Name: Zmodyfikowany system hybrydowy drożdży do identyfikacji białek oddziałujących z czynnikiem wzrostu progranuliną (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-01-17T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 56 s
Description: Poznaj zmodyfikowany system hybrydowy drożdży do identyfikacji białek oddziałujących z progranuliną. Ta metoda znacząco redukuje fałszywe pozytywy i zwiększa niezawodność wyników badań nad interakcjami białkowymi.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Niniejsza praca została sfinansowana z grantów badawczych NIH K01AR053210, R01AR061484 oraz grantu z National Psoriasis Foundation.

1. Informacje wprowadzające
System drożdżowego dwu-hybrydowego jest potężną techniką genetyczną wykorzystywaną do wykrywania oddziaływań białko-białko 16, 17. Dostępnych jest komercyjnie kilka rodzajów systemów dwu-hybrydowych, takich jak systemy oparte na lexA, system rekrutacji Sos oraz systemy dwu-hybrydowe oparte na komórkach bakteryjnych lub ssaków; niniejsza praca skupia się konkretnie na modyfikacjach najczęściej stosowanego systemu drożdżowego dwu-hybrydowego opartego na GAL4. W skrócie metoda ta opiera się na właściwościach białka GAL4 drożdży, które składa się z oddzielnych domen odpowiedzialnych za wiązanie DNA i aktywację transkrypcyjną. Białko przynęta (bait) jest wyrażane jako fuzja z domeną wiążącą DNA (DNA-BD) białka GAL4, natomiast białka ofiara (prey) są wyrażane jako fuzje z domeną aktywacyjną (AD) białka GAL4. Oddziaływanie między białkami fuzyjnymi przynęty i ofiary prowadzi do aktywacji transkrypcyjnej miejsc wiązania GAL4 zawierających geny reporterowe zintegrowane z genomem drożdży. Zasada działania Y2H została przedstawiona na Rys. 1, a procedura eksperymentalna została podsumowana na Rys. 2.
2. Wymagane materiały i roztwory
<ol>
	<li>Pożywka wzrostowa YPD (mieszanina peptonu, ekstraktu drożdżowego i dekstrozy w proporcjach optymalnych dla wzrostu większości szczepów Saccharomyces cerevisiae).</li>
	<li>Minimalne bazy SD (minimalne syntetyczne bazy zdefiniowane (SD) zawierają bazę azotową dla drożdży, siarczan amonu oraz źródło węgla – dekstrozę. Do minimalnej bazy SD można dodać suplementy typu dropout (DO), aby otrzymać syntetyczną, zdefiniowaną pożywkę pozbawioną określonych składników odżywczych).</li>
	<li>Suplement Leu/-Trp Dropout (DO) (zawiera wszystkie niezbędne aminokwasy z wyjątkiem leucyny i tryptofanu)</li>
	<li>Suplement -His/-Leu/-Trp/-Ura Dropout (DO) (zawiera wszystkie niezbędne aminokwasy z wyjątkiem leucyny, tryptofanu, histydyny i uracylu)</li>
	<li>Bulion Luria (LB) (Trypton 10 g/L, ekstrakt drożdżowy 5 g/L, NaCl 5 g/L)</li>
	<li>Roztwór X-Gal (5-bromo-4-chloro-3-indolyl-β-D-galaktopiranosyd): przygotowany jako roztwór zapasowy 20 mg/ml w N, N-dimetyloformamidzie</li>
	<li>10X TE (100 mM Tris-HCl (pH 7.5), 10 mM EDTA, autoklawowany)</li>
	<li>DNA z plemników śledzia lub łososia poddane sonikacji, zagotowane (10 mg/ml)</li>
	<li>10X LiAc (1 M octanu litu, autoklawowany)</li>
	<li>50% roztwór PEG-3350, sterylizowany przez filtr</li>
	<li>3-amino-1, 2, 4-triazol (3AT)</li>
	<li>Kanamycyna</li>
	<li>Ampicylina</li>
	<li>Komórki ELECTROMAX DH5α</li>
	<li>Bufor Z: 16,1 g Na2HPO4 7H2O (lub 8,52 g bezwodnego), 5,5 g NaH2PO4 H2O (lub 4,8 g bezwodnego), 0,75 g KCl, 0,246 g MgSO4 7H2O (lub 0,12 g bezwodnego), rozpuszczone w 1 L autoklawowanej, destylowanej wody i doprowadzone do pH 7,0.</li>
</ol>
3. Generowanie przynęty (pDBLeu-PGRN)
Fragment cDNA kodujący PGRN pozbawiony peptydu sygnałowego (a.a.21-588) został sklonowany kierunkowo do miejsc Sal I-Not I wektora pDBLeu (system dwuhybrydowy ProQuest, Invitrogen), z zachowaniem tej samej ramki odczytu translacyjnego co domena wiążąca DNA białka GAL4, w celu otrzymania pDBLeu-PGRN.
<ol>
	<li>Należy przeprowadzić amplifikację opisanego powyżej fragmentu cDNA PGRN metodą PCR, używając starterów oligonukleotydowych zaprojektowanych tak, aby zawierały miejsca restrykcyjne (Sal I na końcu 5′ i Not I na końcu 3′), co umożliwi fuzję w odpowiedniej ramce odczytu.</li>
	<li>Produkt PCR należy oczyścić za pomocą elektroforezy żelowej, a następnie poddać trawieniu endonukleazami restrykcyjnymi Sal I i Not I. 
	 Wektor DB pDBLeu należy przygotować poprzez podwójne trawienie tymi samymi endonukleazami restrykcyjnymi.</li>
	<li>Fragment PGRN po trawieniu należy ligować do zlinearyzowanego wektora pDBLeu, a następniey przeprowadzić transformację szczepu DH5α z selekcją na podłożu LB z kanamycyną w stężeniu 25 μg/ml.</li>
	<li>Poprawność konstruktu należy zweryfikować za pomocą sekwencjonowania DNA.</li>
</ol>
4. Transformacja plazmidu przynęty w małej skali
<ol>
	<li>Zaszczepić 5 ml pożywki YPD kolonią szczepu Mav203 (Invitrogen) i inkubować z wytrząsaniem przez noc w temperaturze 30°C.</li>
	<li>Rozcieńczyć nocną kulturę w 50 ml pożywki YPD. Hodować przez dodatkowe 2-4 godziny.</li>
	<li>Odwirować komórki przy 3000 rpm przez 5 min w temperaturze pokojowej. Resuspendować osad w 40 ml autoklawowanej, destylowanej wody.</li>
	<li>Ponownie odwirować komórki. Resuspendować w 2 ml roztworu I i inkubować w temperaturze pokojowej przez 10 min. 
	Roztwór I: 0,5 ml 10xLiAc, 0,5 ml 10xTE, 4 ml H2O</li>
	<li>Do probówek odmierzyć DNA: 2-3 μl pDBLeu-PGRN (0,25μg/μl) oraz 10 μl denaturowanego, fragmentowanego DNA z pleców łososia (10μg/μl). Dodać 100μl komórek drożdży i dokładnie wymieszać.</li>
