JoVE Encyclopedia of Experiments
Neuronauka
0 wyświetleń • 3:52 min • July 8th, 2025
Weźmy pobrane transgeniczne tkanki tłuszczowe okołoaortalne myszy zawierające fluorescencyjne komórki macierzyste pochodzące z tkanki tłuszczowej wyrażające białko fluorescencyjne, pochodzące z komórek grzebienia nerwowego lub NCC.
Dodaj pożywkę trawiącą i zmiel tkanki.
Przenieść zmieloną tkankę z pożywką wytrawiającą do probówki. Mechanicznie odciąć fragmenty.
Inkubować. Kolagenaza w pożywce trawi macierz zewnątrzkomórkową tkanki, uwalniając komórki macierzyste, adipocyty i fibroblasty.
Dodaj pożywkę zawierającą surowicę, aby zatrzymać aktywność kolagenazy. Odwirować i wyrzucić supernatant zawierający adipocyty.
Ponownie zawieś komórki w pożywce i przefiltruj, aby usunąć agregaty.
Odwirować filtrat i usunąć sklarowany nad osadem. Ponownie zawiesić komórki w buforze do lizy erytrocytów w celu lizy erytrocytów.
Dodaj bufor zawierający surowicę, aby zatrzymać lizę. Odwirować i wyrzucić supernatant.
Ponownie zawieś komórki w buforze.
Wykonaj sortowanie komórek aktywowane fluorescencją, aby wyizolować fluorescencyjne komórki macierzyste.
Wyizolowane komórki macierzyste mogą być wykorzystane do dalszych eksperymentów.
Przenieś pobraną tkankę tłuszczową do nowej 2-mililitrowej probówki do mikrowirówki, zawierającej 1 mililitr świeżo przygotowanej pożywki trawiącej i użyj nożyczek chirurgicznych do zmielenia tkanek. Przenieś zawiesinę tkanek do 50-mililitrowej probówki zawierającej 9 mililitrów świeżej pożywki do trawienia i użyj 1-mililitrowej pipety, aby 10-krotnie rozcierać tkanki.
Po uzyskaniu jednorodnego roztworu inkubować probówkę przez 30 do 45 minut w temperaturze 37 stopni Celsjusza i 100 obrotach na minutę, sprawdzając co 5 do 10 minut, aby zapobiec nadmiernemu trawieniu. Gdy po delikatnym zawirowaniu rurki można zaobserwować jasnożółty jednorodny roztwór tkanki tłuszczowej, należy przerwać trawienie za pomocą 5 mililitrów HDMEM uzupełnionego 10% płodową surowicą bydlęcą. Po dokładnym wymieszaniu odwirować próbkę tkanki tłuszczowej.
Frakcja komórek naczyniowych zrębu będzie widoczna jako brązowawy osad. Ponownie zawiesić osad w 10 mililitrach pożywki hodowlanej i przefiltrować zawiesinę komórek przez sitko do komórek o średnicy 70 mikrometrów.
Zebrać komórki przez kolejne odwirowanie i delikatnie ponownie zawiesić osad w 5 mililitrach buforu do lizy erytrocytów. Przenieś zawieszenie do 15-milimetrowej rury. Po 10 minutach zatrzymaj reakcję za pomocą dwóch wirowań w 10 mililitrach PBS, uzupełnionych 1% płodową surowicą bydlęcą.
Po drugim odwirowaniu ponownie zawiesić osad w 5 mililitrach pożywki hodowlanej na lodzie i zebrać komórki za pomocą końcowego odwirowania. Następnie ponownie zawieś komórki w 5 mililitrach bufora FACS w celu zliczenia.
Aby skonfigurować kulturę NCADSC po ich izolacji przez FACS zgodnie ze standardowymi protokołami, umieść komórki w stężeniu 5 x 103 komórek na cm2 w każdej studzience, 12-dołkowej płytce hodowlanej w kompletnej pożywce hodowlanej, w temperaturze 37 stopni Celsjusza i 5% dwutlenku węgla przez 20 do 24 godzin. Następnego dnia umyj komórki PBS o temperaturze 37 stopni Celsjusza i nakarm kulturę świeżą pożywką hodowlaną.
Niniejszy artykuł przedstawia szczegółowy protokół izolacji, hodowli oraz indukcji różnicowania adipogennego komórek macierzystych pochodzących z tkanki tłuszczowej wywodzących się z grzebienia neuronalnego (NCADSCs) z okołoaortalnej tkanki tłuszczowej myszy. Metoda ta wykorzystuje myszy transgeniczne wykazujące ekspresję białek fluorescencyjnych w komórkach grzebienia neuronalnego, co umożliwia precyzyjną identyfikację i sortowanie NCADSCs do dalszych zastosowań.
Izolacja mezenchymalnych komórek macierzystych pochodzących z tkanki tłuszczowej i grzebienia neuralnego (NCADSCs) z okołorticznej tkanki tłuszczowej myszy umożliwia walidację celów w modelach chorób metabolicznych i naczyniowych. Znakowanie fluorescencyjne i oczyszczanie metodą FACS zapewniają powtarzalny system ograniczania ryzyka mechanistycznego w terapiach komórkami macierzystymi. Podejście to zwiększa pewność prognostyczną w badaniach przesiewowych przedklinicznych poprzez zapewnienie homogeniczności komórkowej oraz możliwości śledzenia linii komórkowych.
Przebieg procesu izolacji wpisuje się w etap przejścia od wczesnej fazy odkrywania do badań przedklinicznych, zapewniając zdefiniowany materiał komórkowy do późniejszej walidacji funkcjonalnej oraz prac nad identyfikacją związków wiodących.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026