RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Zacznij od pokrywki szalki Petriego zawierającej mózg larwy Drosophila, wstępnie wystawionej na cykl światła/ciemności. Wycinek zawiera fluorescencyjne neurony zegarowe wykazujące ekspresję białka.
Dodaj bogatą w składniki odżywcze pożywkę z antybiotykami wspomagającymi przeżycie neuronów i ciepły roztwór fibrynogenu.
Delikatnie wymieszaj roztwór, aby równomiernie rozprowadzić fibrynogen
.Umieść niewielką ilość tej mieszaniny na szkiełku nakrywkowym naczynia ze szklanym dnem.
Dodaj trombinę, aby zareagowała z fibrynogenem, aby wywołać tworzenie trójwymiarowej matrycy fibryny.
Przenieś mózg na tę matrycę, ustawiając go przodem do dołu, aby wyrównać neurony zegara do obrazowania.
Złóż macierz na mózgu, aby ją zakotwiczyć i zapobiec ruchowi
.Dodaj pożywkę bogatą w składniki odżywcze, aby dezaktywować aktywność trombiny.
Uszczelnij naczynie membraną przepuszczającą gazy, aby utrzymać nawodnienie i żywotność neuronów.
Wykonuj poklatkowe obrazowanie fluorescencyjne w określonych odstępach czasu.
Zmiany fluorescencji w neuronach zegarowych ujawniają ich rytmiczną aktywację i hamowanie, zsynchronizowane z cyklem światła / ciemności, odzwierciedlając rytmy okołodobowe, dzienny cykl aktywności.
Po przeniesieniu mózgu do roztworu roboczego, dozuj mózg i pożywkę na pokrywkę sterylnej szalki Petriego. Następnie dodaj kolejne 3,5 mikrolitra SAM z antybiotykami i dodaj 3,5 mikrolitra ciepłego SAM z fibrynogenem.
Ważne jest, aby przez cały czas trwania tej procedury utrzymywać pożywkę SAM z fibrynogenem w temperaturze 37 stopni.
Następnie wymieszaj roztwór wokół mózgu, delikatnie pipetując tą samą końcówką pipety i odessaj 2 mikrolitry roztworu, aby umieścić go na szkiełku nakrywkowym do naczynia ze szklanym dnem. Następnie dodaj 0,8 mikrolitra trombiny do kropli i bardzo szybko wymieszaj, aby zainicjować polimeryzację, która będzie wyglądać na białą. Następnie za pomocą kleszczy delikatnie wybierz mózg i umieść go na polimeryzującej matrycy fibryny.
Dodanie trombiny po przeniesieniu mózgu do kropelki. Nie jest to zalecane, ponieważ bardzo komplikuje procedurę.
Zorientuj mózg w razie potrzeby i bardzo delikatnie popchnij mózg jak najbliżej szkiełka nakrywkowego. Następnie wybierz warstwę spolimeryzowanej fibryny i złóż ją na wierzchu mózgu, wykonując małe i delikatne ruchy, które nie odrywają matrycy. Kontynuuj składanie warstw spolimeryzowanej fibryny nad mózgiem z różnych części skrzepu, aby ustabilizować mózg. Następnie umieść 20 mikrolitrów SAM z antybiotykami na osadzonym mózgu, aby zatrzymać aktywność trombiny. Następnie połóż kawałek membrany PTFE na podłożu i przyklej krawędzie membrany do natłuszczonych części naczynia.
Related Videos
09:50
Related Videos
15.7K Views
07:12
Related Videos
4.8K Views
08:52
Related Videos
3.7K Views
02:31
Related Videos
595 Views
12:15
Related Videos
12.9K Views
07:05
Related Videos
8.1K Views
06:49
Related Videos
9.9K Views
08:23
Related Videos
6.7K Views
06:35
Related Videos
9.7K Views
07:06
Related Videos
4.3K Views