	<li>Dodać 700μl roztworu II i dokładnie wymieszać. Inkubować w temperaturze 30°C przez 30 min. Roztwór II: 0,2 ml 10xLiAc, 0,2 ml 10xTE, 1,6 ml 50% PEG3350.</li>
	<li>Przeprowadzić szok termiczny w temperaturze 42°C przez 15 min.</li>
	<li>Odwirować przez 2 min. Odlać nadosad. Resuspendować osad w 200 μl autoklawowanej, destylowanej wody.</li>
	<li>Wysiać zawiesinę na płytki SD-Leu wraz z rozcieńczeniami seryjnymi. Inkubować płytki w temperaturze 30°C przez 2-3 dni.</li>
</ol>
5. Walidacja przynęty
Przed przeprowadzeniem przesiewu w systemie dwuhybrydowym drożdżowym należy przetestować pDBLeu-PGRN pod kątem samoaktywacji oraz określić podstawowy poziom ekspresji genu reporterowego HIS3. Test ten pozwala ustalić, czy przynęty aktywują transkrypcję i czy samoaktywację można zneutralizować za pomocą inhibitorów. 3-amino-1, 2, 4-triazol (3-AT) jest konkurencyjnym inhibitorem produktu genu HIS3 i może być wykorzystany do miareczkowania minimalnego poziomu ekspresji HIS3 wymaganego do wzrostu na pożywkach pozbawionych histydyny.
<ol>
	<li>Przeprowadzić transformację pDBLeu-PGRN do szczepu drożdży Mav203, wysiać transformanty na płytki SD-Leu i inkubować przez 48-72 h w temperaturze 30°C.</li>
	<li>Przenieść kolonie z każdej transformacji za pomocą autoklawowanych wykałaczek na płytki SD-Leu-His zawierające 3-AT w stężeniach 10 mM, 25 mM, 50 mM, 75 mM i 100 mM. 3-AT jest konkurencyjnym inhibitorem enzymu HIS3 i tylko te przynęty, które wykazują samoaktywację, będą zdolne do wzrostu w obecności 3-AT.</li>
	<li>Szczepy przynęt rosnące na płytkach z 100 mM 3-AT nie nadają się do zastosowania w badaniu dwuhybrydowym. W przypadku przynęt nadających się do użycia należy wybrać najniższe stężenie 3-AT, które hamuje wzrost komórek. W wielu przypadkach do przesiewania stosuje się 25 mM 3-AT.</li>
</ol>
6. Przesiewanie biblioteki cDNA
Plazmid pDBLeu-PGRN wprowadza się do szczepu MaV203 za pomocą małoscale'owej transformacji zgodnie z powyższym opisem. W celu wprowadzenia biblioteki pPC86 (Invitrogen) do MaV203 (pDBLeu-PGRN), procedura opisana poniżej zazwyczaj pozwala uzyskać ~4 x 104 kolonii przy użyciu 0,5 μg DNA biblioteki plazmidowej. W związku z tym uzyskanie 2,5 x 106 transformantów drożdży wymaga użycia ~30,0 μg DNA plazmidowego biblioteki pPC86-cDNA, przeprowadzenia 25 transformacji oraz przygotowania pięćdziesięciu szalek o średnicy 10 cm (SD-Leu-Trp-His-Ura+3AT).
<ol>
	<li>Przygotować odpowiednią liczbę 10-cm płytek SD-Leu-Trp-His-Ura+3AT (50 dla poniższej procedury). Przygotować również co najmniej cztery 10-cm płytki SD-Leu-Trp do oszacowania liczby transformantów.</li>
	<li>Przeprowadzić transformację biblioteki do szczepu MaV203 zawierającego pDBLeu-PGRN zgodnie z poniższą procedurą.
	<ol>
		<li>Resuspender kilka wyizolowanych kolonii MaV203 (pDBLeu-PGRN) w ~100μl autoklawowanej wody destylowanej i wysiać je na 10-cm płytkę SD-Leu. Powtórzyć procedurę dla drugiej płytki SD-Leu. Inkubować obie płytki przez 18-24 h w temperaturze 30°C.</li>
		<li>Zeskrobać i całkowicie resuspender komórki w 10 ml autoklawowanej wody destylowanej. Dodać odpowiednią objętość zawiesiny komórkowej do 500 ml ciekłego medium YPD w kolbie, aby uzyskać OD600 na poziomie ~0,1.</li>
		<li>Zweryfikować, czy po inokulacji OD wynosi ~0,1.</li>
		<li>Wstrząsać w temperaturze 30°C, aż OD600 osiągnie wartość ~0,4.</li>
		<li>Przygotować świeże odczynniki:
		<ol type="a">
			<li>110 ml 1X TE/LiAc, łącząc 11 ml 10X TE, 11 ml 10X LiAc oraz 88 ml autoklawowanej wody.</li>
			<li>16 ml PEG/LiAc, łącząc 1,6 ml 10X TE, 1,6 ml 10X LiAc oraz 12,8 ml 50% PEG-3350.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Odwirować komórki przy 3000g przez 5 min w temperaturze pokojowej.</li>
		<li>Odlać nadsącz i delikatnie resuspender osad poprzez pipetowanie w 100 ml autoklawowanej wody destylowanej w temperaturze pokojowej.</li>
		<li>Wirować przy 3000 g przez 5 min w temperaturze pokojowej.</li>
		<li>Odlać nadsącz z odwirowanych komórek i resuspender osad komórkowy w 50 ml roztworu 1X TE/LiAc.</li>
		<li>Wirować przy 3000 g przez 5 min w temperaturze pokojowej.</li>
		<li>Odlać nadsącz i resuspender osad w końcowej objętości 2,5 ml roztworu 1X TE/LiAc.</li>
		<li>Przeprowadzić 25 transformacji. Połączyć 2,5 ml komórek, 125 μl (10μg/μl) zdenaturowanego, rozszczepionego DNA z plemni łososia oraz 30 μg biblioteki cDNA. Wymieszać delikatnie poprzez pipetowanie. Dodać 15 ml roztworu PEG/LiAc i delikatnie wymieszać. Rozdzielić do 25 autoklawowanych probówek do mikrocentryfugi o pojemności 1,5 ml po 700 μl każda.</li>
		<li>Inkubować przez 30 min w kąpieli wodnej o temperaturze 30°C.</li>
		<li>Poddać szokowi termicznemu przez 15 min w kąpieli wodnej o temperaturze 42°C.</li>
		<li>Wirować przy 6 000 g przez 1 min w temperaturze pokojowej. Ostrożnie usunąć nadsącz. Delikatnie resuspender każdy osad w 400 μl autoklawowanej wody destylowanej poprzez pipetowanie.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Wysiać 200 μl mieszaniny transformacyjnej z każdej transformacji na pojedyncze 10-cm płytki SD-Leu-Trp-His-Ura+3AT (stężenie 3AT: 25 mM) za pomocą rozpylacza, tak aby z 25 autoklawowanych probówek 1,5-ml można było przygotować 50 płytek (SD-Leu-Trp-His-Ura +3AT).</li>
	<li>Inkubować płytki przez 5-10 dni w temperaturze 30°C.</li>
	<li>W celu oszacowania wydajności transformacji reakcji, seryjne rozcieńczenia jednej reakcji (1:40; 1:400 oraz 1:4000) wysiać na płytkę SD-Leu-Trp. Po inkubacji przez 3 dni w temperaturze 30°C policzyć liczbę kolonii i obliczyć całkowitą liczbę transformantów.</li>
