Ocena tworzenia połączeń nerwowych w kokulturze za pomocą zapisów elektrofizjologicznych

0 wyświetleń2:17 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Umieścić szkiełko nakrywkowe zawierające kokulturę w komorze nagraniowej wypełnionej natleniznym roztworem zewnątrzkomórkowym.

Kokultura składa się z astrocytów, neuronów korowych szczurów wyrażających światłoczułe kanały jonowe połączone z białkiem fluorescencyjnym oraz neuronów pochodzących z iPSC wyrażających inne białko fluorescencyjne.

Za pomocą mikroskopu konfokalnego zidentyfikuj fluorescencyjny neuron pochodzący z iPSC.

Przesuń pipetę rejestrującą wypełnioną roztworem wewnątrzkomórkowym w kierunku neuronu, aby ustalić konfigurację całej komórki.

Utrzymuj stały ujemny potencjał membrany w celu uzyskania dokładnych pomiarów prądu.

Oświetl kokulturę światłem, aby aktywować wrażliwe na światło kanały jonowe w neuronach korowych, generując w ten sposób potencjał czynnościowy.

Potencjał czynnościowy powoduje uwalnianie neuroprzekaźnika do szczeliny synaptycznej.

Jeśli są połączone synaptycznie, neuroprzekaźniki wiążą się z receptorami na połatanym neuronie pochodzącym z iPSC, otwierając kanały jonowe i generując prądy postsynaptyczne.

Zwiększone prądy postsynaptyczne w neuronach pochodzących z iPSC po stymulacji światłem potwierdzają połączenia synaptyczne z neuronami korowymi.

Użyj mikroskopu konfokalnego wyposażonego w soczewkę zanurzeniową 60x. Perfuzjuj komórki w temperaturze pokojowej w zewnętrznym roztworze, stale bąbelkującym 95% tlenu, 5% dwutlenku węgla. Do napełnienia mikropipety rejestrującej należy użyć roztworu wewnętrznego.

Aby wykonać stymulację optogenetyczną, załataj komórkę tdTomato-dodatnią w trybie całej komórki i ustaw zacisk napięcia na ujemne 70 miliwoltów. Za pomocą lampy rtęciowej na całe pole i filtra wzbudzenia 480 na 40 stymuluj całe pole przez 30 sekund. Rejestruj prądy postsynaptyczne lub PSC łatanej komórki indukowanej przez fotostymulację presynaptycznych neuronów korowych wykazujących ekspresję ChR2.

10:24

Elektrofizjologiczna i morfologiczna charakterystyka mikroobwodów neuronalnych w ostrych wycinkach mózgu przy użyciu sparowanych nagrań patch-clamp

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:55

Badanie połączeń monosynaptycznych u Drosophila przy użyciu kanałów sodowych opornych na tetrodotoksynę

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:51

Optogenetyka Identyfikacja typu neuronalnego za pomocą szklanej optrody u obudzonych myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:27

Jak hodować, rejestrować i stymulować sieci neuronowe na matrycach mikroelektrod (MEA)

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:21

Zapisy elektrofizjologiczne do oceny regeneracji neuronów w współhodowanych wycinkach rdzenia kręgowego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:45

Rejestrowanie aktywności elektrofizjologicznej sieci neuronalnej w kokulturze neuron-astrocyt

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:01

Wspomagany komputerowo wieloelektrodowy system krosówek

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:22

Optogenetyczne podejście do oceny tworzenia połączeń neuronalnych w systemie kokulturowym

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:51

Hodowla eksplantatów neuronów zwojów spiralnych i elektrofizjologia na układach wieloelektrodowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:32

Analiza sieciowa zapisów elektrod otworu owalnego u pacjentów z lekooporną padaczką skroniową

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 1 sierpnia 2026