September 5th, 2011
Zespół transfuzji między bliźniętami i sekwencja czerwienicy niedokrwistości bliźniaczej to dwa potencjalnie niszczące problemy w medycynie okołoporodowej. Oba zaburzenia występują tylko u bliźniąt jednokosmówkowych i wynikają z niezrównoważonego przepływu krwi przez zespolenia naczyniowe łożyska. Zapewniamy prosty protokół do dokładnej oceny obecności zespoleń naczyniowych za pomocą kolorowego barwnika iniekcji naczyń łożyskowych po urodzeniu.
Ogólnym celem poniższego eksperymentu jest zbadanie architektury angio łożyska jednokosmówkowego za pomocą iniekcji barwnika barwnego do zespolenia naczyniowego. Po nabyciu łożysko jest najpierw myte i przycinane. Następnie do naczyń pępowinowych wprowadza się cewniki.
Następnie przez cewniki wstrzykuje się barwnik kolorowy w celu zademonstrowania liczby, rodzaju i wielkości zespolenia naczyniowego. Wreszcie, w naczyniach DY można zidentyfikować różne wzorce zespoleń naczyniowych obecnych w łożyskach jednokosmówkowych. Chociaż ta metoda może dostarczyć informacji na temat zespołu transfuzji między bliźniętami lub TTTS.
Może również dostarczyć ważnych informacji o innych monoklonicznych bliźniaczych łożyskach, takich jak niedokrwistość bliźniąt, sekwencja czerwienicy lub krany lub selektywne wewnątrzmaciczne ograniczenie wzrostu. Ogólnie rzecz biorąc, osoby, które dopiero zaczynają korzystać z tej metody, będą miały trudności, ponieważ cewnikowanie naczyń pępowinowych może wymagać pewnej wiedzy specjalistycznej i pewnej krzywej uczenia się. Zademonstruję ten zabieg razem z koleżanką z naszego centrum terapii płodu.
Kobieta Sprawdź, czy powierzchnia łożyska matki i płodu jest kompletna lub przerwana. Odcinek błon dzielących można wysłać do patologii Aby potwierdzić rodzaj choic, łożysko można umieścić w plastikowej misce i przechowywać w lodówce do tygodnia do czasu badania końcowego i wstrzyknięcia barwnika kolorowego umyj łożysko ciepłą wodą. Następnie przytnij błony obwodowe.
Usuń przeplatającą się błonę dzielącą i oderwij anon. Teraz przeciąć każdą pępowinę na około pięć centymetrów. Odległość od włożenia przewodu.
Delikatnie wyciśnij skrzepy krwi z naczyń pępowinowych i łożyskowych, a następnie zidentyfikuj żyłę pępowinową. Wykonanie kaniulacji, a następnie wstrzyknięcie D są najtrudniejsze z tej procedury. Dokładne wstrzyknięcie wymaga ostrożności i cierpliwości.
Nieostrożne obchodzenie się, szczególnie podczas cewnikowania, może spowodować wyciek barwnika na zewnątrz naczyń. Aby ułatwić rozprowadzanie barwnika, zalecamy, aby jedna osoba wstrzykiwała, podczas gdy inna delikatnie wmasowywała barwnik w naczynia, Kanumuluj żyłę pępowinową za pomocą cewnika o odpowiedniej wielkości, unikając fałszywych przejść za pomocą pęsety. Poszerz światło tętnicy.
Ponownie, unikaj fałszywych fragmentów. Następnie kanuluj jedną tętnicę pępowinową za pomocą mniejszego cewnika. Powtórz oba etapy kaniulacji dla drugiej pępowiny.
Ułatw zakładanie cewników poprzez delikatny masaż naczyń pępowinowych w przód iw tył. Następnie zawiąż kawałek taśmy wokół obu sznurków, aby uniknąć cofania się kolorowego barwnika podczas wstrzykiwania barwnika. Zanim zaczniesz, poczuj dwie 20-mililitrowe strzykawki z kontrastującymi kolorowymi barwnikami.
Następnie należy przymocować jedną strzykawkę do cewnika do żyły pępowinowej, a drugą do cewnika do tętnicy pępowinowej jednej z pępowin. Następnie za pomocą niskiego ciśnienia delikatnie wstrzyknij barwnik do żyły pępowinowej, podczas gdy asystent delikatnie wpycha barwnik do żyły. Aby barwnik mógł wypełnić wszystkie naczynia łożyskowe, należy zwrócić szczególną uwagę na małe naczynia w pobliżu równika naczyniowego, gdzie zespolenia z któregokolwiek z bliźniąt łączą się ze sobą.
Teraz wypełnij tętnicę pępowinową drugim barwnikiem, ponownie, używając niskiego ciśnienia i pomocy, aby przenieść cały barwnik do wszystkich przestrzeni tętniczych. Następnie napełnij dwie kolejne 20-mililitrowe strzykawki kontrastowymi kolorowymi barwnikami, a następnie dołącz i wstrzyknij zawartość każdej strzykawki do żyły pępowinowej i tętnicy pępowinowej, stosując te same techniki, co poprzednio. W przypadku drugiej pępowiny dokładnie zbadaj równik naczyniowy i zapisz liczbę oraz rodzaje zespoleń.