</ol>
7. Analiza X-gal
<ol>
	<li>Przenieś kolonie na płytkę YPD; inkubuj w temperaturze 30°C przez noc.</li>
	<li>Umieść okrągłą membranę nitrocelulozową na płytce YPD; upewnij się, że między membraną a płytką YPD nie ma pęcherzyków powietrza. Po 1-2 min upewnij się, że wszystkie kolonie zostały przeniesione na membrany (papier nitrocelulozowy).</li>
	<li>Umieść membranę stroną z koloniami do góry w korytku wykonanym z folii aluminiowej.</li>
	<li>Włóż membranę do ciekłego azotu, odczekaj dwadzieścia sekund, a następnie zanurz w ciekłym azocie na kilka minut.</li>
	<li>Wyjmij membranę, aby odmarzła.</li>
	<li>W międzyczasie wymieszaj następujące odczynniki: 
	1,5ml buforu Z 
	20μl X-gal (20 mg/ml)</li>
	<li>Nalej bufor Z/X-gal do szalki Petriego, a na wierzch połóż papier Whatmana.</li>
	<li>Ostrożnie umieść papier nitrocelulozowy na papierze Whatmana.</li>
	<li>Inkubuj w temperaturze 37°C do pojawienia się niebieskich kolonii.</li>
</ol>
8. Test retransformacji
Białka fuzyjne ofiary (AD-Y) wyizolowane podczas przesiewania biblioteki powinny zachować interakcję z białkiem fuzyjnym przynęty (DB-X), aby indukować geny reporterowe; ponowna transformacja klonów ofiary i konstruktu przynęty do drożdży może dodatkowo wyeliminować wyniki fałszywie dodatnie i ułatwić dalszą analizę.
<ol>
	<li>Wyizoluj plazmidowe DNA z szczepów drożdży potencjalnie zawierających oddziałujące białka.</li>
	<li>Przeprowadź transformację DNA do komórek E. coli DH5α, wysiej transformaty na płytki LB+100 μg/ml ampicyliny w celu selektywnego wyizolowania biblioteki pPC86-cDNA i inkubuj przez noc w temperaturze 37°C.</li>
	<li>Wybierz kilka kolonii z płytki i przenieś je do pożywki LB+100 μg/ml ampicyliny.</li>
	<li>Przygotuj miniprep DNA i przeanalizuj go za pomocą podwójnego trawienia restrykcyjnego enzymami Sal I i Not I.</li>
	<li>Przeprowadź kotransformację plazmidu prey i plazmidu bait do szczepu MaV203, wysiej mieszaniny transformacyjne na płytki SC-Leu-Trp i inkubuj przez 2-3 dni w temperaturze 30°C.</li>
	<li>Wybierz trzy różne kolonie z płytki SC-Leu-Trp i wykonaj test X-gal.</li>
</ol>
9. Sekwencjonowanie i analiza bioinformatyczna
Wykonaj sekwencjonowanie DNA plazmidowego wyizolowanego z prawdopodobnych klonów prawdziwie dodatnich, porównaj te sekwencje z sekwencjami w bazie GenBank przy użyciu programu BLAST i zidentyfikuj klony dwuhybrydowe odpowiadające znanym genom. Dane z sekwencjonowania wykazały, że dwa z 12 uzyskanych powyżej wyników dodatnich to receptor TNFR2 powierzchni komórkowej (TNFRSF1B/CD120b; Accession #NM_130426). Ponadto interakcję między PGRN a TNFR zweryfikowano za pomocą różnych testów interakcji białko-białko, w tym in vitro testu wiązania w fazie stałej, koimmunoprecypitacji, analizy rezonansu plazmonowego oraz analizy cytometrycznej 14.
10. Reprezentatywne wyniki
Schemat blokowy procesu przesiewania przedstawiono na Rys. 3. Na tym etapie zazwyczaj uzyskuje się od 50 do 100 pozytywnych kandydatów na klony. Wstępnie wyizolowano 54 pozytywne kandydaty na klony spośród 2,5 miliona transformantów przesiewanych z użyciem przynęty PGRN. Pozytywne kandydaty na klony zostały następnie zweryfikowane poprzez wykonanie testu X-gal. Zazwyczaj za pomocą testu X-gal eliminuje się około 50% fałszywie pozytywnych klonów. Na tym etapie dla przynęty PGRN uzyskano 23 pozytywne kandydaty na klony (Rys. 4). Ponowna transformacja klonów ofiary oraz konstruktu przynęty do drożdży pozwala na dalszą eliminację wyników fałszywie pozytywnych; klony, które nadal aktywują geny reporterowe, prawdopodobnie reprezentują wyniki prawdziwie pozytywne. Zazwyczaj usuwanych jest około 50% pozytywnych kandydatów na klony. Ostatecznie wyizolowano 12 pozytywnych klonów oddziałujących z PGRN w drożdżach.
<img alt="Schemat systemu drożdżowego dwuhybrydowego przedstawiający badanie oddziaływań białkowych oraz wyniki ekspresji genu reporterowego." src="/files/ftp_upload/3562/3562fig1.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="Rycina 1"> 
Rycina 1. Zasada działania systemu drożdżowego dwuhybrydowego
<img alt="Schemat analizy interakcji białek: generowanie przynęty, przesiew cDNA, analiza bioinformatyczna." src="/files/ftp_upload/3562/3562fig2.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="Rysunek 2"> 
Rysunek 2. Procedura identyfikacji partnerów wiążących białka z wykorzystaniem systemu dwuhybrydowego drożdżowego
<img alt="Schemat eksperymentu drożdżowego systemu dwuhybrydowego; transformacja plazmidowa, test X-gal, analiza fuzji cDNA." src="/files/ftp_upload/3562/3562fig3.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="Rysunek 3"> 
Rysunek 3. Schemat blokowy przesiewania biblioteki drożdżowego systemu dwuhybrydowego. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/3562/3562fig3large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić obraz w pełnym rozmiarze.</a>
<img alt="Porównanie płytek z kulturami drobnoustrojów pod kątem aktywności enzymatycznej, pokazujące zmianę koloru w układzie siatki kwadrantów." src="/files/ftp_upload/3562/3562fig4.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="Rycina 4"> 
Rycina 4. Analiza aktywności beta-galaktosydazy dla pozytywnych kandydatów klonalnych. A, Pozytywne klony uzyskane z przesiewu biblioteki przeniesiono na płytkę YPD i inkubowano przez noc w 30°C; B, Wszystkie kolonie z płytki YPD przeniesiono na membrany nitrocelulozowe i przeprowadzono analizę aktywności beta-galaktosydazy.

