Name: Dokładna i prosta ocena zespoleń naczyniowych w łożysku jednokosmówkowym przy użyciu kolorowego barwnika (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-09-05T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 52 s
Description: Poznaj metodę iniekcji barwnika do oceny zespoleń naczyniowych w łożysku jednokosmówkowym. Technika ta pozwala wizualizować anastomozy naczyniowe i lepiej zrozumieć zespół transfuzji płodowej oraz sekwencję niedokrwistości-poliglobulii.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Brak źródeł finansowania.

1. Przygotowanie łożyska podczas porodu
<ol>
	<li>Oznacz pępowiny bliźniąt jednym (dla pierwszego dziecka) lub dwoma (dla drugiego dziecka) zaciskami.</li>
	<li>Obejrzyj powierzchnię macierzystą i płodową łożyska pod kątem kompletności lub przerw w ciągłości.</li>
	<li>Zapisz następujące dane: typ przyczepu pępowiny (centralny, ekscentryczny, brzeżny lub błonowy), liczbę naczyń krwionośnych w pępowinie (zwykle jedna żyła i dwie tętnice, czasami tylko jedna tętnica) oraz różnice w kolorze między obiema częściami łożyska. Fragment błon dzielących można wysłać do pracowni patomorfologii w celu potwierdzenia typu chorioniczności.</li>
	<li>Łożysko można następnie umieścić w plastikowej misce i przechowywać w lodówce do czasu końcowego badania (najlepiej w ciągu jednego tygodnia) i wstrzyknięcia barwnika.</li>
	<li>Łożyska nie wolno mrozić ani utrwalać (nie używać formaliny).</li>
</ol>
2. Kanulacja naczyń pępowinowych
<ol>
	<li>Przemyć łożysko ciepłą wodą lub solą fizjologiczną.</li>
	<li>Przyciąć błony obwodowe, usunąć błonę dzielącą bliźnięta i oddzielić błony dopłciowe (w celu lepszej wizualizacji anastomoz naczyniowych i uzyskania lepszej jakości zdjęć łożyska).</li>
	<li>Przeciąć każdą pępowinę w odległości około 5 cm od miejsca jej przyczepu.</li>
	<li>Delikatnie usunąć skrzepy krwi z naczyń pępowiny i naczyń łożyska.</li>
	<li>Żyła pępowinowa jest zazwyczaj łatwa do zidentyfikowania ze względu na większą średnicę w porównaniu do mniejszej średnicy dwóch tętnic pępowinowych.</li>
	<li>Wprowadzić do żyły pępowinowej cewnik o odpowiedniej średnicy. Należy unikać tworzenia fałszywych kanałów.</li>
	<li>Wprowadzić do jednej tętnicy pępowinowej cewnik o mniejszej średnicy. Użyć pęsety, aby poszerzyć światło tętnicy pępowinowej. Należy unikać tworzenia fałszywych kanałów. Konieczne jest cewnikowanie tylko jednej z dwóch tętnic pępowinowych, ponieważ anastomoza (Hyrtla) łączy obie tętnice w pobliżu przyczepu pępowiny.</li>
	<li>Powtórzyć oba kroki dla drugiej pępowiny.</li>
	<li>Wprowadzenie cewnika można ułatwić poprzez delikatny masaż naczyń pępowiny ruchem przód-tył. Do tej procedury można użyć każdego rodzaju cewnika. W naszej metodzie stosujemy (i ponownie wykorzystujemy) cewniki używane na oddziale neonatologicznym do cewnikowania pępowiny u noworodków.</li>
	<li>Obwiązać obie pępowiny kawałkiem taśmy, aby zapobiec cofaniu się barwnika podczas jego wtryskiwania.</li>
</ol>
3. Wtryskiwanie barwnika
<ol>
	<li>Podłącz strzykawkę o pojemności 20 ml wypełnioną kolorowym barwnikiem do każdego cewnika.</li>
	<li>Do wizualizacji architektury naczyniowej łożyska można użyć dowolnego lepki kolorowego barwnika. Należy zastosować kontrastujące kolory, aby zapewnić dobrą wizualizację anastomos (ciemne kolory dla tętnic, jasne kolory dla żył).</li>
	<li>Powoli wstrzyknij (pod niskim ciśnieniem) kolorowy barwnik do żyły, podczas gdy asystent delikatnie wypycha barwnik, aby wypełnił on wszystkie naczynia łożyska, w tym najmniejsze.</li>
	<li>Zwróć szczególną uwagę na małe naczynia w pobliżu równika naczyniowego (równik naczyniowy to miejsce, w którym łączą się anastomos obu bliźniąt).</li>
	<li>Powtórz poprzednie kroki, aby wstrzyknąć kolorowy barwnik do tętnicy. Należy pamiętać, że wstrzykiwanie do tętnic może być trudniejsze i wymagać więcej cierpliwości.</li>
	<li>Powtórz oba kroki dla drugiego pępowiny.</li>
</ol>
4. Ocena i dokumentacja łożyska po wstrzyknięciu barwnika
<ol>
	<li>Dokładnie obejrzyj równik naczyniowy i zapisz liczbę oraz rodzaje anastomoz.</li>
	<li>Umieść taśmę mierniczą na łożysku, aby zmierzyć średnice i udziały łożyskowe na zdjęciu cyfrowym.</li>
	<li>Użyj cyfrowego aparatu o wysokiej rozdzielczości i wykonaj zdjęcia wstrzykniętego łożyska. Upewnij się, że zdjęcia są wykonane prostopadle do łożyska.</li>
</ol>
5. Reprezentatywne wyniki:
Angioarchitektura łożyska w bliźniętach monochorialnych różni się w zależności od rodzaju ciąży bliźniąt monochorialnych. Badania z użyciem wstrzyknięć wykazały, że anastomozy AA, AV i VV występują odpowiednio w 80%, 95% i 20% niepowikłanych ciąż bliźniąt monochorialnych1 (Rysunek 1). Uznaje się, że anastomozy AA chronią przed rozwojem TTTS i TAPS6. Badania z użyciem wstrzyknięć wykazały, że anastomozy AA występują tylko w 20% łożysk w TTTS i w 10% łożysk w TAPS1,2,7 (Rysunek 2). W przypadku łożysk w TTTS leczonych metodą fetoskopowej laseroterapii, na powierzchni łożyska widoczne są blizny powstałe w wyniku koagulacji laserowej anastomoz naczyniowych (Rysunek 3 i 4). Łożyska w TAPS charakteryzują się obecnością zaledwie kilku minimalnych anastomoz AV2 (Rysunek 5). Część łożyska przypadająca na biorcę w TAPS jest często pletoryczna, podczas gdy część dawcy jest blada (Rysunek 6). W ciążach bliźniąt monochorialnych z dysproporcją masy urodzeniowej płód z zahamowanym wzrostem często wykazuje pępowinowe przyczepienie błonowe oraz znacznie mniejszą część łożyska (Rysunek 7). Anastomozy AA często występują w łożyskach monochorialnych bliźniąt z dysproporcją masy urodzeniowej8. Łożyska monochorialno-monoamniotyczne mają charakterystyczną angioarchitekturę z krótkim odstępem między obydwoma przyczepami pępowin (Rysunek 8). Częstość występowania anastomoz AA w łożyskach monoamniotyczno-monochorialnych wynosi niemal 10%, co zapobiega rozwojowi TTTS u bliźniąt monoamniotycznych9. Rysunki w tym artykule przedstawiają charakterystyczne znaleziska w łożyskach monochorialnych, w których w naszym ośrodku wykonano wstrzyknięcia barwnika. Rutynowo stosujemy ciemniejsze kolory (niebieski lub zielony) dla tętnic oraz jaśniejsze kolory (żółty, różowy lub pomarańczowy) dla żył.
<img alt="Schemat ludzkiej łożyska z kolorowymi tętnicami i żyłami, prezentujący analizę struktury naczyniowej." src="/files/ftp_upload/3208/3208fig1.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rysunek 1"> 
Rycina 1. Łożysko jednojąderkowe z prawidłowej, niepowikłanej ciąży bliźniaczej jednojąderkowej, wykazujące kilka anastomoz tętniczo-żylnych (AV) z zielonych tętnic do różowych żył (białe gwiazdki), kilka anastomoz żylno-tętniczych (VA) z niebieskich tętnic do żółtych żył (zielone gwiazdki) oraz jedną dużą anastomozę tętniczo-tętniczą (AA) (zidentyfikowaną na podstawie mieszania się niebieskiego i zielonego barwnika; niebieska gwiazdka).
<img alt="Schemat anatomiczny naczyń krwionośnych łożyska z wyróżnieniem sieci naczyniowej i zakodowanymi kolorystycznie drogami krążenia." src="/files/ftp_upload/3208/3208fig2.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rysunek 2"> 
Rysunek 2. Łożka jednojąizowa w ciąży z TTTS leczonej seryjną amnioredukcją, wykazująca obecność jedynie anastomozy AV (białe gwiazdki) i VA (zielone gwiazdki) bez anastomozy AA.
<img alt="Schemat ludzkiej łożyska z kolorowym układem naczyniowym przedstawiający sieć żył i tętnic." src="/files/ftp_upload/3208/3208fig3.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rysunek 3"> 
Rysunek 3. Łożka w TTTS po fetoskopowej koagulacji laserowej anastomoz naczyniowych z zastosowaniem techniki selektywnej, w której przypadkowo pozostawiono drożną małą anastomozę szczątkową (biała gwiazdka). W technice selektywnej anastomozy naczyniowe są najpierw identyfikowane, a następnie koagulowane pojedynczo.
<img alt="Kolorowa sieć naczyń krwionośnych na łożysku, schemat anatomiczny do badań biologicznych." src="/files/ftp_upload/3208/3208fig4.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rycina 4"> 
Rysunek 4. łożysko w TTTS po fetoskopowej koagulacji laserowej z zastosowaniem techniki Solomona, w której po zidentyfikowaniu i koagulacji każdego pojedynczego anastomozy koagulowany jest cały równik naczyniowy od jednego brzegu łożyska do drugiego.
<img alt="Schemat ludzkiej łożyska przedstawiający strukturę naczyniową; badanie anatomiczne; materiał edukacyjny." src="/files/ftp_upload/3208/3208fig5.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rycina 5"> 
Rysunek 5. łożysko z TAPS, w którym wzdłuż równika naczyniowego widoczne są tylko nieliczne, znikome anastomozy VA (białe gwiazdki).
<img alt="Badanie anatomii łożyska, przedstawiające strukturę rozwidloną na zielonym tle do celów badań edukacyjnych." src="/files/ftp_upload/3208/3208fig6.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rysunek 6"> 
Rycina 6. Strona maciczna łożyska w przypadku TAPS (przedstawiona na rysunku 5) wykazuje charakterystyczną różnicę w zabarwieniu pomiędzy obiema częściami łożyska.
<img alt="Ludzka łożysko z widocznymi naczyniami krwionośnymi; schemat sekcji do badań anatomicznych." src="/files/ftp_upload/3208/3208fig7.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rycina 7"> 
Rycina 7. Łożysko monochorialne w ciąży bliźniaczej z selektywnym pozapłodowym ograniczeniem wzrostu jednego z płodów. Płód z ograniczeniem wzrostu ma welamentarne przyczepy pępowiny i znacznie mniejszy udział w łożysku. Biała gwiazdka oznacza anastomozę tętniczo-tętniczą (AA).
<img alt="Schemat ludzkiej łożyska z wstrzykniętymi naczyniami, przedstawiający sieć naczyniową do celów edukacyjnych w badaniach anatomicznych." src="/files/ftp_upload/3208/3208fig8.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rysunek 8"> 
Rysunek 8. Łożeka monoamniotyczna: Zwróć uwagę na różne anastomozy AV (zielona gwiazdka), VA (niebieska gwiazdka) oraz dwie anastomozy AA (białe gwiazdki), a także na krótką odległość między oboma przyczepami pępowin.