Umieść taśmę mierniczą na łożysku, aby zmierzyć średnice i udziały łożyska na zdjęciach cyfrowych. Następnie, za pomocą aparatu cyfrowego o wysokiej rozdzielczości, sfotografuj wstrzyknięte łożysko. Architektura naczynia łożyskowego u bliźniąt różni się w zależności od rodzaju ciąży bliźniaczej jednokosmówkowej, jak pokazano tutaj w łożysku jednokosmówkowym z normalnej niepowikłanej ciąży bliźniaczej jednokosmówkowej, kilku zespoleniach żylnych tętniczych lub przedsionkowo-komorowych widocznych tutaj z zielonych tętnic i różowych żył i oznaczonych białymi gwiazdami kilka zespoleń eno tętniczych lub VA reprezentowanych tutaj przez niebieskie tętnice i żółte żyły, i dalej oznaczone zielonymi gwiazdami i jednym dużym zespoleniem tętniczym tętniczym lub zespoleniem AA, zidentyfikowanym przez zmieszanie niebieskiego i zielonego barwnika i oznaczonym niebieską gwiazdą, są tutaj obecne.
Łożysko jednokosmówkowe z zespołu przetoczenia krwi bliźniaczej do bliźniaczej lub ciąża TTTS leczona seryjną redukcją owodni wykazuje obecność tylko AV wskazanego białymi gwiazdkami i VA wskazanego zielonymi gwiazdkami zespolenia bez zespolenia AA pokazanego tutaj to łożysko A-T-T-T-S po skopijnym, laserowym wykrzepieniu zespolenia naczyniowego techniką lasera, w którym nieumyślnie pozostawiono niewielce resztkowe zespolenie oznaczone białą gwiazdą. W przypadku selektywnej techniki laserowej najpierw identyfikuje się zespolenia naczyniowe, a następnie koaguluje jeden po drugim. Rysunek ten przedstawia kolejne łożysko TTTS po skopowej koagulacji laserowej przy użyciu techniki Solomona, w której po identyfikacji i koagulacji każdego pojedynczego zespolenia, cały równik naczyniowy był koagulowany od jednego brzegu łożyska do drugiej sekwencji lub stranów czerwienicy bliźniaczej niedokrwistości.
Łożysko charakteryzuje się obecnością tylko kilku maleńkich zespoleń przedsionkowo-komorowych. Przykład którego pokazany jest tutaj przykład w którym widoczne są jedynie maleńkie zespolenia oznaczone białymi gwiazdkami. Udział łożyska biorcy z kranów jest często obfity, jak widać tutaj po lewej stronie łożyska, podczas gdy udział łożyska dawcy, jak widać tutaj po prawej stronie, jest blady.
Pokazane tutaj jest łożysko jednokosmówkowe z ciąży bliźniaczej z selektywnym wewnątrzmacicznym ograniczeniem wzrostu jednego z bliźniąt. Płód z ograniczeniem wzrostu miał wszczepienie do pępowiny i znacznie mniejszy udział łożyska. Duże zespolenie AA jest wyraźnie widoczne oznaczone białą gwiazdą i duże zespolenie przedsionkowo-komorowe oznaczone zieloną gwiazdą Zespolenia AA są często obecne w łożysku jednokosmówkowym od bliźniąt z dysonansem masy urodzeniowej, łożysko monokosmówkowe mono owodniowe ma charakterystyczną architekturę angio z niewielką odległością między obydwoma wstawami pępowiny, jak widać na tym rysunku.
Zwróć uwagę, że kilka zespoleń AV VA i dwie AA są oznaczone odpowiednio zieloną, niebieską i białą gwiazdą oraz krótka odległość między obydwoma wprowadzeniami przewodu. Podejmując się tej procedury, należy pamiętać, że zespolenie przedsionkowo-komorowe może być bardzo małe i trudne do uwidocznienia. Procedura iniekcji musi być wykonana skrupulatnie, aby ocenić obecność małego resztkowego zespolenia przedsionkowo-komorowego po operacji laserowej dla TTTS po jego rozwinięciu.
Technika ta utorowała drogę naukowcom zajmującym się chirurgią płodu do zbadania i ulepszenia technik koagulacji laserowej w monoklonicznych ciążach bliźniaczych z TTTS.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
To badanie bada angioarchitekturę łożyska monochoriotycznego poprzez wstrzyknięcie barwnika w celu oceny połączeń naczyniowych. Metoda ma na celu poprawę zrozumienia zespołu przetoki płodowej i sekwencji niedokrwistości bliźniaczą z nadkrwistością.
Understanding placental vascular anastomoses is critical for elucidating the pathophysiology of twin-to-twin transfusion syndrome (TTTS) and twin anemia polycythemia sequence (TAPS), conditions arising from imbalanced blood flow in monochorionic twins. This dye injection method provides a straightforward approach to visualize and characterize arterio-arterial, veno-venous, and arterio-venous anastomoses, supporting mechanistic insights into fetal circulatory disorders. The protocol enables perinatologists and researchers to assess residual anastomoses post-laser surgery, informing clinical decision-making in high-risk twin pregnancies.
The method fits within the discovery continuum by enabling anatomical characterization of placental vasculature, which informs mechanistic models of twin transfusion syndromes and guides evaluation of therapeutic interventions targeting vascular anastomoses.