Monitorowanie przybycia białek powierzchniowych znakowanych GFP do sieci trans-Golgiego przy użyciu funkcjonalizowanych nanociał

0 wyświetleń5:00 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od komórek rakowych pozbawionych siarczanów, które wyrażają białko powierzchniowe znakowane GFP.

Dodać znakowany radioaktywnie siarczan i zmodyfikowane nanociała anty-GFP - jednołańcuchowe przeciwciało niosące motyw siarczanu tyrozyny i inkubować.

Komórki pozbawione siarczanów internalizują znakowane radioaktywnie siarczany, włączając je do składników komórkowych.

Nano anty-GFP wiąże się z białkiem powierzchniowym znakowanym GFP i zostaje endocytoza do pęcherzyka. Pęcherzyk ten transportuje kompleks białkowy nanociało-powierzchnia wzdłuż określonych szlaków wewnątrzkomórkowych, w tym sieci trans-Golgiego lub TGN.

W obrębie TGN sulfotransferaza w obecności substratu przenosi radioaktywny siarczan do określonych reszt tyrozyny na nanociele, znakując je w ten sposób radioznakując.

Umyj komórki. Następnie poddaj komórki lizie.

Odwiruj lizat, aby usunąć duże zanieczyszczenia komórkowe. Wyizoluj nanociała za pomocą metody oczyszczania na bazie kulek niklu.

Załaduj wyizolowaną frakcję na żel SDS-PAGE, aby rozdzielić znakowaną radioaktywnie nanocząsteczkę na odrębne pasma.

Poddaj żel autoradiografii.

Uzyskany autoradiogram ujawnia pociemniałe obszary, wskazując na obecność znakowanego radioaktywnie nanociała.

W kapturze do hodowli komórkowej wysiewaj od 400 000 do 500 000 komórek HeLa, które stabilnie wyrażają białko reporterowe znakowane GFP, na szalkach o średnicy 35 mm lub 6-dołkowych klastrach, z kompletną pożywką zawierającą antybiotyki. Inkubuj komórki w temperaturze 37 stopni Celsjusza z 7,5% dwutlenkiem węgla przez noc. Następnego dnia usuń całe podłoże i umyj komórki dwukrotnie 1X PBS w temperaturze pokojowej. Zagłodź komórki pożywką bezsiarczanową przez 1 godzinę w temperaturze 37 stopni Celsjusza z 7,5% dwutlenkiem węgla.

W międzyczasie, w wentylowanym kapturze lub ławce przeznaczonej do pracy radioaktywnej, przygotuj pożywkę do znakowania siarczanów zawierającą 0,5 milikiurów na mililitr siarczanu sodu S35 w podłożu bezsiarczanowym. Następnie wymieszaj dwupoziomowy siark VHH w 1X PBS z pożywką do znakowania siarczanów do końcowego stężenia 2 mikrogramów na mililitr. Po zakończeniu inkubacji zastąp pożywkę wolną od siarczanów 0,7 mililitra przygotowanej mieszaniny pożywki, zawierającej siarczan sodu S35 i dwupoziomowy siarczan VHH. Inkubuj komórki przez 1 godzinę w temperaturze 37 stopni Celsjusza w inkubatorze z 7,5% dwutlenkiem węgla, przeznaczonym do pracy z radioaktywnością.

Następnie usuń podłoże do etykietowania i umyj komórki dwa do trzech razy lodowatym 1X PBS na płycie chłodzącej lub na lodzie. Dodaj 1 mililitr buforu do lizy, uzupełnionego dwoma milimolowymi PMSF i koktajlem inhibitorów proteazy 1X. Inkubuj komórki przez 10 do 15 minut na kołyszącej się platformie w temperaturze 4 stopni Celsjusza. Następnie zeskrob i przenieś lizat do nowej 1,5-mililitrowej probówki, wymieszaj lizat i umieść go na rotatorze koniec po końcu w temperaturze 4 stopni Celsjusza na 10 do 15 minut. Wirować w temperaturze 10 000 g i w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez 10 minut, aby przygotować lizat pojądrowy. Przenieś lizat pojądrowy do 1,5-mililitrowej probówki zawierającej przygotowane kulki niklu i inkubuj na wytrząsarce typu end-over-end w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez 1 godzinę w celu wyizolowania nanociał.

Następnie umyj kulki trzykrotnie 1X PBS lub buforem do lizy, delikatnie granulując w 1000 g przez 1 minutę. Ostrożnie usuń cały bufor płuczący z kulek i dodaj 50 mikrolitrów buforu 2X sample. Gotować w temperaturze 95 stopni Celsjusza przez 5 minut. Następnie załaduj ugotowane kulki na żel midi 12,5% SDS-PAGE i uruchom zgodnie ze standardowym protokołem PAGE, aż barwnik referencyjny dotrze do końca żelu separującego. Utrwalić żel separacyjny w około 30 mililitrach buforu utrwalającego przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej. Umyj żel trzykrotnie około 50 mililitrami wody dejonizowanej, a następnie wysusz żel, zgodnie z opisem w protokole tekstowym. Po zakończeniu suszenia użyj imagera z ekranem luminoforowym, aby wykonać autoradiografię żelu.

10:42

Określanie ekspresji białek na powierzchni komórki i szybkości endocytów w pierwotnych kulturach astrocytów za pomocą biotynylacji

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:05

Wsteczne neuroanatomiczne śledzenie frenicznych neuronów ruchowych u myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:12

Wybór nanociał hamujących ukierunkowanych na transporter za pomocą elektrofizjologii opartej na membranie podpartej ciałem stałym (SSM)

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:52

Przepływ pracy obrazowania wysokotreściowego do badania kompleksów sygnalizacyjnych Grb2 za pomocą klonowania ekspresyjnego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

16:16

Genetycznie kodowane sondy molekularne do badania receptorów sprzężonych z białkiem G

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:56

Znakowanie różnicowe białek powierzchniowych i zinternalizowanych po karmieniu przeciwciałami żywych hodowanych neuronów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:57

Używanie znacznika miejsca wiązania α-bungarotoksyny do badania lokalizacji i transportu błony receptora GABA A

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

15:13

Wysokorozdzielcza czasoprzestrzenna analiza dynamiki receptorów za pomocą mikroskopii fluorescencyjnej pojedynczych cząsteczek

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:41

Wykorzystanie konstruktu TMEM184A znakowanego GFP w celu potwierdzenia tożsamości receptora heparyny

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:24

Wykrywanie internalizacji receptora sprzężonego z białkiem G aktywowanym ligandem za pomocą mikroskopii konfokalnej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026