RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Zamontuj żywą muchę Drosophila w tubie z odsłoniętą głową, czułkami przyklejonymi do taśmy klejącej i zabezpieczonymi prętem przytrzymującym.
Preparat należy przechowywać w stałym strumieniu nawilżonego powietrza, aby zapobiec wysuszeniu.
Przełóż elektrodę referencyjną przez clypeus, konstrukcję nośną chroniącą aparat gębowy, aby dotrzeć do układu krążenia.
Umieść elektrodę rejestrującą w pobliżu czułka, narządu zmysłów owada.
Włóż elektrodę do podstawy sensillum.
Rejestruj sygnały z określonymi skokami, aby potwierdzić prawidłowe położenie elektrod w pobliżu neuronów receptorów węchowych.
Podłącz wkład zawierający testowy środek zapachowy do rurki doprowadzającej.
Ustaw rurkę skierowaną w stronę anteny muchy, regulując wysokość i odległość od elektrod.
Za pomocą oprogramowania ustaw natężenie przepływu zapachu i ilość dozowania, a następnie uwolnij środek zapachowy.
Teraz nagraj sygnały elektryczne, aby uchwycić neuronalną reakcję muchy na środek zapachowy.
Aby wykonać nagrania, włóż elektrodę referencyjną do clypeusa szybkim i płynnym ruchem. Umieść go tuż pod naskórkiem, gdzie będzie miał kontakt z hemolimfą. Następnie powoli opuść elektrodę rejestrującą, aż znajdzie się w tej samej płaszczyźnie view, co czujnik docelowy. Następnie włóż elektrodę nagrywającą do podstawy sensillar.
Zanim przejdziesz dalej, upewnij się, że istnieje wysoki stosunek sygnału do szumu, z możliwymi do zidentyfikowania skokami z neuronów at4A i at4C. Neuron at4A powinien wystrzeliwać nie szybciej niż 20 herców.
Teraz podłącz wkład do rurki doprowadzającej nawaniacz. W takim przypadku dołączony jest wkład z kwasem oleopalmitynowym. Następnie za pomocą mikromanipulatora należy manewrować wkładem w kierunku preparatu, jednocześnie kierując go w stronę głowicy. Umieść końcówkę wkładu skierowaną bezpośrednio na antenę z odległości około 4 milimetrów. Wkład musi również znajdować się około 1 milimetr nad zamkiem.
Wkład może być ściśle otoczony elektrodami i szkiełkiem. Najlepiej, aby znajdował się co najmniej cztery milimetry od każdej elektrody. W celu stymulacji ustaw regulator przepływu nawaniacza na 500-milisekundowe impulsy i użyj natężenia przepływu 500 mililitrów na minutę. Dla każdego wybuchu bodźca rejestruj aktywność elektryczną przez 10 sekund.
Related Videos
06:32
Related Videos
17K Views
06:32
Related Videos
7.6K Views
07:02
Related Videos
7.2K Views
29:23
Related Videos
11.2K Views
13:27
Related Videos
26.1K Views
09:00
Related Videos
26.6K Views
07:25
Related Videos
9K Views
13:31
Related Videos
9.8K Views
11:42
Related Videos
20.1K Views
07:49
Related Videos
9.4K Views