-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Encyclopedia of Experiments
Neuroscience
Zapisy elektrofizjologiczne do oceny regeneracji neuronów w współhodowanych wycinkach rdzenia krę...
Zapisy elektrofizjologiczne do oceny regeneracji neuronów w współhodowanych wycinkach rdzenia krę...
Encyclopedia of Experiments
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
Encyclopedia of Experiments Neuroscience
Electrophysiological Recordings For Assessing Neuronal Regenerations in Co-cultured Spinal Cord Slices

Zapisy elektrofizjologiczne do oceny regeneracji neuronów w współhodowanych wycinkach rdzenia kręgowego

Protocol
480 Views
04:21 min
July 8, 2025
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Transcript

Weźmy matrycę wieloelektrodową pokrytą polimerem lub MEA, ze współhodowanymi embrionalnymi wycinkami rdzenia kręgowego umieszczonymi w dwóch oddzielnych strefach, co pozwala na jednoczesne nagrywanie z obu warstw.

Wycinek pokazuje zregenerowane połączenia nerwowe w obszarze wcześniej zmienionym chorobowo.

Umieść MEA w komorze rejestracyjnej zawierającej zewnątrzkomórkowy roztwór bogaty w jony i składniki odżywcze, aby utrzymać przeżycie neuronów.

Pozwól systemowi ustabilizować się, ułatwiając adaptację neuronów i komunikację.

Neurony komunikują się za pomocą sygnałów elektrycznych zwanych potencjałami czynnościowymi, które są rejestrowane przez pobliskie elektrody w MEA.

Indywidualne sygnały z każdej elektrody są łączone, wytwarzając sygnał elektryczny z każdej warstwy.

Regularnie wymieniaj roztwór zewnątrzkomórkowy, aby utrzymać stabilność neuronów.

Dodaj roztwór zewnątrzkomórkowy z inhibitorami, które blokują hamujące receptory neuroprzekaźników na błonach neuronalnych, utrzymując aktywność neuronów przez dłuższy czas.

Porównaj aktywność elektryczną z obu wycinków. Zsynchronizowany sygnał elektryczny między dwoma warstwami potwierdza połączenia synaptyczne i udaną regenerację neuronów.

Umieścić szalkę Petriego z pokrytym układem mikroelektrod w środku pod mikroskopem stereoskopowym. Ustaw ostrość matrycy i wyśrodkuj sześciomikrolitrową kroplę osocza kurzego na matrycy elektrod. Za pomocą małej szpatułki ostrożnie wsuń dwa odcinki rdzenia kręgowego tak, aby ich brzuszne strony były skierowane do siebie, do kropli osocza.

Następnie dodaj osiem mikrolitrów trombiny wokół kropelki osocza kurczaka. Następnie za pomocą końcówki pipety ostrożnie wymieszaj i rozprowadź mieszaninę osocza kurczaka i trombiny. Tuż przed tym, jak mieszanina osocza i trombiny kurczaka stanie się zbyt żylasta i zacznie krzepnąć, odessaj nadmiar płynu. Następnie przykryj szalkę Petriego i umieść ją w wilgotnej komorze.

Umieść komorę w inkubatorze w temperaturze 37 stopni Celsjusza na około godzinę. Po inkubacji ostrożnie dodaj do próbki 10 mikrolitrów pożywki. Zakryj szalkę Petriego i umieść ją z powrotem w inkubatorze na dodatkowe 45 minut. Następnie umieść każdy z zestawów kultur wieloelektrodowych w rurze rolkowej i dodaj trzy mililitry pożywki. Zamknij szczelnie pokrywę i umieść rurkę rolkową w bębnie rolkowym. Obróć bęben z prędkością 1 do 2 obr./min w inkubatorze w temperaturze 37 stopni Celsjusza.

Za pomocą sterylnych kleszczyków z gumową końcówką wyjmij zestawy hodowli wieloelektrodowych z rurki rolkowej i umieść je na szalce Petriego pod mikroskopem stereoskopowym. Ustaw ostrość tkanki i sprawdź, czy dwie plastry są połączone. Następnie przytrzymaj zespół stabilnie i umieść ostrze skalpela w rowku układu wieloelektrodowego w pobliżu plasterków tkanki. Trzymaj skalpel raczej poziomo, a następnie podnieś rękojeść skalpela do góry, ale pozwól ostrzu skalpela pozostać w rowku układu w taki sposób, aby ostrze toczyło się od podstawy do końca, przecinając tkankę, zakrywając rowek.