<ol><li>He, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Progranulin+is+a+mediator+of+the+wound+response%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Med%22%5BJournal%5D)">Progranulin is a mediator of the wound response.</a> Nat. Med. 9, 225-229 (2003).</li>
<li>Kessenbrock, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Proteinase+3+and+neutrophil+elastase+enhance+inflammation+in+mice+by+inactivating+antiinflammatory+progranulin%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Invest%22%5BJournal%5D)">Proteinase 3 and neutrophil elastase enhance inflammation in mice by inactivating antiinflammatory progranulin.</a> J. Clin. Invest. 118, 2438-2447 (2008).</li>
<li>Zhu, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Conversion+of+proepithelin+to+epithelins%3A+roles+of+SLPI+and+elastase+in+host+defense+and+wound+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Conversion of proepithelin to epithelins: roles of SLPI and elastase in host defense and wound repair.</a> Cell. 111, 867-878 (2002).</li>
<li>Yin, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exaggerated+inflammation%2C+impaired+host+defense%2C+and+neuropathology+in+progranulin-deficient+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Med%22%5BJournal%5D)">Exaggerated inflammation, impaired host defense, and neuropathology in progranulin-deficient mice.</a> J. Exp. Med. 207, 117-128 (2010).</li>
<li>Van Damme, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Progranulin+functions+as+a+neurotrophic+factor+to+regulate+neurite+outgrowth+and+enhance+neuronal+survival%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell.+Biol%22%5BJournal%5D)">Progranulin functions as a neurotrophic factor to regulate neurite outgrowth and enhance neuronal survival.</a> J. Cell. Biol. 181, 37-41 (2008).</li>
<li>Baker, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mutations+in+progranulin+cause+tau-negative+frontotemporal+dementia+linked+to+chromosome+17%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Mutations in progranulin cause tau-negative frontotemporal dementia linked to chromosome 17.</a> Nature. 442, 916-919 (2006).</li>
<li>Cruts, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Null+mutations+in+progranulin+cause+ubiquitin-positive+frontotemporal+dementia+linked+to+chromosome+17q21%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Null mutations in progranulin cause ubiquitin-positive frontotemporal dementia linked to chromosome 17q21.</a> Nature. 442, 920-924 (2006).</li>
<li>Guo, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Granulin-epithelin+precursor+binds+directly+to+ADAMTS-7+and+ADAMTS-12+and+inhibits+their+degradation+of+cartilage+oligomeric+matrix+protein%5BTitle%5D)+AND+%22Arthritis+Rheum%22%5BJournal%5D)">Granulin-epithelin precursor binds directly to ADAMTS-7 and ADAMTS-12 and inhibits their degradation of cartilage oligomeric matrix protein.</a> Arthritis Rheum. 62, 2023-2036 (2010).</li>
<li>Feng, J. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Granulin+epithelin+precursor%3A+a+bone+morphogenic+protein+2-inducible+growth+factor+that+activates+Erk1%2F2+signaling+and+JunB+transcription+factor+in+chondrogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22FASEB.+J%22%5BJournal%5D)">Granulin epithelin precursor: a bone morphogenic protein 2-inducible growth factor that activates Erk1/2 signaling and JunB transcription factor in chondrogenesis.</a> FASEB. J. 24, 1879-1892 (2010).</li>
<li>Xu, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cartilage+oligomeric+matrix+protein+associates+with+granulin-epithelin+precursor+%28GEP%29+and+potentiates+GEP-stimulated+chondrocyte+proliferation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Cartilage oligomeric matrix protein associates with granulin-epithelin precursor (GEP) and potentiates GEP-stimulated chondrocyte proliferation.</a> J. Biol. Chem. 282, 11347-11355 (2007).</li>
<li>Liu, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+ADAMTS-7+and+ADAMTS-12+in+the+pathogenesis+of+arthritis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Clin.+Pract.+Rheumatol%22%5BJournal%5D)">The role of ADAMTS-7 and ADAMTS-12 in the pathogenesis of arthritis.</a> Nat. Clin. Pract. Rheumatol. 5, 38-45 (2009).</li>
<li>Liu, C., Dib-Hajj, S. D., Waxman, S. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Waxman%2C+S.G.+Fibroblast+growth+factor+homologous+factor+1B+binds+to+the+C+terminus+of+the+tetrodotoxin-resistant+sodium+channel+rNav1.9a+%28NaN%29%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Waxman, S.G. Fibroblast growth factor homologous factor 1B binds to the C terminus of the tetrodotoxin-resistant sodium channel rNav1.9a (NaN).</a> J. Biol. Chem. 276, 18925-18933 (2001).</li>
<li>Liu, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ADAMTS-7%3A+a+metalloproteinase+that+directly+binds+to+and+degrades+cartilage+oligomeric+matrix+protein%5BTitle%5D)+AND+%22FASEB.+J%22%5BJournal%5D)">ADAMTS-7: a metalloproteinase that directly binds to and degrades cartilage oligomeric matrix protein.</a> FASEB. J. 20, 988-990 (2006).</li>
<li>Tang, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Growth+Factor+Progranulin+Binds+to+TNF+Receptors+and+Is+Therapeutic+Against+Inflammatory+Arthritis+in+Mice%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">The Growth Factor Progranulin Binds to TNF Receptors and Is Therapeutic Against Inflammatory Arthritis in Mice.</a> Science. 332, 478-484 (2011).</li>
<li>Wu, H., Siegel, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Progranulin+Resolves+Inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Progranulin Resolves Inflammation.</a> Science. 332, 427-428 (2011).</li>
<li>Hollenberg, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+a+new+family+of+tissue-specific+basic+helix-loop-helix+proteins+with+a+two-hybrid+system%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cell.+Biol%22%5BJournal%5D)">Identification of a new family of tissue-specific basic helix-loop-helix proteins with a two-hybrid system.</a> Mol. Cell. Biol. 15, 3813-3822 (1995).</li>
<li>Vojtek, A. B., Hollenberg, S. M., Cooper, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mammalian+Ras+interacts+directly+with+the+serine%2Fthreonine+kinase+Raf%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Mammalian Ras interacts directly with the serine/threonine kinase Raf.</a> Cell. 74, 205-214 (1993).</li>
</ol>