<ol><li>Lopriore, E., Middeldorp, J. M., Sueters, M., Vandenbussche, F. P., Walther, F. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Twin-to-twin+transfusion+syndrome%3A+from+placental+anastomoses+to+long-term+neurodevelopmental+outcome%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Pediatr.+Rev%22%5BJournal%5D)">Twin-to-twin transfusion syndrome: from placental anastomoses to long-term neurodevelopmental outcome.</a> Curr. Pediatr. Rev. 1, 191-203 (2005).</li>
<li>Slaghekke, F., Kist, W. J., Oepkes, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Twin+anemia-polycythemia+sequence%3A+diagnostic+criteria%2C+classification%2C+perinatal+management+and+outcome%5BTitle%5D)+AND+%22Fetal+Diagn.+Ther%22%5BJournal%5D)">Twin anemia-polycythemia sequence: diagnostic criteria, classification, perinatal management and outcome.</a> Fetal Diagn. Ther. 27, 181-190 (2010).</li>
<li>Lopriore, E., Middeldorp, J. M., Oepkes, D., Klumper, F. J., Walther, F. J., Vandenbussche, F. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Residual+anastomoses+after+fetoscopic+laser+surgery+in+twin-to-twin+transfusion+syndrome%3A+frequency%2C+associated+risks+and+outcome%5BTitle%5D)+AND+%22Placenta%22%5BJournal%5D)">Residual anastomoses after fetoscopic laser surgery in twin-to-twin transfusion syndrome: frequency, associated risks and outcome.</a> Placenta. 28, 204-208 (2007).</li>
<li>Lopriore, E., Slaghekke, F., Middeldorp, J. M., Klumper, F. J., Oepkes, D., Vandenbussche, F. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Residual+anastomoses+in+twin-to-twin+transfusion+syndrome+treated+with+selective+fetoscopic+laser+surgery%3A+localization%2C+size%2C+and+consequences%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Obstet.+Gynecol%22%5BJournal%5D)">Residual anastomoses in twin-to-twin transfusion syndrome treated with selective fetoscopic laser surgery: localization, size, and consequences.</a> Am. J. Obstet. Gynecol. , (2009).</li>
<li>Lewi, L., Jani, J., Cannie, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intertwin+anastomoses+in+monochorionic+placentas+after+fetoscopic+laser+coagulation+for+twin-to-twin+transfusion+syndrome%3A+is+there+more+than+meets+the+eye%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Obstet.+Gynecol%22%5BJournal%5D)">Intertwin anastomoses in monochorionic placentas after fetoscopic laser coagulation for twin-to-twin transfusion syndrome: is there more than meets the eye.</a> Am. J. Obstet. Gynecol. 194, 790-795 (2006).</li>
<li>Denbow, M. L., Cox, P., Taylor, M., Hammal, D. M., Fisk, N. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Placental+angioarchitecture+in+monochorionic+twin+pregnancies%3A+relationship+to+fetal+growth%2C+fetofetal+transfusion+syndrome%2C+and+pregnancy+outcome%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Obstet.+Gynecol%22%5BJournal%5D)">Placental angioarchitecture in monochorionic twin pregnancies: relationship to fetal growth, fetofetal transfusion syndrome, and pregnancy outcome.</a> Am. J. Obstet. Gynecol. 182, 417-426 (2000).</li>
<li>van Meir, H., Slaghekke, F., Lopriore, E., van Wijngaarden, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Arterio-arterial+anastomoses+do+not+prevent+the+development+of+twin+anemia-polycythemia+sequence%5BTitle%5D)+AND+%22Placenta%22%5BJournal%5D)">Arterio-arterial anastomoses do not prevent the development of twin anemia-polycythemia sequence.</a> Placenta. 31, 163-165 (2010).</li>
<li>De Paepe, M. E., Shapiro, S., Young, L., Luks, F. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Placental+characteristics+of+selective+birth+weight+discordance+in+diamniotic-monochorionic+twin+gestations%5BTitle%5D)+AND+%22Placenta%22%5BJournal%5D)">Placental characteristics of selective birth weight discordance in diamniotic-monochorionic twin gestations.</a> Placenta. 31, 380-386 (2010).</li>
<li>Umur, A., van Gemert, M. J., Nikkels, P. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monoamniotic-versus+diamniotic-monochorionic+twin+placentas%3A+anastomoses+and+twin-twin+transfusion+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Obstet.+Gynecol%22%5BJournal%5D)">Monoamniotic-versus diamniotic-monochorionic twin placentas: anastomoses and twin-twin transfusion syndrome.</a> Am. J. Obstet. Gynecol. 189, 1325-1329 (2003).</li>
<li>Senat, M. V., Deprest, J., Boulvain, M., Paupe, A., Winer, N., Ville, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endoscopic+laser+surgery+versus+serial+amnioreduction+for+severe+twin-to-twin+transfusion+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22N.+Engl.+J.+Med%22%5BJournal%5D)">Endoscopic laser surgery versus serial amnioreduction for severe twin-to-twin transfusion syndrome.</a> N. Engl. J. Med. 351, 136-144 (2004).</li>
