Rejestracja aktywności neuronalnej rozwiniętej tkanki hipokampa za pomocą penetrującego układu mikroelektrod

0 wyświetleń3:25 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Weźmy komorę rejestracyjną zawierającą penetrujący układ mikroelektrod lub PMEA, który rejestruje sygnały elektryczne z tkanki nerwowej.

Podłączyć wlot do butelek zawierających natleniony aCSF i natleniony aCSF z 4-aminopirydyną lub 4-AP za pomocą złącza trójzaworowego.

Podłącz wylot do rury próżniowej.

Podgrzej rurociąg między wlotem a zaworem do temperatury fizjologicznej.

Przy zamkniętym wlocie i wylocie przenieś rozłożony hipokamp do komory.

Pod mikroskopem ustaw hipokamp na PMEA.

Wyjmij roztwór z komory.

Umieść kotwicę tkankową, aby przytrzymać tkankę na elektrodach PMEA.

Otwórz wlot i wylot, aby uruchomić przepływ CSF.

Inkubuj tkankę za pomocą aCSF, aby umożliwić aklimatyzację neuronów.

Następnie przepłyń w CSF z 4-AP. 4-AP blokuje neuronalne kanały potasowe, wydłużając czas trwania potencjału czynnościowego.

PMEA wychwytuje sygnały elektryczne proporcjonalne do wzmocnionego odpalania neuronów z neuronów hipokampa.

W tej procedurze należy napełnić jedną butelkę zwykłym aCSF, a drugą butelką 4-AP aCSF. Bąbelki roztworów z 95% tlenu i 5% dwutlenku węgla od początku eksperymentów. Użyj łącznika trójzaworowego, aby kontrolować, które rozwiązanie zostanie wybrane podczas eksperymentu.

Następnie podłącz rurkę próżniową do wylotu komory, aby usunąć roztwór do pojemnika na kurz. Podgrzej rurociąg przed dostarczeniem roztworu do komory rejestracyjnej i utrzymuj go w kontrolowanej temperaturze 35 stopni Celsjusza. Po zamknięciu wlotu i wylotu komory nagrywania, za pomocą specjalnie wykonanego szklanego zakraplacza do pipet przenieś rozłożony hipokamp do komory nagrywającej.

Pod mikroskopem umieść rozłożony hipokamp oczywistą stroną skierowaną w dół, obszarem CA3 skierowanym na zewnątrz i polem CA1 skierowanym w stronę badacza. Ostrożnie odessać roztwór z komory za pomocą pipety próżniowej od krawędzi komory rejestrującej, aż komora wyschnie, a tkanka położy się na matrycy.

Następnie ostrożnie umieść wykonaną na zamówienie kotwicę tkankową na wierzchu tkanki, aby utrzymać rozłożony hipokamp na tablicy. Napełnij komorę nagrywania kilkoma kroplami roztworu. Stopniowo otwieraj wlot i wylot, aby dostosować natężenie przepływu do około dwóch kropli na sekundę w komorze kroplowej kroplówki.

Inkubować tkankę w komorze rejestracyjnej z normalnym płynem CSF przez około jedną minutę. Następnie przełącz dopływ roztworu na rozpuszczony 4-AP aCSF i odpowiednio wyreguluj natężenie przepływu. Inkubować tkankę w rozpuszczonym w 4-AP aCSF przez około 5 do 10 minut przed nagraniem.

09:39

Stymulacja prądem stałym i wieloelektrodowa rejestracja aktywności podobnej do napadów w przygotowaniu do wycinka mózgu myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:24

Rejestracja i modulacja aktywności padaczkowej w wycinkach mózgu gryzoni sprzężonych z układami mikroelektrod

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

16:38

Podwójne rejestracje elektrofizjologiczne synaptycznie wywołanych odpowiedzi astroglialnych i neuronalnych w ostrych skrawkach hipokampa

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:26

Technika zapisu oparta na elektroencefalografii do rejestrowania aktywności padaczkowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:15

Monitorowanie aktywności elektrycznej neuronów wywołanej napadami padaczkowymi w wycinkach mózgu za pomocą układów mikroelektrod

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:17

Równoczesne zapisy potencjału elektroencefalograficznego i lokalnego potencjału pola u znieczulonego szczura

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:58

Procedura wszczepiania zorganizowanych układów mikroprzewodów do nagrań pojedynczych jednostek u obudzonych, zachowujących się zwierząt

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:48

Propagacja aktywności neuronalnej w rozłożonym preparacie hipokampa z penetrującym układem mikroelektrod

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:46

Ostre zapisy elektrofizjologiczne in vivo lokalnych potencjałów pola i aktywności wielocząsteczkowej ze szlaku hiperbezpośredniego u znieczulonych szczurów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:10

Rejestrowanie przestrzennie ograniczonych oscylacji w hipokampie zachowujących się myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026