Perforowane nagrania patch-clamp ciał komórek neuronów czuciowych ucha wewnętrznego

0 wyświetleń2:50 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Umieść hodowlę ciał komórek neuronów czuciowych ucha wewnętrznego w komorze nagraniowej.

Napełnij pipetę z zaciskiem krosowym od przodu roztworem wewnętrznym.

Zasyp tym samym roztworem zawierającym antybiotyk perforujący błonę, umożliwiając mu stopniowe dotarcie do końcówki.

Napełnij dwie trzecie pipety roztworem antybiotyku, włóż ją do uchwytu zawierającego elektrodę rejestrującą i opuść do komory.

Wizualizuj pod mikroskopem, aby zbliżyć się do neuronu.

Gdy końcówka pipety styka się z neuronem, powierzchnia neuronu tworzy wgłębienie, a opór wzrasta.

Zastosuj podciśnienie, aby uzyskać szczelne uszczelnienie między pipetą a membraną.

Utrzymuj potencjał utrzymywania blisko spoczynkowego potencjału błonowego.

Antybiotyk perforuje błonę, umożliwiając ruch jonów między komórką a elektrodą w celu wytworzenia stabilnego środowiska jonowego.

Zastosuj kroki napięcia do otwartych kanałów jonowych bramkowanych napięciem, umożliwiając napływ jonów i generując prądy proporcjonalne do funkcji kanału jonowego, które są rejestrowane przez elektrodę.

Zanurz końcówkę pipety w czystym roztworze naczynia hodowlanego, aby napełnić ją czystym roztworem, który nie zawiera amfoterycyny. Napełnić tylną część pipety roztworem wewnętrznym zawierającym amfoterycynę. Zanurz końcówkę pipety z powrotem w czystym roztworze szalki hodowlanej, podczas gdy amfoterycyna powoli wchodzi do końcówki z tyłu pipety. Następnie zakończ napełnianie pipety roztworem amfoterycyny do 2/3 pipety.

Opuść pipetę do wanny komory nagrywającej i umieść końcówkę pipety pośrodku pola widzenia. Upewnij się, że końcówka jest wolna od pęcherzyków powietrza lub innych zanieczyszczeń. Umieść pipetę blisko membrany i mocno wyląduj na środku komórki. Zastosować podciśnienie lub ssanie za pomocą strzykawki lub pipety doustnej.

Włącz potencjał utrzymywania minus 60 miliwoltów. Rezystancja uszczelnienia powinna wzrastać, aż przekroczy gigaom. Gdy utworzy się uszczelka gigaomowa, zwolnij podciśnienie. Amfoterycyna zaczyna działać. Rezystancja wejściowa powoli maleje, a prąd płynący w odpowiedzi na krok napięcia o 5 miliwoltów stopniowo wzrasta, gdy amfoterycyna dostaje się do membrany.

10:16

Perforowany zapis patch-clamp węchowych węchowych neuronów czuciowych myszy w nienaruszonym neuroepithelium: analiza funkcjonalna neuronów wyrażających zidentyfikowany receptor zapachowy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:00

Nagrania zacisków łatkowych na nienaruszonych zwojach korzenia grzbietowego od dorosłych szczurów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:11

Zależny od napięcia zapis prądu potasu na kardiomiocytach H9C2 za pomocą techniki Whole-Cell Patch-Clamp

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:43

Nagrania patch clamp w komórkach rzęsatych ucha wewnętrznego wyizolowanych od danio pręgowanego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:42

Elektrofizjologia klamer krosowych całych komórek: metoda badania właściwości elektrycznych neuronów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:22

Perforowany zapis węchowych neuronów czuciowych u myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:45

Zapis klamry krosowej całej komórki w neuronie istoty żelatynowej wycinka rdzenia kręgowego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:34

Ustanowienie klamry krosowej dla całej komórki do zapisu elektrofizjologicznego z neuronów czuciowych lemieszowo-nosowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:11

Nagrania klamry krosowej całej komórki na nienaruszonych zwojach korzenia grzbietowego szczura

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:58

Klamra krosowa całej komórki do badania mechanizmów stymulacji neuronalnej w podczerwieni

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026