<li>Lopriore, E., Sueters, M., Middeldorp, J. M., Vandenbussche, F. P., Walther, F. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Haemoglobin+differences+at+birth+in+monochorionic+twins+without+chronic+twin-to-twin+transfusion+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22Prenat.+Diagn%22%5BJournal%5D)">Haemoglobin differences at birth in monochorionic twins without chronic twin-to-twin transfusion syndrome.</a> Prenat. Diagn. 25, 844-850 (2005).</li>
<li>Papathanasiou, D., Witlox, R., Oepkes, D., Walther, F. J., Bloemenkamp, K. W., Lopriore, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monochorionic+twins+with+ruptured+vasa+previa%3A+double+trouble%21%5BTitle%5D)+AND+%22Fetal+Diagn.+Ther%22%5BJournal%5D)">Monochorionic twins with ruptured vasa previa: double trouble!</a> Fetal Diagn. Ther. 28, 48-50 (2010).</li>
<li>Weingertner, A. S., Kohler, A., Kohler, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinical+and+placental+characteristics+in+four+new+cases+of+twin+anemia-polycythemia+sequence%5BTitle%5D)+AND+%22Ultrasound+Obstet.+Gynecol%22%5BJournal%5D)">Clinical and placental characteristics in four new cases of twin anemia-polycythemia sequence.</a> Ultrasound Obstet. Gynecol. 35, 490-494 (2010).</li>
<li>Lewi, L., Cannie, M., Blickstein, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Placental+sharing%2C+birthweight+discordance%2C+and+vascular+anastomoses+in+monochorionic+diamniotic+twin+placentas%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Obstet.+Gynecol%22%5BJournal%5D)">Placental sharing, birthweight discordance, and vascular anastomoses in monochorionic diamniotic twin placentas.</a> Am. J. Obstet. Gynecol. 197, 587-588 (2007).</li>
<li>Lewi, L., Gucciardo, L., Huber, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinical+outcome+and+placental+characteristics+of+monochorionic+diamniotic+twin+pairs+with+early-+and+late-onset+discordant+growth%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Obstet.+Gynecol%22%5BJournal%5D)">Clinical outcome and placental characteristics of monochorionic diamniotic twin pairs with early- and late-onset discordant growth.</a> Am. J. Obstet. Gynecol. , (2008).</li>
<li>De Paepe, M. E., Friedman, R. M., Poch, M., Hansen, K., Carr, S. R., Luks, F. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Placental+findings+after+laser+ablation+of+communicating+vessels+in+twin-to-twin+transfusion+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatr.+Dev.+Pathol%22%5BJournal%5D)">Placental findings after laser ablation of communicating vessels in twin-to-twin transfusion syndrome.</a> Pediatr. Dev. Pathol. 7, 159-165 (2004).</li>
<li>De Paepe, M. E., DeKoninck, P., Friedman, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vascular+distribution+patterns+in+monochorionic+twin+placentas%5BTitle%5D)+AND+%22Placenta%22%5BJournal%5D)">Vascular distribution patterns in monochorionic twin placentas.</a> Placenta. 26, 471-475 (2005).</li>
<li>Nikkels, P. G., Hack, K. E., vanGemert, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pathology+of+twin+placentas+with+special+attention+to+monochorionic+twin+placentas%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Pathol%22%5BJournal%5D)">Pathology of twin placentas with special attention to monochorionic twin placentas.</a> J. Clin. Pathol. 61, 1247-1253 (2008).</li>
<li>Quintero, R. A., Martinez, J. M., Lopez, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Individual+placental+territories+after+selective+laser+photocoagulation+of+communicating+vessels+in+twin-twin+transfusion+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Obstet.+Gynecol%22%5BJournal%5D)">Individual placental territories after selective laser photocoagulation of communicating vessels in twin-twin transfusion syndrome.</a> Am. J. Obstet. Gynecol. 192, 1112-1118 (2005).</li>
<li>Quintero, R. A., Comas, C., Bornick, P. W., Allen, M. H., Kruger, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+versus+non-selective+laser+photocoagulation+of+placental+vessels+in+twin-to-twin+transfusion+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22Ultrasound+Obstet.+Gynecol%22%5BJournal%5D)">Selective versus non-selective laser photocoagulation of placental vessels in twin-to-twin transfusion syndrome.</a> Ultrasound Obstet. Gynecol. 16, 230-236 (2000).</li>
</ol>

