Analiza recyklingu pęcherzyków synaptycznych i wychwytu barwnika fluorescencyjnego przez larwy Drosophila

0 wyświetleń2:42 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Umieścić żywy preparat nerwowo-mięśniowy larw Drosophila w komorze rejestracyjnej zawierającej sól fizjologiczną bez wapnia.

Neurony larwalne wyrażają światłoczuły kanał kationowy.

Przełącz się na sól fizjologiczną z dodatkiem wapnia zawierającą barwnik fluorescencyjny.

Barwnik słabo fluoryzuje w stanie niezinternalizowanym, ale silnie, gdy jest internalizowany przez neurony.

Oświetl larwę niebieskim światłem.

To aktywuje kanał, indukując napływ kationów i depolaryzację neuronów, inicjując potencjał czynnościowy.

Potencjał czynnościowy dociera do zakończenia synaptycznego w połączeniu nerwowo-mięśniowym, umożliwiając napływ wapnia i egzocytozę pęcherzyków.

Następnie membrana związana z barwnikiem jest internalizowana podczas recyklingu pęcherzyków.

Przemyć solą fizjologiczną bez wapnia, aby zatrzymać recykling pęcherzyków i usunąć wszelkie niezinternalizowane barwniki.

Wizualizacja sygnału fluorescencji.

Następnie wprowadź bezbarwną sól fizjologiczną z dodatkiem wapnia i ponownie rozświetl.

To indukuje inny potencjał czynnościowy, napływ wapnia i egzocytozę pęcherzyków zawierających barwnik.

Ponownie zwizualizuj sygnał.

Uwalnianie barwnika w wyniku egzocytozy pęcherzyków zmniejsza fluorescencję w porównaniu ze stanem podczas internalizacji pęcherzyków.

W celu stymulacji rodopsyny kanałowej podłącz niebieską diodę LED do programowalnego stymulatora za pomocą koncentrycznego i umieść diodę LED w porcie kamery. Skoncentruj niebieską wiązkę światła LED na preparacie z barwnikiem FM za pomocą funkcji zoomu mikroskopu.

Najważniejszym krokiem na tym etapie procedury jest upewnienie się, że ustawienia diod LED są utrzymywane na stałym poziomie i że oświetlasz tę samą część każdego zwierzęcia we wszystkich porównywanych warunkach, aby zapewnić stałą siłę stymulacji.

Rozpocznij stymulację światłem i śledź za pomocą timera przez określony czas trwania okresu stymulacji optogenetycznej. Gdy timer się zatrzyma, szybko usuń roztwór barwnika FM i zastąp go solą fizjologiczną bez wapnia, aby zatrzymać cykl SV. W celu rozładunku barwnika FM rozpocznij stymulację światłem i śledź za pomocą timera przez określony czas trwania okresu stymulacji optogenetycznej. Po upływie okresu odliczania szybko usuń roztwór barwnika FM i zastąp go solą fizjologiczną bez wapnia, aby zatrzymać cykl SV.

08:39

Zapisy całokomórkowe patch-clamp do elektrofizjologicznego oznaczania selektywności jonowej w rodopsynach kanałowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:30

Pomiar endocytozy pęcherzyków synaptycznych w hodowanych neuronach hipokampa

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:04

Mapowanie obwodów wspomaganych rodopsyną kanałową dalekiego zasięgu neuronów wzgórka dolnego z niebieskimi i czerwonymi rodopsynami kanałowymi

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:46

Badanie basenów pęcherzyków synaptycznych za pomocą fotokonwersji barwników styrylowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:58

In vivo (in vivo) Wizualizacja pęcherzyków synaptycznych w obrębie aksonów segmentowych larw Drosophila

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:02

Analiza ilościowa uzupełniania puli pęcherzyków synaptycznych w hodowanych neuronach ziarnistych móżdżku przy użyciu barwników FM

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:43

Ładowanie i rozładowywanie barwnika FM za pośrednictwem mikroelektrod w komórkach nerwowych larw Drosophila

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:53

Przygotowanie hodowanych neuronów do analizy optycznej przetworzonych pęcherzyków synaptycznych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:10

Badanie recyklingu pęcherzyków synaptycznych za pomocą barwników FM podczas wywołanych, spontanicznych i miniaturowych aktywności synaptycznych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:36

Analiza modulacji synaptycznej fotoreceptorów Drosophila melanogaster po ekspozycji na przedłużone światło

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026