JoVE Encyclopedia of Experiments
Neuronauka
0 wyświetleń • 3:29 min • July 8th, 2025
Zacznij od zmodyfikowanych ludzkich iPSC zawierających gen różnicowania mioblastów lub kodujący białko MYOD, indukowany doksycykliną w pożywce komórek macierzystych zawierającej inhibitory kinazy Rho.
Przenieś komórki na płytki pokryte ECM i inkubuj, aby ułatwić przyczepienie komórek.
Tymczasem inhibitor inaktywuje wewnątrzkomórkowe enzymy kinazy Rho, zwiększając żywotność komórek.
Zastąp pożywkę pożywką z komórkami macierzystymi zawierającą doksycyklinę.
Doksycyklina wnika do komórek i wiąże się z białkami aktywującymi. Kompleksy te wiążą się z promotorem, indukując ekspresję genów w niektórych komórkach i wytwarzając białka MYOD, które wyzwalają różnicowanie komórek macierzystych w komórki mięśniowe.
Potraktuj komórki miogennym podłożem różnicującym zawierającym miogenne czynniki różnicowania, aby promować tworzenie miotubek, wielojądrowej komórki mięśniowej.
Później wprowadź pożywkę do indukcji neuronów z neuronalnymi czynnikami wzrostu.
Czynniki te różnicują pozostałe iPSC w neurony ruchowe i komórki Schwanna, które tworzą osłonkę mielinową wokół neuronów.
Na koniec zastąp pożywkę ośrodkiem połączenia nerwowo-mięśniowego, aby promować połączenia między neuronem ruchowym a rurką mięśniową, tworząc połączenia nerwowo-mięśniowe.
Umyj komórki 3 mililitrami PBS przed dodaniem 1 mililitra roztworu oddzielającego komórki do szalki Petriego. Po 10 minutach w temperaturze 37 stopni Celsjusza dodaj 3 mililitry pożywki z embrionalnych komórek macierzystych naczelnych do każdej studzienki i delikatnie pipetuj trzy razy, aby oddzielić komórki od szkiełek nakrywkowych.
Następnie połącz odłączone komórki macierzyste zawierające supernatanty w 50-mililitrowej stożkowej probówce do odwirowania i ponownie zawieś osad komórek macierzystych w 3 mililitrach świeżej pożywki embrionalnych komórek macierzystych naczelnych uzupełnionej 10-mikromolowym inhibitorem Y27632 ROCK do liczenia.
Następnie rozcieńczyć komórki do 2 x 105 komórek na mililitr pożywki, uzupełnionych stężeniem inhibitora ROCK, i zwrócić 2 mililitry komórek do każdego szkiełka nakrywkowego w każdym dołku 6-dołkowej płytki pokrytej macierzą zewnątrzkomórkową.
Po 24 godzinach zastąpić supernatant w każdym dołku 2 mililitrami świeżej pożywki z embrionalnych komórek macierzystych naczelnych uzupełnionej 1 mikrogramem na mililitr doksycykliny i umieścić płytkę z powrotem w inkubatorze hodowli komórkowych na 24 godziny.
Pod koniec inkubacji zastąpić supernatanty 2 mililitrami pożywki różnicującej uzupełnionej doksycykliną na dołek i umieścić płytkę z powrotem w inkubatorze do hodowli komórkowych na 10 dni.
Pod koniec inkubacji zastąpić supernatanty 2 mililitrami miogenicznej pożywki różnicującej uzupełnionej doksycykliną na dołek i umieścić płytkę z powrotem w inkubatorze hodowli komórkowej na dodatkowe 10 dni. Pod koniec inkubacji zastąpić supernatanty 2 mililitrami pożywki do połączeń nerwowo-mięśniowych na dołek i umieścić płytkę z powrotem w inkubatorze hodowli komórkowych na 30 dni.
Niniejsze badanie przedstawia metodę różnicowania zmodyfikowanych ludzkich iPSC w komórki mięśniowe, a następnie w motoneurony i komórki Schwanna. Proces ten obejmuje zastosowanie specyficznych pożywek i czynników w celu promowania przylegania komórek, ich różnicowania oraz tworzenia złączy nerwowo-mięśniowych.
Metoda ta umożliwia generowanie funkcjonalnych ludzkich złączy nerwowo-mięśniowych z engineered iPSCs, zapewniając skalowalny i powtarzalny system in vitro do modelowania połączeń nerwowo-mięśniowych oraz mechanizmów chorobowych. Wspiera ona walidację celów oraz ograniczanie ryzyka mechanistycznego w programach badawczych nad zaburzeniami neurodegeneracyjnymi i nerwowo-mięśniowymi, oferując platformę o wysokiej relewancji dla człowieka do oceny wpływu związków na tworzenie synaps oraz komunikację między neuronem a mięśniem. Etapowe podejście do różnicowania zwiększa pewność prognostyczną we wczesnej fazie odkrywania poprzez zmniejszenie zależności od modeli zwierzęcych i poprawę ciągłości translacyjnej.
Metoda ta wpisuje się w kontinuum odkrywania leków, od walidacji celu, poprzez identyfikację związku wiodącego, aż po ocenę przedkliniczną, szczególnie w ramach programów badawczych nad chorobami nerwowo-mięśnymi i neurodegeneracyjnymi.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026