Obrazowanie wapnia w poszczególnych neuronach regulujących składanie jaj u Caenorhabditis elegans

0 wyświetleń3:01 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Weźmy transgeniczne robaki Caenorhabditis elegans rosnące na bloku agaru.

Robaki te wyrażają wskaźnik wapnia, GCaMP5, i niewrażliwe na wapń białko fluorescencyjne, mCherry, w neuronach, które regulują zachowanie związane ze składaniem jaj.

Zamontuj robaki na odwróconym stoliku mikroskopowym.

Wizualizacja fluorescencji GCaMP5 i mCherry.

Przed uwolnieniem komórki jajowej neurony zostają aktywowane, otwierając kanały wapniowe bramkowane napięciem, które umożliwiają napływ wapnia.

Wewnątrzkomórkowy wapń wiąże się z GCaMP5, zmieniając jego konformację i zwiększając fluorescencję.

Tymczasem fluorescencja mCherry pozostaje niezmieniona, co umożliwia śledzenie neuronu.

Aktywowane neurony uwalniają neuroprzekaźniki, które wiążą się z określonymi receptorami mięśniowymi, wywołując uwalnianie komórek jajowych.

Po uwolnieniu kanały wapniowe zamykają się, zmniejszając napływ wapnia i fluorescencję GCaMP5.

Następnie uchwyć obrazy w jasnym polu, aby obserwować ruch robaków.

Zmniejszony ruch występuje z powodu skurczów mięśni przed uwolnieniem jaja.

Po uwolnieniu komórki jajowej mięśnie rozluźniają się, przywracając normalny ruch.

Zmierz współczynnik fluorescencji GCaMP5-mCherry i prędkość robaka, aby wykryć zdarzenia uwalniania jaj.

W przypadku ratiometrycznego obrazowania wapniowego na karcie Sekwencja kliknij przycisk Start, aby rozpocząć nagrywanie, i śledź robaka za pomocą joysticka, utrzymując ostrość na interesujących komórkach i synapsach w środku pola widzenia. W momencie rozpoczęcia zapisu fluorescencyjnego wyzwalacze są wysyłane do oczekującej kamery w jasnym polu i kontrolera sceny, które rozpoczynają zbieranie zsynchronizowanych obrazów i pozycji sceny.

Kliknij przycisk Statystyki w oknie histogramu, aby wyświetlić statystyki pikseli dla każdego kanału. Dostosuj moc diody LED, aby zapewnić maksymalną jednopikselową fluorescencję mCherry na końcu presynaptycznym większą lub równą 8,000 zliczeń w kanale czerwonym, co daje około 12-bitowy zakres dynamiki nad tłem. Sygnały reporterowe wapnia na końcu presynaptycznym podczas spoczynku lub niskiego poziomu wapnia powinny wynosić około 2500 zliczeń w zielonym kanale.

Rejestruj zachowanie, aż do osiągnięcia jednego aktywnego stanu składania jaj. Następnie zapisz 10-minutowy podzbiór zawierający 6 000 klatek przed pierwszym zdarzeniem składania jaj i 6 001 klatek po pierwszym zdarzeniu składania jaj. Należy pamiętać, aby zachować ten sam podzbiór obrazów w jasnym polu zachowania robaka i punktów czasowych pozycji x,y stage lub precyzyjna synchronizacja strumieni danych zostanie utracona.

08:10

Pomiar wskaźników zużycia tlenu w nienaruszonym Caenorhabditis elegans

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:14

Obrazowanie kolców dendrytycznych u Caenorhabditis elegans

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:41

Ręczna sekcja jelit Caenorhabditis elegans

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:23

Obrazowanie wapnia: metoda wizualizacji aktywności neuronalnej u żywych C. elegans

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:17

Obrazowanie subkomórkowej dynamiki wapnia w neuronach Caenorhabditis elegans

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:06

In vivo (in vivo) Obrazowanie wapnia neuronów u C. elegans

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:51

Mikrokomory agarozowe do długoterminowego obrazowania wapnia Caenorhabditis elegans

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:45

Obrazowanie wapnia u Drosophila podczas aktywacji jaj

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:31

Wykorzystanie dostosowanego mikroprzepływowego chipa węchowego do obrazowania aktywności neuronalnej w odpowiedzi na feromony w męskich neuronach głowy C. elegans

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:26

Ratiometryczne obrazowanie wapnia poszczególnych neuronów w zachowaniu Caenorhabditis elegans

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026