$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Weź płytki do mikromiareczkowania zawierające seryjnie rozcieńczany antybiotyk aminoglikozydowy. Jedna z płytek zawiera NTBC, syntetyczny narkotyk.
Wprowadź Pseudomonas aeruginosa, bakterię Gram-ujemną i inkubuj.
Bakterie wytwarzają pyomelaninę – ochronny pigment zewnątrzkomórkowy – w studzienkach nieleczonych NTBC, podczas gdy lek zapobiega produkcji pyomelaniny.
Antybiotyk kationowy wiąże się z anionowymi lipopolisacharydami lub LPS na zewnętrznej błonie bakteryjnej, przemieszczając mostki kationowe i destabilizując błonę.
Po dostaniu się do bakterii antybiotyk wiąże się z miejscem aminoacylu lub miejscem A w podjednostce rybosomalnej 30S.
Związany antybiotyk zapobiega wiązaniu aminoacylo-tRNA i przemieszczaniu się rybosomów przez mRNA, zakłócając syntezę białek i hamując wzrost bakterii.
Po inkubacji zmierz gęstość optyczną kultury, aby ocenić wzrost bakterii.
Najniższe stężenie antybiotyku, które zapobiega rozwojowi bakterii, to minimalne stężenie hamujące lub MIC.
Podobne wartości MIC dla studzienek poddanych działaniu NTBC i niepoddanych działaniu NTBC wskazują na brak wpływu NTBC na wrażliwość bakterii na antybiotyki.
Na jeden dzień przed testem MIC należy przygotować kultury szczepów do badania w LB z 2-[2-nitro-4-trifluorometylo)benzoilo]-1-3 cykloheksanodionem lub NTBC i bez niego. W tej demonstracji wykorzystano reprezentatywny poziom 300 mikromolowców NTBC. Metoda miareczkowania służąca do oznaczania odpowiedniego stężenia NTBC jest opisana w tekście protokołu. Inkubuj kultury przez noc w temperaturze 37 stopni Celsjusza z napowietrzaniem. Następnego dnia przygotuj roztwory główne LB plus NTBC i LB plus DMSO do testu MIC.
Aby przetestować jeden antybiotyk dla jednego szczepu, dodaj 600 mikromolów NTBC do 2 mililitrów LB i wymieszaj, aby uzyskać roztwór główny NTBC. NTBC dodaje się w stężeniu 600 mikromolowców, ponieważ zostanie on rozcieńczony dwukrotnie po dodaniu inokulum, co daje końcowe stężenie 300 mikromolowców. Dodaj równoważną objętość DMSO pojazdu do 2 mililitrów LB i wymieszaj, aby uzyskać roztwór główny bez NTBC. Te dwa roztwory wzorcowe zostaną wykorzystane do tworzenia podstawowych roztworów antybiotyków, a także do ustawiania serii rozcieńczeń na płytkach 96-dołkowych.
Następnie przygotuj roztwory antybiotyków w roztworach głównych LB plus NTBC lub LB plus DMSO. Przygotować roztwór podstawowy gentamycyny plus minus NTBC w stężeniu 64 mikrogramów na mililitr. Przygotować roztwór podstawowy NTBC z kanamycyną plus minus o stężeniu 256 mikrogramów na mililitr. Przygotować roztwór podstawowy tobramycyny plus minus NTBC w stężeniu 8 mikrogramów na mililitr.
Po przygotowaniu 2X roztworów antybiotyku dodaj 100 mikrolitrów każdego roztworu antybiotyku do czterech dołków na 96-dołkowej płytce w rzędzie A. Na przykład gentamycynę należy umieścić w komórkach od A1 do A4. Kanamycynę należy umieścić w komórkach od A5 do A8, a tobramycynę należy umieścić w punktach od A9 do A12.
Dodać 50 mikrolitrów roztworu głównego LB plus NTBC lub LB plus DMSO do rzędów od B do H płytki 96-dołkowej. Upewnij się, że jedna tabliczka to LB plus NTBC, a jedna tabliczka to LB plus DMSO. Za pomocą nagłówka do mikropipet wykonać dwukrotne seryjne rozcieńczenia antybiotyków, przenosząc 50 mikrolitrów roztworu z rzędu A do rzędu B. Wymieszać roztwór, zmienić końcówki pipet i przenieść 50 mikrolitrów roztworu z rzędu B do rzędu C. Powtórz dla pozostałych rzędów.
Po rozcieńczeniu rzędu G usunąć 50 mikrolitrów roztworu z tego rzędu i wyrzucić. Użyj rzędu H jako bezantybiotykowej kontroli wzrostu bakterii. Odzyskaj kultury z nocy. Po umyciu wszystkich kultur w celu wyeliminowania biomelaniny obecnej w pożywce, zmierz OD600 kultur. Rozcieńczyć nocne kultury w LB.
Za pomocą mikropipety wielokanałowej dodać 50 mikrolitrów rozcieńczonej kultury bakteryjnej do odpowiednich studzienek. Dodaj bakterie do trzech studzienek dla każdego szczepu i stężenia antybiotyku. Dodaj 50 mikrolitrów LB do czwartej studzienki, aby działała jako kontrola zanieczyszczenia bakteryjnego. Przykryj 96-dołkowe płytki parafilmem i inkubuj przez około 24 godziny w temperaturze 37 stopni Celsjusza.
Następnego dnia zbadaj wizualnie płytki pod kątem rozwoju bakterii w studzienkach. MIC to najniższe stężenie antybiotyku, w którym nie obserwuje się wzrostu bakterii dla wszystkich trzech kontrprób każdego szczepu.