 i anty-B220 w 0,5 mililitra buforu ładującego w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez 20 minut, chroniąc przed światłem. Pod koniec inkubacji umyć komórki w świeżym buforze ładującym strumień wapnia i ponownie zawiesić osad w ilości 1 do 2 x 107 komórek na mililitr świeżego buforu do pracy w topniku wapnia do przechowywania na lodzie chronionym przed światłem, do czasu analizy.

Następnie dodaj 0,5 mililitra komórek do zaślepionej 5-mililitrowej rurki z polistyrenu o okrągłym dnie i podgrzej komórki do 37 stopni Celsjusza w łaźni wodnej. Po 3 do 5 minutach przenieś probówkę do komory z płaszczem wodnym o temperaturze 37 stopni Celsjusza połączonej z recyrkulacyjną łaźnią wodną i uruchom rurkę w płaszczu wodnym na cytometrze przepływowym.

Po zebraniu od 5 000 do 10 000 zdarzeń na sekundę pozwól komórkom ustabilizować się przez 15 do 30 sekund i ponownie zainicjuj akwizycję danych, zbierając dane przez co najmniej 10 sekund w celu ustalenia odczytu tła. Po upływie 10 sekund szybko wyjmij probówkę z cytometru przepływowego i dodaj odpowiednie eksperymentalne stężenie liposomów antygenowych. Następnie pulsacyjnie wiruj komórki i odczytuj probówkę na cytometrze przez dodatkowe 3 do 5 minut.

08:07

Identyfikacja białek oddziałujących z fosforanem inozytolu lub fosfoinozytylem za pomocą chromatografii powinowactwa sprzężonej ze spektrometrią Western Blot lub spektrometrią mas

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:31

Kierowanie leków na larwy makrofagów danio pręgowanego poprzez wstrzykiwanie liposomów zawierających leki

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:46

Bezkomórkowa produkcja proteoliposomów do analizy funkcjonalnej i rozwoju przeciwciał ukierunkowanych na białka błonowe

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:24

Dynamika organelli w limfocytach B po aktywacji kulkami pokrytymi antygenem

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:41

Aktywacja limfocytów B na szkiełku nakrywkowym pokrytym antygenem

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:52

Test komórkowy do identyfikacji czynników oddziałujących z CXCR4

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:14

Ocena napływu wapnia indukowanego przez receptor limfocytów T za pomocą barwnika wskaźnikowego wapnia

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

19:05

Pomiar wiązania TCR-pMHC in situ za pomocą testu mikroskopowego opartego na FRET

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:41

Test mobilizacji Ca2 + oparty na fluorescencji kinetycznej w celu identyfikacji agonistów, antagonistów i modulatorów allosterycznych sprzężonych z białkiem G

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:31

Liposomy antygenowe do wytwarzania przeciwciał specyficznych dla choroby

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 1 sierpnia 2026