Analiza uwalniania i klirensu glutaminianu w pojedynczej synapsie neuronu w wycinku mózgu myszy

0 wyświetleń4:10 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od zestawu elektrofizjologicznego zawierającego wycinek przodomózgowia myszy zanurzony w natlenionym aCSF.

aCSF zawiera bloker kanałów jonowych, który selektywnie hamuje kanały jonów sodu, zapobiegając pobudzeniu neuronów wywołanemu sodem.

Neurony korowe wyrażają fluorescencyjne białka czujnikowe wykrywające glutaminian.

Zlokalizuj pojedynczy neuron presynaptyczny aksonalny zdolny do uwalniania glutaminianu, pobudzającego neuroprzekaźnika, w synapsie, połączeniu, w którym łączy się z neuronami postsynaptycznymi.

Umieść elektrodę stymulacyjną w pobliżu tego butonu i zastosuj prądy depolaryzujące.

To pobudza neuron presynaptyczny, powodując napływ jonów wapnia i ułatwiając uwalnianie glutaminianu.

Rozpocznij rejestrację intensywności fluorescencji wokół wybranego bulionu.

Uwolniony glutaminian oddziałuje z białkami sensorycznymi i receptorami na neuronach postsynaptycznych.

W międzyczasie oświetl wybrany obszar światłem laserowym, powodując fluoryzację białek czujnika związanych z glutaminianem; rosnąca intensywność fluorescencji wskazuje na uwalnianie glutaminianu.

Z biegiem czasu glutaminian dysocjuje od białek czujnikowych i dostaje się do astrocytu, powodując spadek intensywności fluorescencji, co wskazuje na klirens glutaminianu.

Aby zobrazować uwalnianie i usuwanie glutaminianu za pomocą mikroskopowych napędów XY, umieść badany czujnik glutaminianu w pobliżu środka pola widzenia. Po zatrzymaniu akwizycji kliknij na obrazek lewym przyciskiem myszy, aby określić pozycję XY spoczywającego środka boutonu. Zostaną wyświetlone współrzędne XY ustawionego kursora.

Korzystając z danych kalibracyjnych, oblicz współrzędne miejsca, do którego powinna zostać wysłana wiązka laserowa w celu wzbudzenia fluorescencji czujnika glutaminianu, korzystając ze wzorów zgodnie ze wskazanymi. Aby utworzyć sekwencję jednopunktową w oprogramowaniu do sterowania laserem, wybierz punkt w polu Dodaj do sekwencji na stronie Sekwencja oprogramowania sterującego laserem i ustaw przebiegi i opóźnienie biegu na 0, a sekwencję na TLL. Następnie kliknij przycisk Rozpocznij sekwencję.

W oprogramowaniu do sterowania kamerą wybierz odpowiednie parametry obrazowania, a jako tryb wyzwalania wybierz zewnętrzny Start. Kliknij opcję Take Signal (Weź sygnał) w oprogramowaniu do sterowania kamerą. Następnie należy zainicjować protokół eksperymentalny określony dla urządzenia wyzwalającego i przeprowadzić próbę protokołu eksperymentalnego z odpowiednią osią czasu, tak aby kamera uzyskała 400 klatek o częstotliwości 2,48 kiloherca podczas 1 próby z częstotliwością powtarzania 0,1 Hz lub niższą.

Aby zidentyfikować patologiczne synapsy, włącz procedury podnoszenia i oblicz średnią intensywność fluorescencji oraz odchylenie standardowe dla wybranego obszaru zainteresowania w spoczynku. Określ i obramuj obszar zajmowany przez piksele o intensywności fluorescencji w spoczynku większej niż średnia plus 3 odchylenia standardowe, a następnie określ wirtualną średnicę w mikronach, przyjmując okrągłą formę obszaru super progu.

Wykreślić intensywność fluorescencji w funkcji czasu jako różnicę między rzeczywistą wartością intensywności fluorescencji a wartością intensywności fluorescencji w spoczynku podzieloną przez wartość intensywności fluorescencji w spoczynku. Określ szczytową amplitudę odpowiedzi fluorescencyjnej. Wykonać dopasowanie monowykładnicze dla rozpadu od szczytu odpowiedzi fluorescencyjnej i wyznaczyć stałą czasową rozpadu, tau d.

Aby oszacować maksymalną amplitudę w danej synapsie, wybierz piksel o największej zmianie intensywności fluorescencji, który jest najlepszym wskaźnikiem obciążenia glutaminianu prezentowanego maszynerii klirensu synapsy.

06:16

Wizualizacja rozgałęzień aksonów wzgórzowo-korowych i tworzenia synaps w kokulturach organotypowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:56

Test na płytce do pomiaru endogennego uwalniania monoamin w ostrych wycinkach mózgu

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:46

Obrazowanie mitochondrialnego wychwytu Ca2+ w astrocytach i neuronach przy użyciu genetycznie kodowanych wskaźników Ca2+ (GECI)

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:55

Pomiar aktywności neuronalnej w wycinku mózgu myszy po długotrwałej inkubacji

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:13

Jednoczesne obrazowanie dynamiki mikrogleju i aktywności neuronalnej u wybudzonej myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:42

Wyznaczanie przebiegu czasowego klirensu glutaminianu za pomocą analizy dekonwolucyjnej prądów transporterowych astrocytarnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:53

Przygotowanie ostrych wycinków mózgu przy użyciu zoptymalizowanej metody odzysku ochronnego N-metylo-D-glukaminy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:49

Połączone znakowanie immunologiczne repliki optogenetycznej i zamrażalniczo-łamliwej w celu zbadania specyficznego dla danych wejściowych rozmieszczenia receptorów glutaminianu w ciele migdałowatym myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:46

Wykorzystanie bioczujników opartych na enzymach do pomiaru toniku i glutaminianu fazowego w mysich modelach choroby Alzheimera

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:44

Ocena gęstości synaps w wycinkach mózgu gryzoni w hipokampie

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026