Zapisy elektrofizjologiczne preparatów pnia mózgu i rdzenia kręgowego od nowonarodzonego gryzonia

0 wyświetleń2:53 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zabezpiecz preparat rdzenia kręgowego pnia mózgu od nowonarodzonego gryzonia w komorze rejestracyjnej z przepływem natlenionego aCSF. Usunąć cienką tkankę pokrywającą preparat.

Sieć neuronalna pnia mózgu generuje rytmiczną aktywność elektryczną, zwaną wybuchem wdechowym, przekazywaną przez neurony ruchowe czwartego brzusznego korzenia nerwowego rdzenia kręgowego lub C4 w celu kontrolowania oddychania.

Umieść pipetę rejestrującą w pobliżu korzenia nerwowego i użyj ssania, aby wciągnąć korzeń do środka, tworząc uszczelnienie.

Wewnętrzne właściwości neuronów pnia mózgu powodują napływ sodu, depolaryzując błonę i generując potencjał czynnościowy, a następnie odpływ potasu w celu repolaryzacji.

Wynikająca z tego hiperpolaryzacja zapobiega nowym potencjałom czynnościowym, dopóki ATPaza sodowo-potasowa nie wykorzysta ATP do przywrócenia potencjału błonowego.

Potencjały czynnościowe rozchodzą się do korzenia nerwowego w postaci rytmicznych wybuchów.

Przepływ aCSF pozbawiony tlenu w celu zakłócenia produkcji ATP i upośledzenia funkcji ATPazy, opóźnienia potencjałów czynnościowych i zmniejszenia impulsów rytmicznych.

Przełączenie z powrotem na natleniony aCSF przywraca liczbę rytmicznych impulsów.

W tej procedurze umieść tkankę nerwową w komorze rejestracyjnej brzuszną stroną skierowaną do góry. Przymocuj go za pomocą szpilek w najniższej części rdzenia kręgowego i najbardziej rostralnej części pnia mózgu. Następnie usuń błonę pajęczynówki, która jest cienką tkanką pokrywającą powierzchnię tkanki nerwowej. Uważaj, aby nie usunąć pia mater i naczyń krwionośnych tkanki nerwowej. Następnie napełnij elektrodę ACSF.

Za pomocą mikromanipulatora ostrożnie umieść elektrodę blisko czwartego korzenia brzusznego. Delikatnie zassać korzeń nerwu za pomocą strzykawki. Następnie umieść elektrodę z korzeniem nerwowym przy rdzeniu kręgowym. Następnie przez co najmniej 20 minut należy rejestrować czynności elektrofizjologiczne generowane przez tkankę nerwową w warunkach normoksyjnych w celu określenia podstawowych parametrów preparatu.

Zamień roztwór perfuzyjny z ACSF z bąbelkami karbogenu na ACSF z bodźcem hipoksji i nagrywaj przez 15 minut. Następnie zmień roztwór perfuzyjny z powrotem na standardowy ACSF z pęcherzykami karbogenu i nagrywaj przez co najmniej kolejne 15 minut przed zakończeniem nagrywania.

08:28

Ocena wpływu związków zaburzających funkcjonowanie układu hormonalnego na rozwój funkcji sieci neuronalnej kręgowców z wykorzystaniem układów wieloelektrodowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:32

Przygotowanie rytmicznie aktywnego in vitro noworodka gryzonia pień-rdzeń kręgowy i cienki plasterek

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:52

Ocena liczebności synaps za pomocą elektrofizjologii patch-clamp całkowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:59

Elektrofizjologia rdzenia kręgowego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:47

Elektrofizjologia rdzenia kręgowego II: Wytwarzanie przyssawkowych elektrod zewnątrzkomórkowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:38

Rejestrowanie słuchowych reakcji pnia mózgu u szczeniaka szczura

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:30

Metoda wykonania kraniotomii na brzusznej czaszce noworodków gryzoni

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:28

Elektrofizjologia izolowanych preparatów rdzenia kręgowego od nowonarodzonych gryzoni umożliwia rejestrację danych wyjściowych sieci neuronowej układu oddechowego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:10

Przygotowanie skośnych wycinków rdzenia kręgowego do stymulacji korzeni brzusznych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:03

Rejestracja EEG u noworodków szczurów poruszających się w swobodnym ruchu przy użyciu nowej metody

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026