W razie potrzeby odciąć wszelkie pozostałe połączenia tkankowe za pomocą końcówki igły o rozmiarze 25. Pracuj tylko w obszarze w rowku i nie dotykaj delikatnych krawędzi. Włóż zestawy hodowli wieloelektrodowych z powrotem do rurki rolkowej i dodaj trzy mililitry świeżej pożywki do kultur. Następnie umieść rurkę rolkową z powrotem na bębnie rolkowym w inkubatorze w temperaturze 37 stopni Celsjusza.

Zamontuj zespół kultur z matrycą wieloelektrodową w komorze zapisu i nałóż około 500 mikrolitrów roztworu zewnątrzkomórkowego na matrycę. Następnie zamontuj zespół na mikroskopie. Odczekaj 10 minut, aż system się ustabilizuje, a następnie rejestruj podstawową spontaniczną aktywność z każdej z elektrod wykrywających aktywność przez 10 minut. Powtórz nagrania w sumie dwa razy.

Aby zapewnić stabilne warunki zewnątrzkomórkowe, wymieniaj roztwór zewnątrzkomórkowy po każdej sesji nagraniowej. W razie potrzeby należy odhamować sieć, stosując roztwór zewnątrzkomórkowy zawierający jeden mikromol strychniny i 10 mikromolów gabazyny i odczekać co najmniej dwie minuty przed zarejestrowaniem aktywności elektrycznej.

Related Videos

Wieloelektrodowe zapisy pooperacyjnej tkanki korowej ludzkiego epilepsji

13:14

Wieloelektrodowe zapisy pooperacyjnej tkanki korowej ludzkiego epilepsji

Related Videos

21.2K Views

Analiza elektrofizjologiczna ludzkich kardiomiocytów pochodzących z pluripotencjalnych komórek macierzystych (hPSC-CM) przy użyciu macierzy wieloelektrodowych (MEA)

11:13

Analiza elektrofizjologiczna ludzkich kardiomiocytów pochodzących z pluripotencjalnych komórek macierzystych (hPSC-CM) przy użyciu macierzy wieloelektrodowych (MEA)

Related Videos

20.8K Views

Ocena wpływu związków zaburzających funkcjonowanie układu hormonalnego na rozwój funkcji sieci neuronalnej kręgowców z wykorzystaniem układów wieloelektrodowych

08:28

Ocena wpływu związków zaburzających funkcjonowanie układu hormonalnego na rozwój funkcji sieci neuronalnej kręgowców z wykorzystaniem układów wieloelektrodowych

Related Videos

6.4K Views

Elektrofizjologia rdzenia kręgowego II: Wytwarzanie zewnątrzkomórkowej elektrody ssącej

08:47

Elektrofizjologia rdzenia kręgowego II: Wytwarzanie zewnątrzkomórkowej elektrody ssącej

Related Videos

15.5K Views

Badanie regeneracji funkcjonalnych połączeń między wycinkami rdzenia kręgowego przy użyciu układu wieloelektrodowego

03:52

Badanie regeneracji funkcjonalnych połączeń między wycinkami rdzenia kręgowego przy użyciu układu wieloelektrodowego

Related Videos

372 Views

Oparta na mikroelektrodach ocena sieci neuronalnych w wycinkach rdzenia kręgowego myszy

03:46

Oparta na mikroelektrodach ocena sieci neuronalnych w wycinkach rdzenia kręgowego myszy

Related Videos

754 Views

Elektrofizjologiczne nagrania przeprogramowanych neuronów w wycinku mózgu myszy

02:14

Elektrofizjologiczne nagrania przeprogramowanych neuronów w wycinku mózgu myszy

Related Videos

382 Views

Ocena tworzenia połączeń nerwowych w kokulturze za pomocą zapisów elektrofizjologicznych

02:17

Ocena tworzenia połączeń nerwowych w kokulturze za pomocą zapisów elektrofizjologicznych

Related Videos

453 Views

Badanie regeneracji funkcjonalnej w organotypowych kokulturach rdzenia kręgowego hodowanych na matrycach wieloelektrodowych

08:25

Badanie regeneracji funkcjonalnej w organotypowych kokulturach rdzenia kręgowego hodowanych na matrycach wieloelektrodowych

Related Videos

9.5K Views

Badanie regeneracji aksonów ssaków: elektroporacja in vivo zwoju korzenia grzbietowego dorosłej myszy

06:17

Badanie regeneracji aksonów ssaków: elektroporacja in vivo zwoju korzenia grzbietowego dorosłej myszy

Related Videos

8.9K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code