RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Zacznij od wielodołkowej płytki o płaskim dnie, zawierającej przylegający mysi mikroglej - komórki fagocytarne w mózgu.
Wprowadzić pożywkę bez surowicy zawierającą immunokompleksy. Kompleksy te składają się z przeciwciał przyłączonych do fosforylowanych agregatów białka Tau, które powstają podczas niektórych chorób neurodegeneracyjnych.
Agregaty Tau są znakowane wrażliwym na pH zielonym barwnikiem fluorescencyjnym.
Podczas inkubacji te immunokompleksy oddziałują z receptorami Fc komórek mikrogleju, ułatwiając ich pochłanianie.
Ten endosom zawierający immunokompleks łączy się z lizosomem, tworząc endolizosom. Kwaśne środowisko endolizosomu powoduje fluoryzację cząsteczek barwnika.
Umyć w celu usunięcia niezinternalizowanych immunokompleksów.
Potraktuj roztworem trypsyny-EDTA, aby odłączyć komórki.
Przenieś zawiesinę komórkową na dolną płytkę w kształcie litery U umieszczoną nad lodem, aby ustabilizować endolizosom. Osadzać komórki i wyrzucać supernatant.
Umyj i ponownie zawieś ogniwa za pomocą buforu FACS.
Za pomocą FACS zidentyfikuj pojedyncze żywe komórki i określ ilościowo intensywność zielonej fluorescencji, aby ocenić wychwyt Tau przez mikroglej.
W pierwszym dniu eksperymentu należy przygotować komórki BV-2, najpierw myjąc je 1x PBS w kolbie, w której zostały wyhodowane. Następnie inkubuj je z 0,05% trypsyną EDTA w temperaturze 37 stopni Celsjusza i 5% CO2 , aż oderwą się od kolby. Ponownie zawiesić komórki w pożywce hodowlanej, pipetując w górę i w dół 3 do 5 razy.
Policz komórki i przygotuj zawiesinę komórkową o końcowym stężeniu 100 000 komórek na mililitr w pożywce hodowlanej zawierającej 200 mikrogramów na mililitr heparyny. Dodaj 250 mikrolitrów tej zawiesiny komórek na studzienkę na 96-dołkową płytkę z płaskim dnem do hodowli tkankowej. Inkubować płytkę w temperaturze 37 stopni Celsjusza z 5% CO2 przez noc.
Po rozmrożeniu wcześniej przygotowanych agregatów barwnika pH Tau na lodzie, rozcieńczyć je w 65 mikrolitrach na stan pożywki wolnej od surowicy, aby uzyskać roztwór o natężeniu 500 nanomolowym. Rozcieńczyć przeciwciała w 65 mikrolitrach pożywki bez surowicy, aby osiągnąć podwójne pożądane stężenie. Wymieszaj agregaty barwnika pH Tau i przeciwciała w 96-dołkowej płytce z dnem w kształcie litery U. Uszczelnić tę płytkę rozcieńczającą i inkubować przez noc w temperaturze 37 stopni Celsjusza.
Następnego dnia wyjąć pożywkę z 96-dołkowej płytki z komórkami BV-2. Umyj komórki w każdej studzience 100 mikrolitrami temperatury pokojowej 1x PBS. Usunąć PBS z płytki ogniwa BV-2. Za pomocą pipety wielokanałowej przenieś 125 mikrolitrów immunokompleksów z płytki rozcieńczającej do każdego dołka 96-dołkowej płytki komórkowej BV-2 i inkubuj przez dwie godziny w temperaturze 37 stopni Celsjusza z 5% CO2 .
Po inkubacji usunąć immunokompleksy z komórek i umyć komórki w każdej studzience 100 mikrolitrami temperatury pokojowej 1x PBS. Po usunięciu 1x PBS dodaj 50 mikrolitrów 0,25% trypsyny-EDTA i inkubuj przez 20 minut w temperaturze 37 stopni Celsjusza z 5% CO2. Następnie dodaj 200 mikrolitrów pożywki hodowlanej i ponownie zawieś studzienkę, pipetując w górę iw dół, aby odłączyć komórki.
Przenieś komórki na 96-dołkową płytkę z dnem w kształcie litery U i odwiruj ją w temperaturze 400 razy g przez 5 minut w temperaturze 4 stopni Celsjusza. Umieść talerz na lodzie i usuń podłoże. Dodaj 150 mikrolitrów lodowatego 1x PBS i ponownie odwiruj przy 400 g przez 5 minut w temperaturze 4 stopni Celsjusza. Umieść płytkę na lodzie i ponownie umyj, usuwając wcześniej dodany 1x PBS i dodając 150 mikrolitrów lodowatego PBS na dołek. Odwirować ponownie w tych samych warunkach.
Umieść płytkę na lodzie i umyj komórki, usuwając wcześniej dodany PBS i dodając 150 mikrolitrów buforu FACS na studzienkę. Ponownie odwirować przy 400 g przez 5 minut w temperaturze 4 stopni Celsjusza. Umieść płytkę na lodzie i usuń wcześniej dodany bufor FACS, a następnie ponownie zawieś komórki w buforze FACS o pojemności 200 mikrolitrów na studzienkę. Natychmiast przystąp do analizy przez FACS, aby uzyskać 20 000 zdarzeń w bramie żywej komórki.
Related Videos
12:27
Related Videos
13.5K Views
06:43
Related Videos
12.5K Views
05:51
Related Videos
6.2K Views
04:11
Related Videos
476 Views
02:19
Related Videos
337 Views
07:38
Related Videos
18.8K Views
08:37
Related Videos
7.2K Views
07:19
Related Videos
9.9K Views
10:46
Related Videos
11.5K Views
12:55
Related Videos
9.2K Views