Nie zadeklarowano konfliktów interesów.

TTTS i TAPS to dwa ciężkie zaburzenia, które mogą wystąpić u bliźniąt jednołożyskowych. Oba schorzenia wynikają z anastomoz tętniczo-żylnych (AV), które powodują niezrównoważony przepływ krwi między płodami. W ciągu ostatnich dwóch dekad dostępna stała się laserowa chirurgia fetoskopowa, która okazała się najlepszą metodą leczenia TTTS10. Celem laserowego leczenia fetoskopowego jest przerwanie krążenia między bliźniętami poprzez koagulację anastomoz naczyniowych na powierzchni łożyska. Jednakże leczenie lasero...

<table><tbody><tr><td>Cewniki pępowinowe (różne wymiary, długość 40 cm)</td><td>Vygon</td><td>1270.08 (8 F) 1270.08 (5 F)1270.04 (4 F)1270.03 (3.5 F)1270.02 (2.5 F)</td><td>Można użyć każdego rodzaju cewnika</td></tr><tr><td>Strzykawki 20 ml</td><td>BD Biosciences</td><td>300613</td><td></td></tr><tr><td>Barwnik (różne kolory)</td><td>Royal Talens Schoolverf</td><td>36716010 (niebieski)36715010 (zielony)36712350 (żółty)36713570 (różowy)</td><td>Można użyć każdego lepkiego barwnika</td></tr></tbody></table>

dokładna i prosta ocena anastomoz naczyniowych w łożysku jednojajuszowym z wykorzystaniem barwnika

Accurate and Simple Evaluation of Vascular Anastomoses in Monochorionic Placenta using Colored Dye

Obecność naczyniowych anastomoz łożyskowych jest conditio sine qua non dla rozwoju zespołu transfuzji płodowo-płodowej (TTTS) oraz sekwencji anemii i policytemii u bliźniąt (TAPS)1,2. Badania z użyciem wtryskiwania substancji do łożysk bliźniąt wykazały, że takie anastomozy występują niemal zawsze u bliźniąt jednojajowych z jednym łożyskiem (monochorialnych) i są niezwykle rzadkie u bliźniąt dwułożyskowych (dichorialnych)1. Udokumentowano trzy typy anastomoz: tętnica-tętnica, żyła-żyła oraz tętnica-żyła. Anastomozy tętniczo-żylne (AV) są jednokierunkowe i określa się je mianem anastomoz „głębokich”, ponieważ przebiegają przez wspólny kotyledon łożyska, natomiast anastomozy tętniczo-tętnicze (AA) i żylno-żylne (VV) są dwukierunkowe i określa się je jako „powierzchowne”, ponieważ znajdują się na blaszce chorionowej. Zarówno TTTS, jak i TAPS są spowodowane wypadkową nierównowagą przepływu krwi między bliźniętami wynikającą z anastomoz AV. Krew z jednego bliźnięcia (donora) jest pompowana przez tętnicę do wspólnego kotyledonu łożyska, a następnie odpływa przez żyłę do krążenia drugiego bliźnięcia (recypienta). Jeśli krew nie jest pompowana z powrotem z recypienta do donora poprzez przeciwstawnie skierowane głębokie anastomozy AV lub przez anastomozy powierzchowne, dochodzi do nierównowagi objętości krwi, co stopniowo prowadzi do rozwoju TTTS lub TAPS. Wykazano, że obecność anastomozy AA chroni przed rozwojem TTTS i TAPS poprzez kompensację nierównowagi krążenia spowodowanej jednokierunkowymi anastomozami AV1,2. 
Wtryskiwanie substancji do łożysk monochorialnych wkrótce po urodzeniu jest użyteczną metodą zrozumienia etiologii różnych powikłań (hematologicznych) u bliźniąt monochorialnych i jest wymaganym testem do postawienia diagnozy TAPS2. Ponadto wtryskiwanie do łożysk w TTTS, które zostały poddane fetoskopowej laseroterapii, pozwala na identyfikację ewentualnych pozostałych anastomoz3-5. Informacje te są niezwykle istotne dla wszystkich perinatologów zaangażowanych w prowadzenie i opiekę nad bliźniętami monochorialnymi z TTTS lub TAPS. Obecnie stosuje się kilka technik wtryskiwania do łożyska. Przedstawiamy prosty protokół do dokładnej oceny obecności (pozostałych) anastomoz naczyniowych z wykorzystaniem wtryskiwania barwnika.