Nie zadeklarowano konfliktów interesów.

Przesiewy metodą dwuhybrydowej analizy drożdżowej okazały się skutecznym narzędziem w identyfikacji oddziaływań białkowych 16, 17. W porównaniu z innymi podejściami do identyfikacji partnerów wiążących białka, takimi jak biochemiczna kopurowanie czy chipy białkowe, system dwuhybrydowy drożdży jest czułą metodą genetyczną, która może być wykorzystana do przesiewania bardzo dużych liczb sekwencji kodujących w stosunkowo prostym doświadczeniu; ponadto wykrywa on oddziaływania in vivo i nie wymaga skomplikowanego ...

<table><tbody><tr><td>System dwuhybrydowy ProQuest</td><td>Invitrogen</td><td>10835</td><td></td></tr><tr><td>Pożywka wzrostowa YPD</td><td>Clontech Laboratories</td><td>630409</td><td></td></tr><tr><td>Pożywka agarowa YPD</td><td>Clontech Laboratories</td><td>630410</td><td></td></tr><tr><td>Podstawa minimalnego agaru SD</td><td>Clontech Laboratories</td><td>630412</td><td></td></tr><tr><td>Suplement DO -Leu</td><td>Clontech Laboratories</td><td>630414</td><td></td></tr><tr><td>Suplement DO -Leu/-Trp</td><td>Clontech Laboratories</td><td>630417</td><td></td></tr><tr><td>Suplement DO -His/-Leu/-Trp/-Ura</td><td>Clontech Laboratories</td><td>630425</td><td></td></tr><tr><td>3-amino-1,2,4-triazol (3AT)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A8056</td><td></td></tr><tr><td>Pożywka Luria (LB)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L3022</td><td></td></tr><tr><td>X-Gal</td><td>Invitrogen</td><td>15520-034</td><td></td></tr><tr><td>Sonikowany DNA sperm plodnia łososia</td><td>Stratagene, Agilent Technologies</td><td>201190</td><td></td></tr><tr><td>Ampicylina</td><td>AMRESCO</td><td>0339</td><td></td></tr><tr><td>Siarczan kanamycyny</td><td>Invitrogen</td><td>11815-024</td><td></td></tr><tr><td>Komórki kompetentne Subcloning Efficiency&amp;#8482; DH5&amp;#945;&amp;#8482;</td><td>Invitrogen</td><td>18265-017</td><td></td></tr><tr><td>Zasada Trizma&amp;#174;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T6066</td><td></td></tr><tr><td>Octan litu</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L4158</td><td></td></tr><tr><td>Kwas etylenodiaminotetraoctowy</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>ED</td><td></td></tr><tr><td>Membrana nitrocelulozowa</td><td>Bio-Rad</td><td>162-0115</td><td></td></tr><tr><td>Szalka Petri 10 cm</td><td>ITI Scientific</td><td>CT-903</td><td></td></tr><tr><td>Inkubator (30 &amp;#x00B0;C)</td><td>ATR (Ecotron)</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

zmodyfikowany system dwuhybrydowy drożdżowy do identyfikacji białek oddziałujących z czynnikiem wzrostu progranuliną

