31 maja 2012
Mikromacierze tkankowe pozwalają na efektywne uzyskiwanie jednoczesnych informacji z wielu tkanek. Reprezentatywne części tkanek są łączone w jeden blok parafinowy. Wycinki z bloku służą do immunohistochemii i analizy wzorców ekspresji białek. Skanowanie cyfrowe generuje odpowiednie obrazy do dystrybucji danych.
Ogólnym celem tej procedury jest wykorzystanie wydajnej metody uzyskiwania jednoczesnych informacji z wielu tkanek w celu ekspresji białek w projekcie o wysokiej przepustowości, takim jak atlas białek ludzkich. Osiąga się to poprzez wybór najpierw reprezentatywnych obszarów formalnych i utrwalonych tkanek zatopionych w parafinie. Następnie zaznaczone obszary są dziurkowane, a wybrane rdzenie są łączone w pojedynczy blok parafinowy, mikromacierz tkankową.
Następnie wycina się skrawki z TMA i wykonuje się immunohistochemię. Na koniec analizowany jest wzorzec ekspresji białek, a dane są publikowane w atlasie białek ludzkich. Ostatecznie można uzyskać wyniki, które pokazują ekspresję białek w tkankach i komórkach za pomocą mikromacierzy tkankowych i immunohistochemii.
Główną zaletą tej techniki w porównaniu z istniejącymi metodami, takimi jak przeprowadzanie immunohistochemii z pojedynczych bloków tkankowych, jest to, że można zaoszczędzić cenny materiał biologiczny, a eksperymenty są bardziej powtarzalne. Kolejną zaletą tej techniki jest to, że można obniżyć koszty laryngologów, a także czas przetwarzania laboratoryjnego. Tę procedurę zademonstruje Ian call Bay, technik laboratoryjny z mojego laboratorium w celu uzyskania znormalizowanej długości rdzeni tkankowych.
Zaznacz stylik. Zaleca się pozostawienie marginesów od 2,5 do 3,0 milimetrów z każdej strony bloku parafiny, aby uniknąć pękania parafiny w celu zamontowania odpowiednich stempli. Poluzuj z sześciokątnym, które utrzymują stempel na miejscu i ustaw stempel tak, aby rowek w piaście stempla był mocno przylegający do metalowego pręta w plastikowym bloku V.
Dokręć, upewniając się, że krawędź metalowego klipsa jest pozioma. Włóż dziurkacz dawcy po lewej stronie, a dziurkacz dawcy po prawej. Użyj pokręteł regulacyjnych XY i ich cyfrowych odczytów mikrometrycznych, aby przesunąć stemple wzdłuż osi X i Y.
Aby zresetować urządzenie, naciśnij przycisk zero a BS, aby przełączać się między calami i milimetrami, naciśnij przycisk milimetra calowego. W przypadku używania jednomilimetrowego stempla do szablonu dziewięć na osiem, przestrzeń między otworami powinna wynosić dwa milimetry mierzone między środkami otworów, aby zapobiec zbyt głębokiemu wepchnięciu stempla odbiorcy w dół i uszkodzeniu stempla, ustaw maksymalną głębokość pchania stempla, umieszczając pustą kasetę w uchwycie i używając ogranicznika głębokości w lewym górnym rogu prowadnicy Z, Ustaw dolną pozycję stempla odbiorcy na jeden milimetr powyżej dolnej krawędzi kasety. Po wybraniu i zaznaczeniu odpowiedniego obszaru na wycinku tkanki oraz zaprojektowaniu szablonu do produkcji mikromacierzy tkankowej, umieść blok biorczy w uchwycie i użyj najmniejszego śrubokręta do dokręcenia.
Unikaj zbyt mocnego dokręcania, aby zapobiec oderwaniu się parafiny od kasety. Wepchnij stempel odbiorcy w dół o około pięć milimetrów w blok odbiorcy i użyj uchwytu na stempla, aby obrócić stempel do przodu iz powrotem. Raz powoli zmniejsz nacisk pchający w dół, aby sprężyny mogły przesunąć stempel w górę.
Użyj stylu, aby opróżnić stempel i wyrzucić rdzeń parafinowy. Następnie przesuń wieżyczkę, aby przełączyć się na stempel dawcy. Następnie umieść mostek bloku dawcy z blokiem dawcy nad uchwytem bloku biorcy.
Użyj odpowiedniego szkiełka do barwienia hematyną i eozyną, w którym zaznaczono obszar zainteresowania, aby zlokalizować tkankę, która ma zostać pobrana: Ręcznie przytrzymaj blok dawcy na miejscu lewą ręką i popchnij stempel prawą ręką. Nie naciskać na sztyft. Ogranicznik głębokości nie blokuje ruchu stempla w odpowiedniej pozycji dla bloku dawczego, dlatego ważne jest, aby przestać pchać, gdy drugi znak jest widoczny na sztyfcie.
Obróć powoli uchwyt stempla raz powoli. Zwolnij nacisk w dół, nadal trzymając blok dawcy na mostku bloku dawcy. Usuń mostek i blok dawczy.
Upewnij się, że stempel dawcy jest wyrównany z otworem, który został wykonany wcześniej. Wyreguluj pozycję stempla za pomocą ustalających. Jeśli dziurkacz dawcy i otwór w bloku biorcy nie są wyrównane, ostrożnie popchnij stempel w dół, aż jego końcówka dotrze do górnej części otworu w bloku biorcy.