Zespół transfuzji bliźniak-bliźniak oraz sekwencja anemii i policytemii u bliźniąt to dwa potencjalnie dewastujące problemy w medycynie perinatalnej. Obie te zaburzenia występują wyłącznie u bliźniąt monochorialnych i wynikają z niezrównoważonego przepływu krwi przez naczyniowe anastomozy łożyskowe. Przedstawiamy prosty protokół służący do dokładnej oceny obecności anastomoz naczyniowych za pomocą wstrzykiwania barwnika do naczyń łożyska po urodzeniu.

Dokładna i prosta ocena anastomoz naczyniowych w łożysku jednojajuszowym z wykorzystaniem barwnika

Obecność naczyniowych anastomoz łożyskowych jest conditio sine qua non rozwoju zespołu przetoczenia bliźniąt (TTTS) oraz anemii bliźniąt...

Ogólnym celem poniższego eksperymentu jest zbadanie architektury naczyniowej łożyska monochorialnego za pomocą wtryskiwania barwnika do anastomoz naczyniowych. Po pobraniu łożysko zostaje najpierw opłukane i przycięte. Następnie do naczyń pępowinowych wprowadza się cewniki.Następnie przez cewniki wstrzykuje się barwnik, aby zademonstrować liczbę, typ i rozmiar anastomozy naczyniowej. Ostatecznie, w naczyniach DY można zidentyfikować różne wzorce anastomoz naczyniowych występujące w łożyskach jednochorionowych. Metoda ta może dostarczyć informacji na temat zespołu przetoczenia między bliźniętami lub TTTS.Może ono również dostarczyć istotnych informacji o innych łożyskach w bliźniakach jednojajowych, takich jak anemia bliźniąt, sekwencja policytemii, zespół transfuzji płodowo-płodowej (TAPS) lub selektywne ograniczenie wzrostu płodu. Zazwyczaj osoby rozpoczynające pracę z tą metodą będą napotykać trudności, ponieważ kaniulacja naczyń pępowinowych może wymagać pewnego doświadczenia i czasu na naukę. Zaprezentuję tę procedurę wraz z kolegą z naszego centrum terapii płodowej.Obejrzyj powierzchnię maciczną i płodową łożyska pod kątem kompletności lub uszkodzeń. Fragment błon rozdzielających można przekazać do badania patomorfologicznego. Aby potwierdzić rodzaj przyczepu, łożysko można umieścić w plastikowej misce i przechowywać w chłodni do jednego tygodnia do czasu badania końcowego i wstrzyknięcia barwnika. Przemyj łożysko ciepłą wodą. Następnie przytnij błony obwodowe.Usuń błonę dzielącą sploty i odwarstw błonę owodniową. Następnie przetnij każdą pępowinę w odległości około pięciu centymetrów od miejsca jej przyczepu.Delikatnie wyciśnij skrzepy krwi z naczyń pępowinowych i łożyskowych, a następnie zidentyfikuj żyłę pępowinową. Kaniulacja oraz następujący po niej wtrysk D są najtrudniejszymi etapami tej procedury. Precyzyjne podanie preparatu wymaga ostrożności i cierpliwości.Niestaranne obchodzenie się z tkankami, szczególnie podczas kaniulacji, może prowadzić do wycieku barwnika poza naczynia. Aby ułatwić rozprowadzenie barwnika, zaleca się, aby jedna osoba wykonywała iniekcję, podczas gdy druga delikatnie masowała naczynia w celu wprowadzenia barwnika. Wprowadź do żyły pępowinowej cewnik o odpowiedniej średnicy, unikając tworzenia fałszywych kanałów przy użyciu pęsety. Poszerz światło tętnicy.Ponownie należy unikać tworzenia fałszywych przekanałów. Następnie jedną tętnicę pępowinową kaniuluje się za pomocą mniejszego cewnika. Oba etapy kaniulacji powtarza się dla drugiej pępowiny.Ułatw wprowadzenie cewników, delikatnie masując naczynia pępowinowe ruchem w przód i w tył. Następnie obwiąż oba sznury pępowinowe kawałkiem taśmy, aby zapobiec cofaniu się barwnika podczas jego wstrzykiwania. Przed rozpoczęciem napełnij dwie strzykawki o pojemności 20 ml barwnikami o kontrastowych kolorach.Następnie do cewnika żyły pępowinowej oraz do cewnika tętnicy pępowinowej jednego z pępowin podłącz po jednej strzykawce. Następnie, stosując niskie ciśnienie, ostrożnie wstrzyknij barwnik do żyły pępowinowej, podczas gdy asystent delikatnie przesuwa barwnik w żyle. Aby barwnik wypełnił wszystkie naczynia łożyska, zwróć szczególną uwagę na małe naczynia w pobliżu równika naczyniowego, gdzie łączą się ze sobą anastomozy obu bliźniąt.Następnie należy wypełnić tętnicę pępowinową drugim barwnikiem, ponownie stosując niskie ciśnienie i wspomagając transfer całego barwnika do wszystkich przestrzeni tętniczych. Potem należy napełnić dwie kolejne strzykawki o pojemności 20 mililitrów barwnikami o kontrastowych kolorach, a następnie podłączyć