4 listopada 2012
Niniejszy artykuł opisuje podawanie myszom bakterii z markerem lux oraz późniejszą analizę in vivo z wykorzystaniem obrazowania bioluminescencyjnego IVIS.
W niniejszym filmie opisano zastosowanie obrazowania bioluminescencyjnego całego ciała do badania transportu bakterii w żywych myszach, ze szczególnym uwzględnieniem detekcji wzrostu bakterii w ksenoprzeszczepach nowotworowych. Bakterie stanowią atrakcyjną klasę wektorów w terapii nowotworów, posiadając naturalną zdolność do preferencyjnego wzrostu w obrębie guzów po podaniu dożylnym, rozwijając się albo na zewnątrz, albo wewnątrz komórek nowotworowych. Szczepy bakteryjne zmodyfikowane genetycznie w celu ekspresji kasety genów lux ułatwiają detekcję bakterii, a jednocześnie samych guzów. Wartość nieinwazyjnego, podłużnego monitorowania szczepów bakteryjnych in vivo jest powszechnie uznana, gdyż pozwala na ograniczenie liczby wykorzystywanych zwierząt i generuje dane bardziej istotne statystycznie niż analizy końcowe.
Niniejsza procedura obejmuje indukcję guzów podskórnych u myszy. Guzy są monitorowane w czasie, pozwalając im na rozwój. W opisanych tutaj eksperymentach bakterie są podawane myszom, które następnie poddawane są obrazowaniu bioluminescencyjnemu w określonych punktach czasowych.
Guzy podskórne indukuje się u myszy o kompetentnym układzie odpornościowym lub z ubytkiem grasicy. W zależności od wybranego ksenoprzeszczepu, bakterie typu Lux pożądanego gatunku, np. e coli, hoduje się w kulturach nocnych. Komórki bakteryjne przemywa się i resuspenduje do pożądanego stężenia w celu podania dożylnego.
10⁶ komórek bakteryjnych w objętości wtrysku 100 µL jest stosowane rutynowo. Myszy z guzami podskórnymi o objętości rutynowo 100 mm³ są przygotowywane do leczenia.
Przy użyciu igły strzykawki o rozmiarze 29 G zawiesinę bakteryjną wstrzykuje się do bocznej żyły ogonowej. Bakterie preferencyjnie replikują się w masie guza w czasie. Bakterie wewnątrzguźne kontynuują replikację przez kilka tygodni i są wykrywalne za pomocą obrazowania IVUS między trzecim a szóstym dniem.
Po podaniu preparatu, w celu obrazowania bioluminescencyjnego, żywe i znieczulone myszy umieszcza się w komorze IVIS w temperaturze 37°C. W razie potrzeby można obrazować kilka myszy jednocześnie. Zdjęcia fotograficzne oraz obrazy luminescencyjne są rejestrowane za pomocą chłodzonej kamery CCD przy wybranych ustawieniach oprogramowania.
W zależności od urządzenia obrazującego można przeprowadzić analizę dwu- lub trójwymiarową. Uzyskano silną i liniową zależność między liczbą bakterii wewnątrzguza a poziomem emitowanego światła, co umożliwia wiarygodną oszacowanie liczby bakterii in vivo. Bakterie wykazujące ekspresję LX mogą być również wykrywane z głębokich obszarów ciała.
Bakterie komensalne kolonizujące jelita, wykazujące ekspresję genu lux, są wizualizowane przez kilka tygodni. Podanie preparatu drogą kaważu dodatkowo demonstruje użyteczność obrazowania bioluminescencyjnego w analizie bakterii wykazujących ekspresję lux w zwierzętach badawczych.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy artykuł opisuje zastosowanie obrazowania bioluminescencyjnego całego ciała do badania przemieszczania się bakterii w żywych myszach. Głównym celem jest wykrywanie wzrostu bakterii w ksenoprzeszczepach nowotworowych, co podkreśla potencjał bakterii jako wektorów w terapii nowotworów.
Obrazowanie bioluminescencyjne bakterii umożliwia nieinwazyjne śledzenie w czasie rzeczywistym przemieszczania się bakterii in vivo, co wspiera przedkliniczną ocenę wektorów bakteryjnych stosowanych w terapii nowotworów. Podejście to ogranicza liczbę wykorzystywanych zwierząt, dostarczając jednocześnie podłużnych, ilościowych danych na temat celowania w guz oraz przeżywalności bakterii. Metoda ta zwiększa wiarygodność prognostyczną we wczesnej fazie opracowywania wektorów terapeutycznych poprzez wizualizację dynamiki przestrzennej i czasowej lokalizacji bakterii w obrębie guzów.
Metoda ta integruje się z procesem odkrywania leków – od wczesnego przesiewu wektorów po walidację przedkliniczną, umożliwiając iteracyjne cykle projektowania, budowy i testowania terapeutyków bakteryjnych.