Ustalenie konfiguracji całej komórki do dwufotonowego obrazowania wapnia wycinków mózgu

0 wyświetleń3:44 min • July 8th, 2025

Weź pipetę stymulacyjną zawierającą czerwone, niewrażliwe na wapń fluorofory w sztucznym płynie mózgowo-rdzeniowym lub ACSF.

Umieść pipetę w pobliżu docelowego neuronu w wycinku hipokampa.

Umieścić pipetę z elektrodą rejestrującą skąpaną w elektrolicie zawierającym czerwone niewrażliwe na wapń i zielone fluorofory wskaźnika wapnia w pobliżu celu.

Stosuj stałe nadciśnienie, aby na krótko zakłócić powierzchnię tkanki, wskazując bliskość celu.

Gdy dołek tworzy się na błonie neuronalnej, zwolnij ciśnienie, aby utworzyć uszczelnienie.

Zastosuj podciśnienie, aby dokręcić uszczelkę.

Ustabilizować potencjał membrany przy stałym napięciu ujemnym.

Kontynuuj z podciśnieniem, aby przerwać błonę, umożliwiając elektrolitom zawierającym fluorofor rozprzestrzenienie się w neuronach.

Wizualizuj czerwoną fluorescencję docelowego kolca dendrytycznego i ustaw pipetę stymulacyjną w jego pobliżu.

Zastosuj impulsy elektryczne, aby otworzyć kanały wapniowe.

Użyj mikroskopii dwufotonowej, aby uwidocznić przejściowe zmiany poziomu wapnia, na co wskazuje zielona fluorescencja.

Na tym etapie przenieś wycinek hipokampa do kąpieli pod obiektywem laserowego mikroskopu dwufotonowego. Ciągle perfundować kąpiel natlenionym ACSF normalnym. Następnie użyj mikroskopii kontrastowej z interferencją różnicową w podczerwieni, aby zlokalizować interesującą komórkę na podstawie jej rozmiaru, kształtu i położenia.

Następnie napełnij pipetę stymulującą normalnym roztworem ACSF zawierającym czerwony fluorofor. Opuść go na wierzch wycinka, tak aby końcówka znajdowała się w tym samym obszarze co komórka zainteresowania. Następnie napełnij pipetę z plastrem roztworem plastra i przymocuj ją do stopnia głównego. Umieść go nad plasterkiem tak, aby jego końcówka znajdowała się bezpośrednio nad komórką zainteresowania.

Następnie umieścić strzykawkę w trójdrożnym zaworze odcinającym i podłączyć ją do pipety z plastrem za pomocą plastikowej rurki. Wstrzykiwać stałe nadciśnienie do pipety z plastrem i utrzymywać kran w pozycji zamkniętej. Opuścić pipetę z plastrem, aż znajdzie się na wierzchu docelowej komórki. Po zetknięciu się z błoną komórkową usuń ciśnienie, obracając kran do pozycji otwartej.

Następnie należy zastosować lekkie podciśnienie do pipety z plastrem za pomocą pustej strzykawki włożonej w kurek, aż rezystancja pipety osiągnie 1 gigaom. W oknie testu membrany oprogramowania do akwizycji danych zaciśnij ogniwo na minus 60 miliwoltów. Kontynuuj stosowanie podciśnienia, aż opór pipety spadnie i zostanie osiągnięta cała konfiguracja kuwe.

Aby zarejestrować dendrytyczne stany przejściowe wapnia wywołane stymulacją elektryczną, zlokalizuj interesujący nas dendryt za pomocą czerwonego sygnału fluorescencyjnego. Umieść pipetę stymulującą na powierzchni plastra powyżej interesującego nas dendrytu. Powoli opuść pipetę stymulacyjną na odległość od 10 do 15 mikrometrów od dendrytu, minimalizując ruch, aby uniknąć zakłócenia konfiguracji całej komórki.

06:45

In vivo (in vivo) Szerokokątne i dwufotonowe obrazowanie wapnia za pomocą myszy przy użyciu dużego okna czaszki

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:21

Dwufotonowe obrazowanie wapnia aktywności przedmózgu u zachowujących się dorosłych danio

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:10

Obrazowanie wapnia metodą dwufotonową in vivo w warstwie 2/3 kory mózgowej myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

16:33

Funkcjonalne obrazowanie wapnia w rozwijających się sieciach korowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:14

Obrazowanie odpowiedzi wapniowych w neuronach z etykietą GFP w skrawkach mózgu myszy z obszaru podwzgórza

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:08

Jednoczesne optyczne i elektrofizjologiczne monitorowanie komórek neuronalnych w wycinkach mózgu

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:42

Jednoczesny zapis elektrofizjologiczny i obrazowanie wapnia neuronów jądra nadskrzyżowaniowego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:19

Obrazowanie wewnątrzkomórkowych sygnałów Ca2+ w astrocytach prążkowia od dorosłych myszy przy użyciu genetycznie kodowanych wskaźników wapnia

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:29

Wielofotonowe wewnątrzkomórkowe obrazowanie sodu w połączeniu z ogniskowym rozpakowywaniem glutaminianu za pośrednictwem promieniowania UV w neuronach piramidowych CA1

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:05

Modyfikacja kolikulo-wzgórzowo-korowego wycinka mózgu myszy, obejmująca drukowanie 3D elementów komory i wieloskalowe obrazowanie optyczne

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026