Name: Echokardiografia płodu u myszy (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-02-15T12:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 4 s
Description: Poznaj echokardiografię płodu u myszy w celu badania struktury i funkcji serca in utero przy użyciu ultrasonografii wysokiej częstotliwości. Ta metoda pozwala na nieinwazyjną ocenę wad serca w czasie rzeczywistym.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

GHK jest wspierany przez NIH/NHLBI K08-HL098565 oraz Instytut Badań nad Układem Sercowo-Naczyniowym Uniwersytetu w Chicago. Wszystkie opisane metody eksperymentalne zostały zatwierdzone przez Instytucjonalny Komitet ds. Opieki i Korzystania ze Zwierząt na Uniwersytecie w Chicago.

<ol><li>Wessels, A., Sedmera, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Developmental+anatomy+of+the+heart%3A+a+tale+of+mice+and+man%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol.+Genomics%22%5BJournal%5D)">Developmental anatomy of the heart: a tale of mice and man.</a> Physiol. Genomics. 15, 165(2003).</li>
<li>Snider, P., Conway, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Probing+human+cardiovascular+congenital+disease+using+transgenic+mouse+models%5BTitle%5D)+AND+%22Prog.+Mol.+Biol.+Transl.+Sci%22%5BJournal%5D)">Probing human cardiovascular congenital disease using transgenic mouse models.</a> Prog. Mol. Biol. Transl. Sci. 100, 83(2011).</li>
<li>Clark, K. L., Yutzey, K. E., Benson, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcription+factors+and+congenital+heart+defects%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Transcription factors and congenital heart defects.</a> Annu. Rev. Physiol. 68, 97(2006).</li>
<li>Leatherbury, L., Yu, Q., Lo, C. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noninvasive+phenotypic+analysis+of+cardiovascular+structure+and+function+in+fetal+mice+using+ultrasound%5BTitle%5D)+AND+%22Birth+Defects+Res+C+Embryo+Today%22%5BJournal%5D)">Noninvasive phenotypic analysis of cardiovascular structure and function in fetal mice using ultrasound.</a> Birth Defects Res C Embryo Today. 69, 83(2003).</li>
<li>Spurney, C. F., Lo, C. W., Leatherbury, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fetal+mouse+imaging+using+echocardiography%3A+a+review+of+current+technology%5BTitle%5D)+AND+%22Echocardiography%22%5BJournal%5D)">Fetal mouse imaging using echocardiography: a review of current technology.</a> Echocardiography. 23, 891(2006).</li>
<li>Spurney, C. F., Leatherbury, L., Lo, C. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-frequency+ultrasound+database+profiling+growth%2C+development%2C+and+cardiovascular+function+in+C57BL%2F6J+mouse+fetuses%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Soc.+Echocardiogr%22%5BJournal%5D)">High-frequency ultrasound database profiling growth, development, and cardiovascular function in C57BL/6J mouse fetuses.</a> J. Am. Soc. Echocardiogr. 17, 893(2004).</li>
<li>Shen, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiovascular+phenotyping+of+fetal+mice+by+noninvasive+high-frequency+ultrasound+facilitates+recovery+of+ENU-induced+mutations+causing+congenital+cardiac+and+extracardiac+defects%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol.+Genomics%22%5BJournal%5D)">Cardiovascular phenotyping of fetal mice by noninvasive high-frequency ultrasound facilitates recovery of ENU-induced mutations causing congenital cardiac and extracardiac defects.</a> Physiol. Genomics. 24, 23(2005).</li>
<li>Yu, Q., Leatherbury, L., Tian, X., Lo, C. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiovascular+assessment+of+fetal+mice+by+in+utero+echocardiography%5BTitle%5D)+AND+%22Ultrasound+Med.+Biol%22%5BJournal%5D)">Cardiovascular assessment of fetal mice by in utero echocardiography.</a> Ultrasound Med. Biol. 34, 741(2008).</li>
<li>Linask, K. K., Huhta, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+Doppler+echocardiography+to+monitor+embryonic+mouse+heart+function%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Use of Doppler echocardiography to monitor embryonic mouse heart function.</a> Methods Mol. Biol. 135, 245(2000).</li>
<li>Hinton, R. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+heart+valve+structure+and+function%3A+echocardiographic+and+morphometric+analyses+from+the+fetus+through+the+aged+adult%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol+Heart+Circ.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Mouse heart valve structure and function: echocardiographic and morphometric analyses from the fetus through the aged adult.</a> Am. J. Physiol Heart Circ. Physiol. 294, H2480(2008).</li>
<li>Gui, Y. H., Linask, K. K., Khowsathit, P., Huhta, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Doppler+echocardiography+of+normal+and+abnormal+embryonic+mouse+heart%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatr.+Res%22%5BJournal%5D)">Doppler echocardiography of normal and abnormal embryonic mouse heart.</a> Pediatr. Res. 40, 633(1996).</li>
<li>Purssell, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noninvasive+high-resolution+ultrasound+reveals+structural+and+functional+deficits+in+dimethadione-exposed+fetal+rat+hearts+in+utero%5BTitle%5D)+AND+%22Birth+Defects+Res.+B+Dev.+Reprod.+Toxicol%22%5BJournal%5D)">Noninvasive high-resolution ultrasound reveals structural and functional deficits in dimethadione-exposed fetal rat hearts in utero.</a> Birth Defects Res. B Dev. Reprod. Toxicol. , (2011).</li>
<li>Le, V. P., Kovacs, A., Wagenseil, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measuring+Left+Ventricular+Pressure+in+Late+Embryonic+and+Neonatal+Mice%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Measuring Left Ventricular Pressure in Late Embryonic and Neonatal Mice.</a> J. Vis. Exp. (60), e3756(2012).</li>
<li>Ji, R. P., Phoon, C. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noninvasive+localization+of+nuclear+factor+of+activated+T+cells+c1-%2F-+mouse+embryos+by+ultrasound+biomicroscopy-Doppler+allows+genotype-phenotype+correlation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Soc.+Echocardiogr%22%5BJournal%5D)">Noninvasive localization of nuclear factor of activated T cells c1-/- mouse embryos by ultrasound biomicroscopy-Doppler allows genotype-phenotype correlation.</a> J. Am. Soc. Echocardiogr. 18, 1415(2005).</li>
<li>Kim, G. H., Samant, S. A., Earley, J. U., Svensson, E. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Translational+control+of+FOG-2+expression+in+cardiomyocytes+by+microRNA-130a%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Translational control of FOG-2 expression in cardiomyocytes by microRNA-130a.</a> PLoS One. 4, e6161(2009).</li>
<li>Momoi, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modest+maternal+caffeine+exposure+affects+developing+embryonic+cardiovascular+function+and+growth%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Heart+Circ.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Modest maternal caffeine exposure affects developing embryonic cardiovascular function and growth.</a> Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 294, H2248(2008).</li>
<li>Tobita, K., Liu, X., Lo, C. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+modalities+to+assess+structural+birth+defects+in+mutant+mouse+models%5BTitle%5D)+AND+%22Birth+Defects+Res.+C+Embryo+Today%22%5BJournal%5D)">Imaging modalities to assess structural birth defects in mutant mouse models.</a> Birth Defects Res. C Embryo Today. 90, 176(2010).</li>
</ol>