Modified Yeast-Two-Hybrid System to Identify Proteins Interacting with the Growth Factor Progranulin

Progranulina (PGRN), znana również jako prekursor granuliny i epiteliny (GEP), jest autokrynnym czynnikiem wzrostu składającym się z 593 aminokwasów. Znane jest, że PGRN odgrywa kluczową rolę w wielu procesach fizjologicznych i chorobowych, w tym we wczesnej embriogenezie, gojeniu ran 1, stanach zapalnych 2, 3 oraz w mechanizmach odporności organizmu 4. PGRN pełni również funkcję czynnika neurotroficznego 5, a mutacje w genie PGRN prowadzące do częściowej utraty białka PGRN wywołują otępienie czołowo-skroniowe 6, 7. Nasze niedawne badania doprowadziły do wykazania, że PGRN jest istotnym regulatorem rozwoju i degradacji chrząstki 8-11. Chociaż PGRN, odkryty niemal dwie dekady temu, odgrywa kluczową rolę w wielu stanach fizjologicznych i patologicznych, wysiłki zmierzające do wykorzystania działania PGRN i zrozumienia zaangażowanych w to mechanizmów były znacznie utrudnione przez brak możliwości zidentyfikowania jego receptora lub receptorów wiążących. Aby rozwiązać ten problem, opracowaliśmy zmodyfikowaną metodę dwuhybrydową drożdżową (MY2H), opartą na najczęściej stosowanym systemie dwuhybrydowym z wykorzystaniem GAL4. W porównaniu z konwencjonalnym przesiewem dwuhybrydowym w drożdżach, MY2H drastycznie skraca proces selekcji i zmniejsza liczbę fałszywie dodatnich klonów. Ponadto podejście to jest powtarzalne i niezawodne; z sukcesem wykorzystaliśmy ten system do izolacji białek wiążących dla różnych przynęt, w tym kanałów jonowych 12, białek macierzy pozakomórkowej 10, 13 oraz czynników wzrostu14. W niniejszej pracy szczegółowo opisujemy procedurę eksperymentalną MY2H na przykładzie PGRN, która doprowadziła do zidentyfikowania TNFR2 jako pierwszego znanego receptora powiązanego z PGRN 14, 15.

Zmodyfikowaliśmy konwencjonalny screening dwuhybrydowy drożdżowy, który jest skutecznym narzędziem genetycznym w identyfikacji oddziaływań białkowych. Modyfikacja ta znacznie skraca cały proces, zmniejsza nakład pracy i, co najważniejsze, redukuje liczbę wyników fałszywie dodatnich. Ponadto podejście to jest powtarzalne i wiarygodne.

Zmodyfikowany system dwuhybrydowy drożdżowy do identyfikacji białek oddziałujących z czynnikiem wzrostu progranuliną

Progranulina (PGRN), znana również jako prekursor granuliny i epiteliny (GEP), jest autokrynnym czynnikiem wzrostu składającym się z 593 aminokwasów. Wiadomo, że PGRN odgrywa kluczową rolę ...

