$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Rozpocznij od złożenia wstępnie poddanego obróbce szkiełka testowego mikromacierzy z wyraźnymi plamkami zawierającymi specyficzne dla białka przeciwciała wychwytujące do wykrywania wielu białek.
Załadować rozcieńczenia wzorca białkowego i wstępnie rozcieńczone próbki surowicy do oddzielnych studzienek. Rozcieńczenia te tworzą szereg stężeń białka w celu dokładnej oceny ilościowej.
Inkubować, aby ułatwić interakcje białko-przeciwciało. Umyj w celu usunięcia niezwiązanych białek, zdemontuj i wysusz szkiełko.
Odwrócić szkiełko testowe w aparacie zatrzaskowym zawierającym uwodniony szkiełko transferowe nakrapiane specyficznymi dla białka biotynylowanymi przeciwciałami wykrywającymi w tych samych pozycjach, co szkiełko testowe.
Zamknij urządzenie i naciśnij, aby zatrzasnąć szkiełka jedna na drugiej. Ułatwia to przenoszenie przeciwciał detekcyjnych do odpowiednich miejsc na szkiełku testowym, minimalizując reaktywność krzyżową.
Oddziel szkiełka, aby umożliwić interakcję przeciwciał detekcyjnych z białkami związanymi, tworząc immunokompleksy.
Ponownie złóż szkiełko testowe, przepłucz je i wprowadź streptawidynę sprzężoną z fluoroforem, wchodząc w interakcję z biotynylowanymi przeciwciałami.
Za pomocą skanera wykryj plamki fluorescencyjne w różnych miejscach, wskazując na wiele białek w próbce surowicy. Porównaj intensywność plamki ze standardem do oznaczania ilościowego białka.
Aby rozpocząć test immunologiczny, wyjmij przygotowane szkiełko testowe z zamrażarki i pozwól mu ogrzać się do temperatury pokojowej w szczelnie zamkniętej torbie przez 30 minut. Przygotować siedem seryjnie rozcieńczonych roztworów białek w PBS z 0,05% polisorbatem-20. Przygotować odpowiednio rozcieńczone roztwory próbek w tym samym buforze.
Zacisnąć 24-dołkową uszczelkę silikonową na szkiełku testowym w temperaturze pokojowej. Załaduj siedem rozcieńczeń białka do siedmiu z ośmiu studzienek w kolumnie. Załaduj bezbiałkowy PBS z 0,05% polisorbatem-20 do ostatniej studzienki tej kolumny. Załaduj roztwory próbek do pozostałych studzienek.
Potrząsaj szkiełkami z prędkością 450 obr./min przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej lub w 4 stopniach Celsjusza przez noc. Następnie umyj szkiełko trzy razy. Zdejmij uszczelkę i osusz szkiełko pod strumieniem gazowego azotu.
Następnie pozwól, aby szkiełko przenoszące przeciwciało detekcyjne ogrzało się do temperatury pokojowej przez 30 minut w szczelnie zamkniętej torbie. Następnie inkubuj szkiełka przez 20 minut w zamkniętej komorze o wilgotności względnej 60%, aby ponownie nawodnić matryce. Użyj kołków pogo, aby zamocować suwak transferu detekcji skierowany do góry w aparacie zatrzaskowym.
Umieść szkiełko testowe stroną zadrukowaną do dołu na kołkach pogo i wyrównaj szkiełko z prostymi kołkami. Zamknąć aparaturę i przenieść przeciwciała wykrywające na szkiełko testowe. Wyjąć szkiełka z aparatury i inkubować szkiełko testowe przez godzinę.
Clamp 24-dołkową silikonową uszczelkę do szkiełka i umyj szkiełko trzy razy. Następnie załaduj do każdej studzienki 80 mikrolitrów roztworu fluoroforu streptawidyny o stężeniu 2,5 mikrograma na mililitr w PBS. Potrząsaj szkiełkiem z prędkością 450 obr./min przez 20 minut.
Umyć szkiełko trzykrotnie 0,1% roztworem polisorbatu-20 w PBS i raz wodą destylowaną. Następnie zdejmij uszczelkę i osusz szkiełko. Zeskanuj szkiełko za pomocą skanera fluorescencyjnego i zmierz intensywność plamki. Określić granice wykrywalności i stężenia białek.