Test rozszczepienia peptydów fluorogenicznych w celu zbadania aktywności proteolitycznej proteaz

0 wyświetleń2:42 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wirusy otoczkowe z transbłonowymi białkami kolców zawierają proteolityczne miejsce rozszczepienia.

Proteazy związane z błoną na komórkach gospodarza rozszczepiają białka kolców, odsłaniając peptydy fuzyjne, które ułatwiają wnikanie wirusa.

Na początek weź peptydy typu dzikiego z kanonicznym miejscem rozszczepienia i peptydami wariantowymi, z których każdy ma unikalną mutację w tym miejscu.

Peptydy fluorogenne zawierają fluorofor i wygaszacz. Ze względu na bliskość wygaszacz absorbuje fluorescencję fluoroforu.

Pobrać wielodołkową płytkę na lodzie, zawierającą bufor testowy i proteazy gospodarza.

Dodaj peptydy typu dzikiego i wariantowego do oddzielnych studzienek. Inkubować w odpowiedniej temperaturze, aby uzyskać optymalną aktywność proteazy.

Proteaza rozszczepia peptydy, oddzielając wygaszacz od fluoroforu i umożliwiając jego emisję fluorescencji.

Zmierz zmianę sygnału fluorescencji, aby określić szybkość rozszczepienia proteolitycznego.

Wyższy wskaźnik dla sekwencji typu dzikiego wskazuje na wyższą aktywność proteolityczną, podczas gdy niższy wskaźnik dla wariantów wskazuje na zmienioną wydajność rozszczepienia.

Przygotować odpowiednie testowe dla proteaz zgodnie z opisem w protokole tekstowym i schłodzić na lodzie. Umieść solidną, czarną, nieobrobioną polistyrenową, płaską płytkę 96-dołkową na lodzie z cienką metalową płytką pod spodem, aby wspomóc chłodzenie i stabilność.

Konieczne jest użycie czarnej płytki jako płytki testowej, aby zapobiec wyciekom fluorescencyjnym z sąsiednich studzienek.

Dla każdego peptydu należy przygotować trzy kontrpróby techniczne na test w łącznej objętości 100 mikrolitrów na próbkę. Odpipetować odpowiednią ilość buforu do oznaczania do każdego dołka płytki testowej. Dodaj 0,5 mikrolitra proteazy do każdej studzienki. Do sześciu studzienek dodaj 0,5 mikrolitra buforu zamiast odpowiedniej proteazy. Trzy z nich będą ślepymi kontrolami, a pozostałe trzy będą kontrolami peptydowymi.

Dodać 5 mikrolitrów peptydu do końcowego stężenia 50 mikromolów do każdej studzienki, z wyjątkiem ślepych kontroli. Do każdej z trzech ślepych studzienek kontrolnych dodaj 5 mikrolitrów buforu zamiast peptydu. Włóż płytkę do czytnika płytek fluorescencyjnych i kliknij przycisk Start.

08:14

Wysokoprzepustowy test lucyferazy do oceny proteolizy proteazy jednoobrotowej PCSK9

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

19:23

Zastosowanie rekombinowanych białek fuzyjnych w fluorescencyjnej platformie testowej proteazy i ich renaturacja w żelu

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:56

Wykrywanie aktywności proteazy za pomocą fluorescencyjnej symografii peptydowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:00

Zastosowanie zestawu do wykrywania fluorescencyjnego proteazy w celu określenia aktywności proteazy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:05

Fluorescencyjna zymografia peptydów: zmodyfikowana technika wykrywania aktywności proteazy za pomocą substratów fluorogennych w żelach zymogramowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:59

Test in vitro do pomiaru aktywności proteazy neutrofilowej seryny za pomocą reportera fluorescencyjnego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:50

Nanoczujniki do wykrywania aktywności proteazy in vivo w diagnostyce nieinwazyjnej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:53

Test rozszczepienia peptydów fluorogenicznych do badań przesiewowych pod kątem aktywności proteolitycznej: zastosowania do aktywacji białka kolca koronawirusa

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:33

Test przecieku fluorescencyjnego w celu zbadania destabilizacji błony przez peptyd penetrujący komórkę

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 1 sierpnia 2026