JoVE Encyclopedia of Experiments
Neuronauka
0 wyświetleń • 4:49 min • July 8th, 2025
Zacznij od znieczulonej, genetycznie zmodyfikowanej myszy z głową zabezpieczoną w adapterze do trzymania głowy.
Mózg myszy wyraża białko fluorescencyjne, które umożliwia wykrywanie aktywności neuronalnej.
Ogol i sekwencyjnie wysterylizuj skórę głowy przed jej rozcięciem.
Usuń tkankę łączną, aby odsłonić czaszkę.
Zaznacz obszary docelowe i nałóż warstwę kleju.
Użyj mikrowiertarki, aby rozrzedzić czaszkę na zaznaczonym obszarze.
Usuń fragment czaszki, aby odsłonić mózg.
Zastosuj sztuczny płyn mózgowo-rdzeniowy, aby utrzymać wilgotność mózgu.
Zamontuj okno optyczne w tym obszarze i uszczelnij je klejem, który stanowi podstawę dla mocowania cementu.
Nałóż cement dentystyczny, aby zablokować światło.
Powtórz procedurę po drugiej stronie czaszki.
Pozwól zwierzęciu dojść do siebie.
Aby zobrazować aktywność neuronalną, umieść zabezpieczoną znieczuloną mysz pod mikroskopem i uzyskaj obrazy.
Potwierdź brak reakcji na uszczypnięcie palca u znieczulonej myszy Thy1-GCaMP6s o wadze od 20 do 25 gramów, 1 i 1/2 do 2 oraz 1/2 miesiąca i nałóż maść na oczy zwierzęcia. Umieść mysz na poduszce grzewczej pokrytej sterylną zasłoną i użyj adaptera do trzymania głowy dla myszy, aby ustabilizować głowę. Ogol większość skóry głowy obosieczną maszynką do golenia i oczyść odsłoniętą skórę sekwencyjnymi sterylnymi wacikami nasączonymi alkoholem i peelingami z roztworem jodowidonu. Następnie użyj nożyczek, aby wykonać prostokątne nacięcie o wymiarach 2 na 3 milimetry w skórze głowy.
Za pomocą bawełnianego wacika odepchnij skórę na bok, aby utworzyć obszar ekspozycji o średnicy większej niż 3 milimetry, a następnie użyj ostrza mikrochirurgicznego, aby delikatnie usunąć tkankę łączną przyczepioną do czaszki. Za pomocą wiertła dentystycznego delikatnie zaznacz okrąg o średnicy 3 milimetrów wokół obszaru S1. Po wykonaniu podobnego okręgu po lewej stronie czaszki, nałóż cienką warstwę kleju cyjanoakrylowego po obu stronach kości, aby zapewnić podstawę do nałożenia cementu dentystycznego.
Pod mikroskopem preparacyjnym użyj szybkoobrotowego mikrowiertła, aby rozrzedzić okrągły rowek po prawej stronie czaszki wokół obszaru S1, aby uzyskać gładką krawędź, w razie potrzeby odsysając resztki kości za pomocą podciśnienia. Po osiągnięciu około 2/3 głębokości kości, powoli i ostrożnie rozrzedź pozostałą jedną trzecią kości, aż okrągły płat kostny zostanie całkowicie uwolniony od otaczającej czaszki. Użyj pary kleszczy # 5/45, aby powoli i ostrożnie usunąć okrągły kawałek kości, aby odsłonić oponę twardą, uważając, aby nie uszkodzić naczyń włosowych.
Po usunięciu płata kostnego z lewej strony czaszki w ten sam sposób, przepłukać okienko optyczne prawej strony czaszki sterylną solą fizjologiczną i sprawdzić, czy nie ma niedoskonałości pod mikroskopem stereoskopowym. Zamontuj okienko optyczne nad obszarem kraniotomii tak, aby górna część okienka spoczywała na czaszce, a dolna część w otworze kraniotomii, spoczywając na oponie twardej w obecności płynu mózgowo-rdzeniowego. Użyj super kleju cyjanoakrylowego, aby uszczelnić górną część krawędzi okna optycznego do czaszki.
Gdy klej wyschnie, nałóż cement dentystyczny na krawędź szkła, resztę prawej strony odsłoniętej czaszki i brzegi rany, aby zablokować światło. Następnie zainstaluj lewe okno optyczne i pozwól zwierzęciu dojść do siebie dzięki monitorowaniu aż do pełnego opadnięcia. Po upływie 7 do 10 dni od zabiegu znieczulone zwierzę należy umieścić w adapterze do trzymania głowy na poduszce grzewczej, pod mikroskopem dwufotonowym, zwracając uwagę, aby okienko optyczne i prawa strona czaszki były ustawione prostopadle do osi optycznej mikroskopu.
Uzyskaj początkowy obraz mapy referencyjnej okna czaszki przy użyciu oświetlenia w jasnym polu przy 4-krotnym powiększeniu. Po uzyskaniu wielu obrazów tego samego obszaru zainteresowania, zobrazuj dynamikę wapnia w obszarze S1 w lewej półkuli i oblicz zmiany fluorescencji z każdego obszaru zainteresowania po obu stronach czaszki.
Niniejszy artykuł opisuje szczegółowy protokół obrazowania aktywności neuronalnej u myszy modyfikowanych genetycznie z wykorzystaniem mikroskopu dwufotonowego. Procedura obejmuje wykonanie okna czaszkowego w celu umożliwienia bezpośredniej obserwacji aktywności mózgu przy jednoczesnym zapewnieniu bezpieczeństwa i komfortu zwierzęcia.
Ustanowienie wiarygodnego obrazowania aktywności neuronalnej w modelach transgenicznych wspiera walidację celu i ograniczanie ryzyka mechanistycznego w procesie odkrywania leków na schorzenia OUN. Technika okna czaszkowego umożliwia podłużne, ilościowe monitorowanie dynamiki neuronów, zwiększając pewność prognostyczną wczesnych hipotez terapeutycznych. Podejście to zmniejsza niepewność biologiczną, zapewniając bezpośrednie, przekładalne odczyty zaangażowania celu oraz modulacji szlaków w systemach istotnych dla danej choroby.
Metoda ta integruje się z continuum procesu odkrywania leków – od wczesnej walidacji celu, poprzez identyfikację związku wiodącego, aż po przedkliniczne testy skuteczności – dzięki możliwości wielokrotnych, ilościowych pomiarów aktywności neuronalnej.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026