Ocena tworzenia połączeń nerwowych w kokulturze za pomocą zapisów elektrofizjologicznych

0 wyświetleń2:17 min. • July 8th, 2025

Umieścić szkiełko nakrywkowe zawierające kokulturę w komorze nagraniowej wypełnionej natleniznym roztworem zewnątrzkomórkowym.

Kokultura składa się z astrocytów, neuronów korowych szczurów wyrażających światłoczułe kanały jonowe połączone z białkiem fluorescencyjnym oraz neuronów pochodzących z iPSC wyrażających inne białko fluorescencyjne.

Za pomocą mikroskopu konfokalnego zidentyfikuj fluorescencyjny neuron pochodzący z iPSC.

Przesuń pipetę rejestrującą wypełnioną roztworem wewnątrzkomórkowym w kierunku neuronu, aby ustalić konfigurację całej komórki.

Utrzymuj stały ujemny potencjał membrany w celu uzyskania dokładnych pomiarów prądu.

Oświetl kokulturę światłem, aby aktywować wrażliwe na światło kanały jonowe w neuronach korowych, generując w ten sposób potencjał czynnościowy.

Potencjał czynnościowy powoduje uwalnianie neuroprzekaźnika do szczeliny synaptycznej.

Jeśli są połączone synaptycznie, neuroprzekaźniki wiążą się z receptorami na połatanym neuronie pochodzącym z iPSC, otwierając kanały jonowe i generując prądy postsynaptyczne.

Zwiększone prądy postsynaptyczne w neuronach pochodzących z iPSC po stymulacji światłem potwierdzają połączenia synaptyczne z neuronami korowymi.

Użyj mikroskopu konfokalnego wyposażonego w soczewkę zanurzeniową 60x. Perfuzjuj komórki w temperaturze pokojowej w zewnętrznym roztworze, stale bąbelkującym 95% tlenu, 5% dwutlenku węgla. Do napełnienia mikropipety rejestrującej należy użyć roztworu wewnętrznego.

Aby wykonać stymulację optogenetyczną, załataj komórkę tdTomato-dodatnią w trybie całej komórki i ustaw zacisk napięcia na ujemne 70 miliwoltów. Za pomocą lampy rtęciowej na całe pole i filtra wzbudzenia 480 na 40 stymuluj całe pole przez 30 sekund. Rejestruj prądy postsynaptyczne lub PSC łatanej komórki indukowanej przez fotostymulację presynaptycznych neuronów korowych wykazujących ekspresję ChR2.