Ocena topologii synaps immunologicznych za pomocą obrazowania żywych komórek

0 wyświetleń5:03 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wziąć naczynie mikroskopowe z buforem zawierającym transfekowane, poddane działaniu superantygenu ludzkie komórki śródbłonka, z superantygenami skompleksowanymi do cząsteczek MHC klasy II.

Te sztuczne komórki prezentujące antygen wykazują koekspresję różnych białek fluorescencyjnych na swoich błonach i cytoplazmie.

Następnie wprowadź limfocyty T, które oddziałują z superantygenami na komórkach śródbłonka za pośrednictwem receptorów limfocytów T, tworząc stabilne połączenie komórka-komórka, synapsę immunologiczną.

Powoduje to przegrupowanie cytoszkieletu limfocytów T, inicjując rozprzestrzenianie się komórek i wydłużanie aktyny, co skutkuje powstawaniem wypukłości podobnych do inwadosomów lub ILP, wzbogaconych o aktynę, adhezję i cząsteczki sygnałowe.

Cząsteczki adhezyjne wiążą specyficzne receptory na komórkach śródbłonka, wzmacniając interakcję.

Tworzenie synaps aktywuje szlaki sygnałowe limfocytów T, podnosząc wewnątrzkomórkowy poziom wapnia i stabilizując ILP.

ILP indukują miejscowe zginanie błony w komórkach śródbłonka, tworząc przejściowe pierścienie powierzchniowe.

Pod mikroskopem fluorescencyjnym przeanalizuj topologię synaps składającą się z ciemnych kolistych stref przemieszczenia cytoplazmy fluorescencyjnej w komórce śródbłonka, zlokalizowanych w kolokacji z różnie fluorescencyjnymi pierścieniami błonowymi wokół ILP, potwierdzając tworzenie synaps immunologicznych.

Aby uzyskać obraz na żywo komórek, włącz system mikroskopu i otwórz odpowiednie oprogramowanie do przechwytywania obrazu. Ustaw odpowiednie parametry dla zautomatyzowanego wielokanałowego obrazowania poklatkowego, a także interwał akwizycji od 10 do 30 sekund i łączny czas trwania około 20 do 60 minut.

Następnie dodaj świeży olej do celu. Zamontuj miskę mikroskopową zawierającą 0,5 mililitra buforu A na adapterze ogrzewania stage i natychmiast włącz adapter, wcześniej ustawiony na 37 stopni Celsjusza. Po dwóch do trzech minutach równowagi użyj pipety o pojemności 20 mikrolitrów, aby dodać spoczynkowe limfocyty obciążone Fura-2 do zamontowanej komory czaszy mikroskopu i włącz obrazowanie w jasnym polu.

Wybierz drogę światła do okularów i użyj pokrętła zgrubnej ostrości, aby zetknąć obiektyw z dnem czaszy mikroskopu. Następnie użyj okularu i pokrętła precyzyjnego ustawiania ostrości, aby zlokalizować komórki T osadzone na dnie czaszy i użyj elementów sterujących XY stage, aby wybrać pole zawierające co najmniej 10 komórek.

Po zlokalizowaniu odpowiednich komórek przełącz się z jasnego pola na fluorescencyjne źródło światła i z obrazowania okularowego na kamerę CCD. Zoptymalizuj parametry akwizycji, a następnie uzyskaj spoczynkowe obrazy Fura2-340 i Fura2-380.

Jednym z kluczowych kroków do uzyskania pomyślnych wyników jest staranna optymalizacja parametrów akwizycji fluorescencji, zapewniająca zebranie wystarczającej ilości sygnału, a w przypadku Fura-2, że wyjściowy stosunek 340/380 jest bliski 1.

Po ustawieniu czasów ekspozycji na Fura-2 zastąp szalkę limfocytów T miską mikroskopową komórek śródbłonka. Za pomocą jednorazowej pipety transferowej szybko usuń pożywkę i przepłucz komórki raz 1 mililitrem wstępnie podgrzanego buforu A, a następnie zastąp płukanie 0,5 mililitra świeżego buforu A.

Korzystając z obiektywu, zidentyfikuj pola, w których jasno fluorescencyjne komórki śródbłonka wydają się zdrowe, a następnie dostosuj parametry akwizycji dla błony-YFP i DsRed, jak właśnie pokazano dla Fura-2, uważając, aby średnie natężenie sygnału fluorescencyjnego w każdym kanale mieściło się między 25% a 75% zakresu dynamiki detektora.

Przed przeprowadzeniem eksperymentu z obrazowaniem żywych komórek należy wykonać kilka interwałów obrazów samych komórek śródbłonka, aby ustalić punkt odniesienia za pomocą zautomatyzowanego oprogramowania. Następnie, wkładając końcówkę pipety o małej objętości do pożywki w pobliżu środka obiektywu, powoli dozuj 5 mikrolitrów skoncentrowanych limfocytów Fura-2 do środka pola obrazowania naczynia mikroskopowego.

Gdy limfocyty osiadają, dokonaj precyzyjnych regulacji ostrości, aby upewnić się, że interfejsy limfocytów T / komórek śródbłonka są utrzymywane w płaszczyźnie ogniskowej. W przypadku obiektywów 40x i 63x optymalna jest liczba komórek na pole od 10 do 20 razy.

09:56

Obrazowanie w superrozdzielczości synapsy immunologicznej komórek NK na płaskiej dwuwarstwie lipidowej na podłożu szklanym

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:35

Analiza jakościowa i ilościowa synapsy immunologicznej w organizmie człowieka z wykorzystaniem obrazowej cytometrii przepływowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:37

Obrazowanie ludzkiej synapsy immunologicznej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

18:11

Ilościowe oznaczanie synaps: test oparty na immunocytochemii do ilościowego oznaczania liczby synaps

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:31

Obrazowanie na żywo w czasie rzeczywistym tworzenia kompleksu sygnalizacyjnego limfocytów T

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:00

Wizualizacja synapsy immunologicznej za pomocą dwukolorowej nanoskopii STED (Time-Gated Stimulated Emission Depletion)

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:25

Model płaskiej komórki śródbłonka do obrazowania dynamiki synaps immunologicznych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

14:28

Wykorzystanie połączonych metodologii w celu zdefiniowania roli dostarczania błony plazmatycznej podczas rozgałęziania aksonów i morfogenezy neuronów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:00

Wizualizacja cytoszkieletów aktyny i mikrotubul w synapsie immunologicznej komórek B przy użyciu mikroskopii wyczerpywania się emisji stymulowanej (STED)

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

14:02

Obrazowanie superrozdzielcze w celu zbadania kolokalizacji białek i markerów synaptycznych w neuronach pierwotnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026