je i wstrzyknąć zawartość każdej strzykawki do żyły pępowinowej oraz tętnicy pępowinowej, stosując te same techniki co wcześniej. W przypadku drugiej pępowiny należy dokładnie zbadać równik naczyniowy i odnotować liczbę oraz rodzaje anastomoz.Umieść taśmę mierniczą na łożysku w celu zmierzenia średnic i udziałów łożyskowych na zdjęciach cyfrowych. Następnie, używając cyfrowego aparatu o wysokiej rozdzielczości, sfotografuj wstrzyknięte łożysko. Architektura naczyniowa łożyska u bliźniąt różni się w zależności od typu jednojajowej ciąży monochorialnej; tutaj przedstawiono łożysko monochorialne z prawidłowej, niepowikłanej ciąży bliźniąt monochorialnych, w którym widocznych jest kilka anastomoz tętniczo-żylnych (AV) widocznych tutaj jako zielone tętnice i różowe żyły, wskazane białymi gwiazdkami kilka anastomoz żylno-tętniczych (VA) reprezentowanych tutaj przez niebieskie tętnice i żółte żyły, dodatkowo wskazane zielonymi gwiazdkami, oraz jedna duża anastomosis tętniczo-tętnicza (AA) zidentyfikowana poprzez zmieszanie niebieskiego i zielonego barwnika i oznaczona niebieską gwiazdką.Jednochorionowe łożysko z ciąży z zespołem transfuzji płodowo-płodowej (TTTS), leczonej seryjną redukcją wody płodowej, wykazuje obecność jedynie anastomoz AV (oznaczonych białymi gwiazdkami) i VA (oznaczonych zielonymi gwiazdkami), bez anastomozy AA. Przedstawione tutaj łożysko TTTS znajduje się po skopowej koagulacji laserowej anastomoz naczyniowych z zastosowaniem techniki selektywnej, w której niewielka pozostałość anastomozy, oznaczona białą gwiazdką, została nieumyślnie pozostawiona jako drożna. W technice selektywnej anastomozy naczyniowe są najpierw identyfikowane, a następnie koagulowane jedna po drugiej. Rysunek ten przedstawia kolejne łożysko TTTS po skopowej koagulacji laserowej z zastosowaniem techniki Salomona, w której po identyfikacji i koagulacji każdej poszczególnej anastomozy, cały równik naczyniowy został poddany koagulacji od jednego brzegu łożyska do drugiego w sekwencji anemia-policytemia bliźniąt (TAPS).Łożyska charakteryzują się obecnością zaledwie kilku niewielkich anastomoz tętniczo-żylnych (AV). Przykład przedstawiono tutaj, gdzie widoczne są jedynie niewielkie anastomozy wskazane białymi gwiazdkami. Część łożyska należąca do biorcy w typie TAPO jest często pletoryczna, co widać tutaj po lewej stronie łożyska, podczas gdy część łożyska należąca do dawcy, widoczna tutaj po prawej stronie, jest blada.Przedstawiono tutaj łożysko jednowłonowe z ciąży bliźniaczej z selektywnym wewnątrzmacicznym ograniczeniem wzrostu jednego z płodów. Płód z ograniczeniem wzrostu miał centralne przyczepy pępowiny i znacznie mniejszy udział w masie łożyska. Wyraźnie widoczna jest duża anastomoza AA, oznaczona białą gwiazdką, oraz duża anastomoza AV, wskazana zieloną gwiazdką. Anastomozy AA często występują w łożyskach jednowłonowych u bliźniąt z rozbieżnością masy urodzeniowej; łożyska jednowłonowe jednoowodniowe charakteryzują się specyficzną architekturą naczyniową z krótką odległością między obydwoma przyczepami pępowin, co widać na tej rycinie.Należy zwrócić uwagę na kilka anastomoz AV i VA oraz dwie anastomozy AA, oznaczone odpowiednio zielonymi, niebieskimi i białymi gwiazdkami, a także na krótką odległość między obydwoma przyczepami strun. Podczas wykonywania tej procedury należy pamiętać, że anastomozy AV mogą być niezwykle małe i trudne do zwizualizowania. Procedurę iniekcji należy przeprowadzić bardzo starannie, aby ocenić obecność małych resztkowych anastomoz AV po zabiegu laserowym w leczeniu TTTS po jego wystąpieniu.Technika ta utorowała drogę badaczom w dziedzinie chirurgii płodu do badania i ulepszania metod koagulacji laserowej w przypadku jednojajowych ciąż bliźniaczych z TTTS.

accurate-simple-evaluation-vascular-anastomoses-monochorionic

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Dokładna i prosta ocena zrostek naczyniowych w łożysku jednoallantazycznym przy użyciu kolorowego barwnika

Mapowanie naczyniowe łożysk bliźniąt jednojajowych (MC) po porodzie umożliwia szczegółowe wykazanie połączeń naczyniowych między układami krążenia bliźniąt. Uważa się, że niezrównoważenie tych połączeń odgrywa kluczową rolę w rozwoju powikłań związanych z bliźnięciem MC, w tym zespołu przetoczenia bliźniąt.

