Rejestrowanie prądów całokomórkowych za pomocą GABA Puffing w wycinku mózgu myszy

0 wyświetleń3:37 min • July 8th, 2025

Zacznij od zabezpieczonego wycinka kory przedczołowej mózgu w sztucznym płynie mózgowo-rdzeniowym lub aCSF w komorze rejestracyjnej zestawu elektrofizjologicznego.

Ten aCSF zawiera bloker kanału jonów sodu, który hamuje kanały sodowe w neuronach.

Umieść mikropipetę wypełnioną kwasem gamma-aminomasłowym lub GABA nad neuronem postsynaptycznym.

Umieść mikropipetę rejestrującą wypełnioną roztworem jonowym z elektrodą w pobliżu tego samego neuronu.

Zastosuj słabe ssanie, aby stworzyć szczelne uszczelnienie z małym fragmentem błony neuronalnej.

Następnie zastosuj silne ssanie, aby przerwać załataną błonę, umożliwiając dostęp do wnętrza neuronu.

Dostarcz GABA, neuroprzekaźnik hamujący, który wiąże się z kanałem chlorkowym bramkowanym ligandem na neuronach postsynaptycznych.

Otwiera to kanał i umożliwia jonom chlorkowym przedostanie się do neuronów, generując hamujący prąd postsynaptyczny.

Przy stałym napięciu zarejestruj prąd postsynaptyczny. Wzrost hamującego prądu postsynaptycznego odzwierciedla rolę GABA w hamowaniu aktywności neuronalnej.

Przenieś wycinek mózgu do komory rejestracyjnej za pomocą pipety Pasteura z cienką końcówką naciętą tak, aby pasował do rozmiaru wycinka. Następnie umieść platynową kotwicę nad plasterkiem, aby przytrzymać go na platformie. Następnie napełnij mikropipety rejestrujące roztworem wewnętrznym i napełnij mikropipety dmuchane GABA o stężeniu 10 mikromolowym, 50 mikromolowym i 100 mikromolowym lub aCSF jako kontrolę nośnika.

Aby zapobiec zablokowaniu przez zanieczyszczenia, przed zanurzeniem elektrody rejestrującej w aCSF należy zastosować lekkie nadciśnienie za pomocą jednomililitrowej strzykawki. Pod mikroskopem ustaw elektrodę rejestrującą i mikropipetę zaciągającą się tak, aby końcówki znalazły się na środku monitora. Następnie zidentyfikuj neuron docelowy. Wyreguluj ostrość mikroskopu, stopniowo obniżając mikropipetę dmuchaną i umieść ją nad neuronem rejestrującym pod kątem 45 stopni.

Zachowaj odległość między końcówką mikropipety dmuchanej a docelowym neuronem w zakresie od 20 do 40 mikrometrów. Powoli i ostrożnie zbliż się do neuronu z elektrodą rejestrującą, a następnie zwolnij nadciśnienie. Zastosuj słabe i krótkie ssanie przez rurkę podłączoną do uchwytu elektrody, aby utworzyć uszczelnienie gigaomowe. Utrzymuj napięcie na poziomie zero miliwoltów.

Po utworzeniu uszczelki gigaomowej należy skompensować szybką i wolną pojemność ręcznie lub automatycznie. Następnie zastosuj krótkie i mocne ssanie przez rurkę, aby przejść do trybu całej komórki. Następnie rejestruj wywołane prądy IPSC w trybie cęgów napięciowych.

Dostarczaj pojedyncze lub sparowane zaciągnięcia GABA przez mikropipetę puff sterowaną przez główny generator krokowy z ośmioma napięciami. Zmień czas trwania zaciągnięcia, aby uzyskać najlepsze wyniki wywołanych prądów IPSC i zmierz wywołane prądy IPSC.

10:24

Elektrofizjologiczna i morfologiczna charakterystyka mikroobwodów neuronalnych w ostrych wycinkach mózgu przy użyciu sparowanych nagrań patch-clamp

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:39

Zapisy całokomórkowe patch-clamp do elektrofizjologicznego oznaczania selektywności jonowej w rodopsynach kanałowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:16

Metody odkrywania nowych związków modulujących neuroprzekaźnictwo receptora kwasu gamma-aminomasłowego typu A

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:30

Podwójne rejestracje somatyczne z neuronów wydzielających hormon uwalniający gonadotropiny (GnRH) zidentyfikowanych za pomocą zielonego białka fluorescencyjnego (GFP) w skrawkach podwzgórza

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:59

Prądy pojedynczego kanału i prądy toniczne aktywowane przez GABA w skrawkach mózgu szczura

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

16:38

Podwójne rejestracje elektrofizjologiczne odpowiedzi astroglialnych i neuronalnych wywołanych synaptycznie w ostrych skrawkach hipokampa

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:05

Fotostymulacja i zapisy klamer całokomórkowych neuronów w wycinkach hipokampa myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:55

Pomiar aktywności neuronalnej w wycinku mózgu myszy po długotrwałej inkubacji

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:04

Lokalne zastosowanie leków do badania funkcji nikotynowego receptora acetylocholiny w wycinkach mózgu myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:23

Nagrania z użyciem zacisku krosowego całych komórek w wycinkach mózgu

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026