JoVE Encyclopedia of Experiments
Neuronauka
0 wyświetleń • 3:22 min • July 8th, 2025
Weź osadzone w żywicy, chemicznie utrwalone ultracienkie sekcje mózgu od zdrowych i uszkodzonych w mózgu larw danio pręgowanego zamontowanych na siatce z jednym otworem.
Wycinki są barwione metalami ciężkimi w celu zwiększenia kontrastu obrazu podczas obrazowania mikroskopowego.
Umieścić siatkę w uchwycie na próbkę i przenieść ją do komory mikroskopowej.
Wyrównaj siatkę pod działem elektronowym, które generuje wiązkę elektronów.
Układ soczewek i cewek elektromagnetycznych skupia wiązkę elektronów na sekcjach.
Przesuń uchwyt próbki, aby zeskanować sekcje we wzorze rastrowym.
Gdy wiązka elektronów przechodzi przez skrawki tkanki, barwione obszary o dużej gęstości elektronów rozpraszają więcej elektronów, podczas gdy niebarwione obszary przenoszą elektrony.
Detektor zbiera te sygnały elektronowe, tworząc obrazy mózgu o wysokiej rozdzielczości.
W porównaniu z grupą kontrolną, uszkodzony mózg wykazuje mikroglej fagocytarny zawierający liczne inkluzje wewnątrzkomórkowe, co jest charakterystyczną cechą neurodegeneracji wywołanej urazem.
Aby zamontować próbkę w skaningowym mikroskopie elektronowym lub SEM, umieść siatkę ze skrzynki rozdzielczej z sekcją w uchwycie na próbkę z wieloma siatkami i przenieś ją do komory SEM. Po ustawieniu detektora zgodnie z protokołem tekstowym, należy wstępnie napromienić próbkę, pomniejszając tak, aby cały obszar do skanowania zmieścił się w oknie obrazu. Po zmianie przysłony na 120 mikrometrów i rozmyciu obrazu użyj opcji skanowania zredukowanego obszaru, aby zeskanowany obszar był jak najmniejszy.
Następnie ustaw liczbę klatek na sekundę, aby zeskanować klatkę w około 1 do 2 sekund. Następnie powiększ co najmniej 100x i skanuj mały obszar przez dziesięć sekund. Jeśli jasność w obszarze nadal się zmienia, kontynuuj naświetlanie przed naświetlaniem. Gdy obszar ten nie zmienia jasności w porównaniu z otoczeniem, wystarczające jest wstępne naświetlanie.
W obszarze ostrości wybierz najjaśniejszy obszar lub obiekt, a następnie ustaw szybkość skanowania tak, aby szczegóły były widoczne. W oprogramowaniu mikroskopu dostosuj jasność i kontrast, uważnie obserwując histogram, aby wszystkie piksele pozostały w zakresie dynamicznym. Zrób to samo dla najciemniejszych obszarów i obiektów. Wróć do jasnego obszaru i sprawdź ponownie, czy po obu stronach histogramu jest trochę miejsca.
W przypadku kroków od 4-6 do 4-8 regulacja jasności i kontrastu musi być wykonana bardzo ostrożnie, aby cały obszar mieścił się w zakresie dynamicznym.
Pomniejsz obraz, aby cały obszar do skanowania zmieścił się w oknie obrazowania i uruchom program akwizycji dużego obszaru. Następnie użyj opcji Kreatora, aby skonfigurować mozaikę, wybierając obszar z ekranu.
Użyj rozmiaru piksela od 2 do 5 nanometrów w zależności od tego, jakie szczegóły są niezbędne, i ustaw czas przebywania wynoszący trzy mikrosekundy dla skaningowej transmisyjnej mikroskopii elektronowej lub STEM. Naciśnij Optymalizuj, aby sprawdzić ustawienia mikroskopu, a zostanie wyświetlony wymagany czas. Następnie ponownie włącz zewnętrzny generator skanowania i naciśnij Kontynuuj.
Niniejszy artykuł szczegółowo opisuje metodologię obrazowania przekrojów mózgu larw zebrafish z wykorzystaniem mikroskopii elektronowej. Głównym celem jest porównanie zdrowych i uszkodzonych tkanek mózgowych w celu zidentyfikowania zmian neurodegeneracyjnych.
Obrazowanie o wysokiej rozdzielczości uszkodzeń mózgu u larw rybek danio umożliwia mechanistyczne ograniczanie ryzyka we wczesnej walidacji celu poprzez wizualizację fenotypów neurodegeneracyjnych w skali ultrastrukturalnej. Podejście to zwiększa pewność prognostyczną w modelach przedklinicznych, łącząc patologię komórkową z wynikami funkcjonalnymi, co wspiera podejmowanie decyzji o kontynuacji lub przerwaniu programów badawczych nad neurodegeneracją. Metoda ta zwiększa ciągłość translacyjną od etapu odkrycia do walidacji przedklinicznej dzięki powtarzalnym, ilościowym odczytom morfologicznym.
Metoda ta integruje się z continuum procesu odkrywania leków – od walidacji celu po obrazowanie przedkliniczne, zapewniając ultrastrukturalne potwierdzenie wyników przesiewowych fenotypowych oraz wspierając kryteria go/no-go w oparciu o wierność histopatologiczną.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026