Utrzymując tę pozycję, użyj trzpienia, aby opróżnić rdzeń tkanki do otworu. Powierzchnia rdzenia powinna być wyrównana z powierzchnią bloku. Przesuń wieżyczkę z powrotem do stempla odbiorcy.
Przejdź do następnej pozycji za pomocą pokręteł regulacyjnych XY i powtórz proces ponownie, wykrawając próbkę z bloku odbiorcy, aż matryca będzie kompletna. Aby wyjąć blok odbiorcy, poluzuj w uchwycie. Połóż blok stroną zadrukowaną do dołu na szkiełku podstawowym, umieść na odpowiednim ruszcie i piecz blok w temperaturze 42 stopni Celsjusza przez 40 minut.
Wyjmij szkiełko i blok z piekarnika i spłaszcz powierzchnię bloku, delikatnie głaszcząc szklane szkiełko. Umieść blok ze szkiełkiem na płycie chłodzącej na 10 minut. Zdejmij szklane szkiełko z bloku.
Blok jest teraz gotowy i gotowy do cięcia. Po przecięciu, barwieniu i digitalizacji mikromacierzy tkankowej za pomocą przeciwciała przeciwko białemu będącemu przedmiotem zainteresowania. Wyszukaj białko w atlasie białek ludzkich, przechodząc do strony internetowej www.proteinatlas.org.
Wprowadź nazwę białka będącego przedmiotem zainteresowania identyfikator zespołu, numer dostępu do uni prote lub nazwę HGNC, na przykład insulina. Kliknij interesujące Cię białko i przewiń w dół do podsumowania normalnych tkanek i narządów. Przegląd pokazuje ekspresję białek w trzustce.
Kliknij na zakładkę. Więcej danych tkankowych. Pojawi się widok normalnych tkanek posortowanych według narządów.
Kliknij na trzustkę, aby wyświetlić wyniki IHC dla trzech przeciwciał skierowanych przeciwko temu samemu białku. Kliknij na obraz, aby wyświetlić obraz trzustki w wysokiej rozdzielczości Na tym rysunku pokazano przykłady jakości mikromacierzy tkankowych, prosty i prawidłowo wyrównany układ z wystarczającą przestrzenią między rzędami i kolumnami a krawędzią parafiny. W tym przypadku niektóre rdzenie znajdują się zbyt blisko krawędzi, co prawdopodobnie powoduje problemy podczas sekcji.
Ta mikromatryca tkankowa była pieczona zbyt długo i zapadła się bez odpowiedniego szablonu. Tutaj prawidłowo przycięty odcinek z prostymi i wyrównanymi kolumnami jest poplamiony hematem, toinem i eozyną. Złe lub brudne ostrze może spowodować pękanie, jak pokazano tutaj, lub ściśnięte sekcje, takie jak ta.
Komórki centrum rozrodczego w węzłach chłonnych wykazują optymalnie dobrane przeciwciało, co skutkuje specyficznym barwieniem cytoplazmatycznym bez tła, jak pokazano tutaj. Barwienie ujemne lub słabe występuje wtedy, gdy stężenie przeciwciała pierwszorzędowego jest zbyt niskie lub jeśli białko docelowe nie jest obecne w tkankach barwionych immunologicznie. Ten wycinek tkanki jest nadmiernie wybarwiony zbyt wysokim stężeniem przeciwciała pierwotnego.
Ciemny kolor powoduje trudności w określeniu lokalizacji subkomórkowej z powodu rozlewania się, reaktywności krzyżowej i fałszywie dodatniej pozytywności. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak wytworzyć tablicę markerów tkankowych i jak jej używać podczas analizy ekspresji białek wykonujących immunohistochemię. Powinieneś również dobrze wiedzieć, jak przeglądać atlas białek ludzkich pod kątem ekspresji białek w ludzkich tkankach i komórkach.
Mikromacierze tkankowe stanowią wydajną metodę jednoczesnego gromadzenia informacji z wielu tkanek w celu analizy ekspresji białek. Technika ta polega na zgromadzeniu reprezentatywnych próbek tkanek w jednym bloku parafiny, który następnie jest cięty w celu przeprowadzenia immunohistochemii i obrazowania cyfrowego.
Technologia mikromacierzy tkankowych umożliwia wysokoprzepustową analizę ekspresji białek przy jednoczesnym oszczędzaniu rzadkiego materiału biologicznego, co wspiera szeroko zakrojone wysiłki w zakresie walidacji celów terapeutycznych w procesie odkrywania leków. Poprzez integrację danych z publicznymi zasobami, takimi jak Human Protein Atlas, dostarcza ona skalowalnych podstaw do ograniczania ryzyka mechanistycznego oraz identyfikacji biomarkerów translacyjnych w różnych obszarach chorobowych. Podejście to zwiększa pewność prognostyczną we wczesnej fazie odkrywania poprzez generowanie powtarzalnych, ilościowych profili ekspresji białek z ograniczonej liczby próbek pacjentów.
Produkcja matryc tkankowych (Tissue microarray) wpisuje się w kontinuum odkryć, od identyfikacji celu po walidację przedkliniczną, umożliwiając wydajne profilowanie ekspresji białek na szeroką skalę.