Cewnikowanie z wykorzystaniem drutu prowadzącego i wtryskiwanie barwnika do mapowania naczyniowego łożysk w bliзняtach jednołożyskowych

Analiza anatomii naczyń mózgowych gryzoni odgrywa istotną rolę w eksperymentalnych badaniach nad udarem. W tym kontekście perfuzja wewnątrz naczyniowa barwionym lateksem jest uważana za standardowe narzędzie od wielu lat. Technika ta wiąże się jednak z wyraźnymi ograniczeniami technicznymi, które obniżają jej powtarzalność. Opisujemy tutaj prostą metodę umożliwiającą powtarzalną wizualizację naczyń mózgowych. Wstrzyknięcie mieszaniny dwóch dostępnych w handlu tuszy na bazie sadzy poprzez lewą...

Dożylna perfuzja tuszem z sadzy pozwala na wiarygodną wizualizację naczyń mózgowych

Ten protokół opisuje technikę oceny zmian w unaczynieniu matki podczas ciąży u myszy. Za pomocą metod stereologicznych ocenia się ilościowo przebudowę dziesiętnych tętnic spiralnych, a wyniki potwierdza się jakościowo za pomocą immunohistochemii.

Ocena przebudowy naczyń krwionośnych matki w czasie ciąży w macicy myszy

Ten protokół demonstruje metodę opartą na fluorescencji do wizualizacji układu naczyniowego i ilościowego określenia jego złożoności u Xenopus tropicalis. Naczynia krwionośne można obrazować kilka minut po wstrzyknięciu barwnika fluorescencyjnego do bijącego serca zarodka po manipulacjach genetycznych i/lub farmakologicznych w celu zbadania rozwoju układu sercowo-naczyniowego in vivo.

Wizualizacja i analiza ilościowa angiogenezy embrionalnej u Xenopus tropicalis

Przedstawiamy szczegółową metodę badania fizjologii łożyska u człowieka in vivo w terminie. Metoda łączy pobieranie próbek krwi z naczyń przychodzących i odpływowych po stronie matczynej i płodowej łożyska z pomiarami ultrasonograficznymi objętości przepływu krwi i pobieraniem próbek tkanki łożyska.

Podejście do pobierania próbek z 4 naczyń w integracyjnych badaniach fizjologii łożyska człowieka in vivo

To badanie przedstawia protokół odwracalnego oczyszczania tkanek, barwienia immunologicznego, renderowania 3D i analizy sieci naczyniowych w próbkach ludzkich kosmków łożyskowych rzędu 1 - 2 mm3.

Trójwymiarowe renderowanie i analiza znakowanych immunologicznie, oczyszczonych ludzkich sieci naczyniowych kosmków łożyskowych

Ćwiczenie specyficznych umiejętności wymaganych do fetoskopowej laserowej koagulacji monokosmówkowych zespoleń łożyskowych na realistycznych modelach może pomóc mniej doświadczonym chirurgom w pokonywaniu stromej krzywej uczenia się związanej z tą procedurą, która jest obecnie uważana za standard opieki nad zespołem transfuzji bliźniąt.

Modelowe szkolenie chirurgiczne: nabywanie umiejętności w zakresie fetoskopowej fotokoagulacji laserowej łożyska dwuzębowego z błoną diamniową przy użyciu realistycznych symulatorów

Opisujemy system, który wykorzystuje trzy metody do oceny bezpieczeństwa i skuteczności dostarczania leków ukierunkowanych na łożysko: obrazowanie in vivo do monitorowania akumulacji nanocząstek, ultradźwięki o wysokiej częstotliwości do monitorowania rozwoju łożyska i płodu oraz HPLC do ilościowego określania dostarczania leków do tkanek.

Kompleksowa ocena skuteczności i bezpieczeństwa podawania leków ukierunkowanych na łożysko przy użyciu trzech uzupełniających się metod

Tutaj przedstawiono protokół perfuzji naczyniowej ex vivo matczyno-płodowej, który umożliwia podanie artykułu testowego do układu naczyniowego matki i ocenę transferu przez łożysko cząsteczek ksenobiotycznych lub środków farmakologicznych oprócz zmian w fizjologii łożyska.

Perfuzja ex vivo łożyska gryzonia

Przedstawiamy protokół do efektywnej oceny perfuzji tętniaka tętniaka i drożności naczyń tętniaka ściany bocznej u szczurów i królików, przy użyciu fluorescencji opartej na fluoresceinie wideoangiografii (FVA). Przy dodatniej wartości predykcyjnej wynoszącej 92,6% jest to prosta, ale bardzo skuteczna i ekonomiczna metoda, która nie wymaga specjalnego sprzętu.

Angiografia fluorescencyjna do oceny perfuzji tętniaka i drożności tętnicy rodzicielskiej w modelach tętniaków szczurów i królików

Poznaj metodę iniekcji barwnika do oceny zespoleń naczyniowych w łożysku jednokosmówkowym. Technika ta pozwala wizualizować anastomozy naczyniowe i lepiej zrozumieć zespół transfuzji płodowej oraz sekwencję niedokrwistości-poliglobulii.

Dokładna i prosta ocena anastomoz naczyniowych w łożysku jednojajuszowym z wykorzystaniem barwnika

Przeglądaj więcej filmów