Ten system MY two H stanowi ulepszenie konwencjonalnego protokołu dwuhybrydowego z użyciem drożdży, co pozwala na znaczne zmniejszenie liczby wyników fałszywie dodatnich. Najpierw należy przeprowadzić transformację plazmidu przynęty do drożdży w małej skali. Po zwalidowaniu konstruktu przynęty za pomocą przesiewu z zastosowaniem inhibitora konkurencyjnego, należy przesiać bibliotekę cDNA na płytkach z czterema brakami (minus four).Następnie należy zweryfikować klony dodatnie za pomocą testów XGL i testów reakcji. Następnie należy zidentyfikować potencjalne białka oddziałujące poprzez sekwencjonowanie DNA i analizę bioinformatyczną. W rezultacie ten zmodyfikowany system drożdżowego dwuetapowego hybrydowego zwiększa znacząco skuteczność i powodzenie procesu przesiewowego.Konwencjonalny system dwuhybrydowy drożdżowy jest znany z generowania wyników fałszywie dodatnich. W niniejszym materiale przedstawiono zmodyfikowaną procedurę przesiewową, która znacząco poprawia wykrywalność interakcji dwupunktowych. Zapraszamy do rozpoczęcia.Zaszczep 50 ml pożywki YPD pięcioma ml hodowli nocnej szczepu MAV 2 0 3. Inkubuj przez dwie do czterech godzin w temperaturze 30 °C. Następnie zbierz drożdże poprzez wirowanie, po jednym przemyciu resuspenduj osad w 2 ml roztworu jeden i inkubuj w temperaturze pokojowej przez 10 minut.Przygotuj mieszaninę DNA do transformacji. Dodaj 100 µl komórek drożdży i dokładnie wymieszaj. Następnie dodaj 700 µl roztworu dwa i dokładnie wymieszaj.Najpierw inkubuj w temperaturze 30°C przez 30 minut, a następnie przeprowadź szok termiczny. Teraz należy zebrać komórki za pomocą wirowania i resuspender osad w 200 µL sterylnej wody destylowanej. Rozniesć rozcieńczenia seryjne zawiesiny na płytki SD LU i inkubować w temperaturze 30°C przez dwa do trzech dni. Ten etap potwierdza, że plazmid przynęty aktywuje transkrypcję oraz że ta samoaktywacja może zostać zneutralizowana przez inhibitory, takie jak 3-AT, będący inhibitorem konkurencyjnym produktu genu hiss3.Najpierw przeprowadź transformację plazmidu przynęty do drożdży MAV 2 0 3. Wyjałowiony materiał z reakcji wysiej na płytki SD LU i inkubuj w temperaturze 30°C. W celu przesiewania kolonii pod kątem indukowanej samoaktywacji 3-AT, użyj autoklawowanych wykałaczek do przeniesienia kolonii z każdej transformacji na płytki SD LU Hiss zawierające zwiększające się stężenia 3-AT; płytki inkubuj w temperaturze 30°C.Odrzuć szczepy przynęty, które rosną na płytkach zawierających 100 millimolar trzy at, jako nieprzydatne do zastosowania w badaniu dwuhybrydowym dla re. Dla pozostałych przynęt wybierz najniższe stężenie trzy at hamujące wzrost komórek do zastosowania w przesiewaniu biblioteki CD NA; zawieś kilka wyizolowanych kolonii drożdży zawierających plazmid przynęty w 100 microliters wody destylowanej w autoklawie. Rozsiej je na dwie 10 centimeter płytkach SD LU.Inkubuj obie płytki w temperaturze 30 °C. Zeskrob i całkowicie zawieś komórki w 10 ml. Autoklawuj wodę destylowaną i zaszczep 500 ml ciekłego medium YPD.Zweryfikuj gęstość komórek za pomocą spektroskopii, fotometrii oraz hodowli w temperaturze 30 °C. Następnie przystąp do zbierania komórek poprzez wirowanie. Przepłucz raz w 100 ml autoklawowanej wody destylowanej, a następnie raz w 50 ml roztworu jeden.Następnie zawiesinę w osadzie resuspender w 2,5 ml roztworu jeden. Teraz dodać zdenaturowane, ścinane DNA plemni łososia oraz bibliotekę cDNA, mieszając delikatnie za pomocą pipety. Następnie dodać 15 ml roztworu dwa zawierającego 40% glikolu polietylenowego.Delikatnie wymieszać i rozdzielić aliquoty o objętości 700 µL do 25 autoklawowanych probówek do mikrowirówki o pojemności 1,5 ml. Inkubować przez 30 minut w kąpieli wodnej o temperaturze 30 °C, a następnie przeprowadzić szok termiczny przez 15 minut w kąpieli wodnej o temperaturze 42 °C.Zbiór komórek należy przeprowadzić poprzez wirowanie, a następnie ostrożnie zawiesić każdy osad w 400 µL wody destylowanej autoklawowanej. Każdą mieszaninę transformacyjną należy wysiać na dwie płytki selekcyjne i inkubować od 5 do 10 dni w temperaturze 30 °C w celu kontrolnej oceny wydajności transformacji z płytki reakcyjnej. Wykonano rozcieńczenia seryjne jednej reakcji.Po inkubacji przez trzy dni w temperaturze 30 °C należy określić całkowitą liczbę kolonii. Przenieś kolonie na płytkę YPD i inkubuj w temperaturze 30 °C przez noc. Następnie umieść okrągłą membranę nitrocelulozową bezpośrednio na płytce YPD, dbając o to, aby nie powstały pęcherzyki powietrza.Po minucie należy sprawdzić, czy wszystkie kolonie zostały przeniesione na membrany. Umieść membranę stroną z koloniami do góry w łódce z folii aluminiowej i połóż ją na powierzchni ciekłego azotu na 20 sekund. Następnie zanurz ją w ciekłym azocie na kilka minut.Teraz należy wyjąć membranę w celu rozmrożenia. W międzyczasie przygotuj szalkę Petriego z warstwą świeżego roztworu XCA na papierze Whatmana. Następnie ostrożnie zanurz rozmrożoną membranę i inkubuj w temperaturze 37 °C.Do czasu pojawienia się niebieskich kolonii. Reakcja z konstruktami ofiary, klonów i przynęty w drożdżach może dodatkowo wyeliminować wyniki fałszywie dodatnie. Najpierw wyizoluj DNA plazmidowe ze szczepów drożdży potencjalnie zawierających oddziałujące białka.Przeprowadź transformację DNA do szczepu e coli DH5α i dokonaj selekcji poprzez hodowlę na płytkach LB z ampicyliną. Przesiew transformantów wykonaj za pomocą analizy enzymów restrykcyjnych. Następnie przeprowadź kotransformację plazmidów prey i bait do drożdży MAV 2.03 na płytkach SC LU trip i inkubuj przez dwa do trzech dni w temperaturze 30 °C.Wybierz trzy różne kolonie do przeprowadzenia sekwencji analizy xal, DNA plazmidowego z pozytywnych klonów i zidentyfikuj geny za pomocą bioinformatyki. W tym doświadczeniu czynnik wzrostu Rine pro Granulin został użyty jako przynęta do przesiewania biblioteki CD NA mózgu w poszukiwaniu 54 pozytywnych klonów.Kandydaty wyizolowano spośród 2,5 miliona transformantów przesianych z użyciem przynęci progranuliny. Dalsze analizy z wykorzystaniem testu ex skull wykazały 23 pozytywne klony kandydackie dla przynęci progranuliny.Co ciekawe, analizy bioinformatyczne danych z sekwencjonowania zidentyfikowały TNF R dwa. Rzeczywiście, dalsze eksperymenty funkcjonalne potwierdziły, że progranulina jest nowym ligandem receptorów TNF. Po obejrzeniu tego filmu powinni Państwo posiadać dobrą wiedzę na temat tego, jak przeprowadzić ten zmodyfikowany dwuhybrydowy skrining z wykorzystaniem interesującej Państwa bazy.Pamiętaj o pracy w rękawiczkach, ponieważ niektóre z używanych odczynników stwarzają zagrożenie. Powodzenia w eksperymentach.

modified-yeast-two-hybrid-system-to-identify-proteins-interacting

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Zmodyfikowany system dwu-hybrydowy do identyfikacji białek współdziałających z czynnikiem wzrostu progranuliną

Metoda MYTH umożliwia czułą detekcję przejściowych i trwałych oddziaływań między białkami ekspresowanymi w organizmie modelowym Saccharomyces cerevisiae. Została ona z powodzeniem zastosowana do badania egzogennych oraz drożdżowych białek błonowych w celu wysokoprzepustowej identyfikacji ich partnerów interakcji.

