Jednoczesne optyczne i elektrofizjologiczne monitorowanie komórek neuronalnych w wycinkach mózgu

0 wyświetleń4:08 min. • July 8th, 2025

Zacznij od perfuzji napowietrzonego sztucznego płynu mózgowo-rdzeniowego lub aCSF przez siatkę w komorze perfuzyjnej.

Przenieś wycinek mózgu zawierający neurony wykazujące ekspresję białka fluorescencyjnego i zakotwicź go za pomocą urządzenia z platynowym przewodem.

Obróć siatkę siatki w celu wyrównania.

Opuść sondę wielokanałową w kierunku wycinka.

Dostosuj kostkę filtra do wizualizacji białek fluorescencyjnych.

Obróć plasterek, aby wyrównać sondę.

Dostosuj wysokość sondy poniżej powierzchni tkanki.

Teraz wykonaj perfuzję aCSF i skup się na fluorescencyjnie znakowanych neuronach.

Używając obiektywu o dużej mocy, skup się na tkance i wyreguluj światło wzbudzenia.

Użyj odpowiedniego filtra światła, aby zaobserwować fluorescencję w neuronach.

Wyreguluj soczewkę obiektywu, aby zrobić miejsce na pipetę z plastrem i zastosuj nadciśnienie.

Następnie umieść pipetę w pobliżu neuronu, aby utworzyć wgłębienie błony.

Na koniec zastosuj słabe ssanie, aby utworzyć uszczelnienie membrany, a następnie silne ssanie, aby przerwać membranę i uzyskać nagrania elektryczne z docelowego neuronu.

Aby umieścić sondę wielokanałową w szkiełku tkanki mózgowej ex vivo, perfuse eksperymentalny ACSF z pęcherzyk

Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych

Zaloguj się

Przeglądaj więcej filmów

monitorowanie optyczne