19 listopada 2011
Technika preparacji ilustruje enukleację oka myszy w celu utrwalenia tkanki w celu przeprowadzenia fenotypowania w wysokoprzepustowych badaniach przesiewowych.
Ten film zilustruje oko myszy i zarodkowanie lub usunięcie gałki ocznej z oczodołu. Gałka oczna jest ograniczona dolnym brzegiem powieki. Oto kant przyśrodkowy lub nosowy.
Z tyłu znajduje się kantus skroniowy lub boczny. Powyżej znajduje się górny margines powieki. Oto próbka chirurgiczna.
Igła jest skierowana do przezroczystej rogówki. Widzimy trochę soczewki wystającej poza tęczówkę. Przysłona jest tutaj w kolorze brązowym, zakrywając soczewkę.
Najważniejszym punktem orientacyjnym operacji jest ta biała linia, w przeciwnym razie rąbek będzie robił ranę kłutą tuż za nią. Tylna połowa kuli ziemskiej znajduje się za rąbkiem i wskazujemy na przyczep mięśniowy. Widać tu mięsień przylegający do kuli ziemskiej, a następnie tkankę łączną, która wypełnia orbitę i obejmuje gruczoł ariański.
I wreszcie, to jest biały długi pasek nerwu wzrokowego z rozwarstwienia. Używając zakrzywionych kleszczy opatrunkowych, dostosowanych za pomocą ostrej końcówki, zacznij od rozsunięcia powiek. Ma to tendencję do podpierania opiekania oka na zewnątrz i do tyłu.
Ostrożnie użyj kleszczy, aby wejść na orbitę i za gałkę oczną, ściśnij je delikatnie za gałką oczną, nie ściskając jej i pociągnij do przodu. Powinieneś być w stanie uchwycić tkankę łączną, a nie gałkę oczną. Jeśli odwrócisz gałkę oczną na bok, zobaczysz tkankę oczodołu wraz z białym nerwem wzrokowym.
To jest druga sekcja tylko po to, aby pokazać, że znowu wchodzisz do kantu, wciskasz kleszcze za gałkę oczną, chwytasz tkankę łączną i ciągniesz ją do przodu, nie naciskając na samą gałkę oczną. Ponownie można zobaczyć tkankę łączną w długim pasku białego nerwu wzrokowego. Aby zrobić ranę kłutą, chwyć gałkę oczną za pomocą przyczepu mięśniowego i wbij igłę za rąbkiem tuż obok miejsca, w którym trzymasz oko, aby je ustabilizować.
Umożliwi to utrwalacz dostanie się do oka. Jeśli wykonasz nakłucie daleko od miejsca, w którym trzymasz oko, gałka oczna będzie bardzo niestabilna i trudno będzie zrobić tę ranę, o ile nie uciskasz oka ani nie wywierasz nadmiernego nacisku. Możesz również chwycić całą tkankę łączną tuż za samą gałką oczną.
Niektóre utrwalacze nie wymagają rany kłutej. Ogólnie rzecz biorąc, umieszczamy oko w fiolce scyntylacyjnej o pojemności pięciu cm3 z co najmniej trzema cm3 utrwalacza, aby upewnić się, że oko jest zanurzone. W przypadku zwierząt utrwalonych w obfitości konieczna jest ostra sekcja.
Używamy zakrzywionych kleszczyków calibri i zakrzywionych nożyczek wescott. Chwyć dolną powiekę kleszczami kalibru. Włóż nożyczki do kości oczodołu i zacznij przecinać tkankę łączną.
Używamy krzywej z dala od gałki ocznej i unikamy w rozmiarze. Każde oko będzie pracować wzdłuż dolnego brzegu powieki od jednego kantu do drugiego. W pewnym momencie większość tkanki łącznej zostanie usunięta i możesz wsunąć nożyczki za kulę ziemską i ją odciągnąć.
Oto kolejny przykład, włożenie nożyczek do orbity, ale przy kości oczodołu, a nie w gałce ocznej i odcięcie tkanki łącznej. To zacznie uwalniać gałkę oczną, która jest jak piłka do koszykówki w koszu. Użyj kleszczy, aby cofnąć powieki i wykonaj delikatne skróty wokół gałki ocznej.
Tutaj chwytamy tkankę łączną lub przyczep mięśniowy za pomocą Collibra i kończymy odcinanie gałki ocznej od oczodołowej tkanki łącznej. Po odpowiednim zamocowaniu gałek ocznych i jeśli zajdzie potrzeba ich transportu, umieszczamy folię para. My wokół fiolki z sacyjnością.
Opakowanie musi być zgodne z przepisami obowiązującymi na Twojej uczelni i przepisami rządowymi. Zazwyczaj umieszczamy je w pojemniku z odrobiną bawełny Aby złapać jakikolwiek płyn, pojemnik ten musi być bardzo szczelnie zamknięty. Ten pojemnik transportowy jest następnie umieszczany w torbie z folii bąbelkowej.
Jest on umieszczany w płynnym laboratoryjnym opakowaniu wysyłkowym wraz z wszelką dokumentacją.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
To wideo ilustruje technikę enukleacji oka mysiego, która jest kluczowa dla fiksacji tkanek w wysokowydajnych badaniach fenotypu. Procedura polega na usunięciu gałki ocznej z jej gniazda, podkreślając anatomiczne punkty odniesienia dla jasności.
Remote high-throughput phenotyping of mouse eyes enables distributed genetic resource utilization and accelerates discovery of genotype-phenotype correlations in ophthalmic disease models. Standardized enucleation and tissue transfer protocols reduce geographic and operational barriers, supporting scalable, multi-site preclinical research. This approach enhances portfolio-wide access to rare or geographically dispersed transgenic lines for early-stage target validation and phenotypic screening.
This remote enucleation and tissue transfer protocol integrates into the early discovery and preclinical continuum, bridging genetic model generation with centralized phenotyping and analysis.