System błonowego dwuhybrydowego badania drożdży (MYTH) oparty na rozszczepionej ubikwitynie: potężne narzędzie do identyfikacji oddziaływań białko-białko

Opisano metodę wysokoprzepustowego screeningu służącą do identyfikacji nowych kompetentnych sygnałowo receptorów błonowych. Metoda ta nadaje się do automatyzacji na dużą skalę i pozwala na przewidywanie wiązania białek in vivo oraz subkomórkowej lokalizacji kompleksów białkowych w komórkach ssaków.

Przepływ pracy obrazowania wysokotreściowego do badania kompleksów sygnalizacyjnych Grb2 za pomocą klonowania ekspresyjnego

Ten film demonstruje test dwóch hybryd drożdży do wykrywania specyficznych interakcji między białkami. W tym teście białko będące przedmiotem zainteresowania jest znakowane do dwóch domen czynnika transkrypcyjnego, który koduje enzym β-galaktozydazy. Kiedy te dwa białka wchodzą w interakcję, powoduje to transkrypcję i translację, które tworzą enzym, który jest następnie wykrywany za pomocą testu biochemicznego.

Test dwuhybrydowy drożdży w celu określenia samoasocjacji białek w komórkach drożdży

W tym filmie demonstrujemy zmodyfikowany test hybrydowy drożdży, który wykrywa wiele białek oddziałujących z docelowym DNA. Przekształcone komórki drożdży zawierają docelową sekwencję DNA przed genem reporterowym. Dodatkowo wykazują ekspresję białek czynnika transkrypcyjnego. Kiedy białka tworzą kompleksy i wiążą się z docelowym DNA, gen reporterowy ulega ekspresji i może być wykryty enzymatycznie.

Zmodyfikowany test hybrydowy drożdży i jeden do wykrywania interakcji heteromerycznego kompleksu białkowego z DNA

Ten artykuł skupia się na identyfikacji wysoce pewnych zestawów danych interakcji między białkami gospodarza i patogenu przy użyciu kombinacji dwóch ortogonalnych metod: drożdży dwuhybrydowych, a następnie wysokoprzepustowego testu interakcji w komórkach ssaków o nazwie HT-GPCA.

Podejście porównawcze do scharakteryzowania krajobrazu interakcji białko-białko gospodarz-patogen

Ketokonazol wiąże się z aktywacją receptora Pregnane X (PXR) i antagonizuje ją. Wysokoprzepustowe badania przesiewowe mutantów PXR u drożdży definiują unikalny region wiązania ketokonazolu. Ta metoda genetyczna oparta na drożdżach odkrywa nowe interakcje receptorów jądrowych z ligandami, które wiążą się z miejscami wiązania powierzchniowego.

Odwrócony dwuhybrydowy system drożdży w celu identyfikacji reszt receptorów jądrowych ssaków, które oddziałują z ligandami i / lub antagonistami

Korzystając z mikromacierzy białkowych zawierających prawie cały proteom S. cerevisiae, sonduje się szybkie, bezstronne badanie tysięcy równoległych interakcji białko-białko. Metoda ta może być stosowana do małych cząsteczek białek, modyfikacji potranslacyjnych i innych testów o wysokiej przepustowości.

Sondowanie funkcjonalnych mikromacierzy białkowych o dużej gęstości w celu wykrycia interakcji białko-białko

Bakteryjne białka efektorowe są ważne dla skutecznego leczenia infekcji. Protokół ten opisuje eksperymentalną identyfikację białkowych partnerów wiążących bakteryjne białko efektorowe w jego naturalnym żywicielu roślinnym. Identyfikacja tych oddziaływań efektorowych za pomocą dwuhybrydowych badań przesiewowych drożdży stała się ważnym narzędziem w odkrywaniu strategii patogenności molekularnej.

Rozwikłanie funkcji efektora bakteryjnego od nienadającego się do uprawy patogenu roślinnego za pomocą drożdżowego sita dwuhybrydowego

Opisany tutaj zmodyfikowany test na jedną hybrydę drożdży jest rozszerzeniem klasycznego testu na hybrydę drożdży (Y1H) do badania i walidacji interakcji heteromerycznego kompleksu białkowego z DNA w systemie heterologicznym dla dowolnego funkcjonalnego badania genomicznego.

Zmodyfikowany system hybrydowy drożdż-jeden do badań interakcji heteromerycznego kompleksu białkowego i DNA

Przetwarzanie wsadowe drożdżowych 2-hybrydowych ekranów pozwala na bezpośrednie porównanie profili interakcji wielu białek przynęty z wysoce złożonym zestawem białek fuzyjnych ofiar. W tym miejscu opisujemy udoskonalone metody, nowe odczynniki oraz sposób ich zastosowania w takich badaniach przesiewowych.

Badanie przesiewowe drożdży 2-hybrydowych w partii w celu porównania interakcji białek

Interakcje biomolekuł, takie jak interakcje białko-białko, są molekularną podstawą funkcji biologicznych. Jeśli uda się wyizolować mutanty bez interakcji/upośledzone, które specyficznie nie mają odpowiedniej interakcji, znacznie pomogą one w zrozumieniu funkcji tej interakcji. W tym artykule przedstawiono skuteczny sposób izolowania mutantów bez interakcji/z upośledzeniem.

Izolowanie mutantów o zerowej interakcji/upośledzonych przy użyciu testu dwuhybrydowego drożdży

Poznaj zmodyfikowany system hybrydowy drożdży do identyfikacji białek oddziałujących z progranuliną. Ta metoda znacząco redukuje fałszywe pozytywy i zwiększa niezawodność wyników badań nad interakcjami białkowymi.

Zmodyfikowany system dwuhybrydowy drożdżowy do identyfikacji białek oddziałujących z czynnikiem wzrostu progranuliną

Przeglądaj więcej filmów