Brak zadeklarowanych konfliktów interesów.

Zdolność do wykonywania pomiarów seryjnych oraz wykrywania płodów zmutowanych z wadami serca podkreśla użyteczność echokardiografii w badaniu prawidłowego i nieprawidłowego rozwoju układu sercowo-naczyniowego. Analiza struktury i funkcji serca in vivo stała się integralną częścią opisu genetycznych i niegenetycznych modyfikacji prawidłowego rozwoju płodu. Dostępność Dopplera sterowanego obrazem 2D umożliwia monitorowanie częstotliwości akcji serca i wzorców przepływu krwi przy jednoczesnym uzyskiwaniu obrazów w ...

<table><tbody><tr><td>System obrazowania Vevo 770 (Toronto, Kanada)</td><td>VisualSonics</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Przetwornik MHz</td><td></td><td>RMV707B15-45</td><td></td></tr><tr><td>Waporyzator izofluranu</td><td>Tec 3</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Izofluran</td><td></td><td></td><td>2-chloro-2-(difluoromethoxy)-1,1,1-trifluoro-ethane</td></tr></tbody></table>

echokardiografia płodowa myszy

Murine Fetal Echocardiography

Myszy transgeniczne wykazujące nieprawidłowości w rozwoju i funkcji serca stanowią potężne narzędzie do zrozumienia molekularnych mechanizmów leżących zarówno u podstaw prawidłowej funkcji układu sercowo-naczyniowego, jak i patofizjologicznych podstaw ludzkich chorób układu krążenia. Śmierć płodu oraz śmierć w okresie okołoporodowym są częstymi zjawiskami podczas badania zmian genetycznych wpływających na rozwój serca 1-3. Aby zbadać rolę zmian genetycznych lub farmakologicznych we wczesnym rozwoju funkcji serca, obrazowanie ultradźwiękowe żywego płodu stało się ważnym narzędziem wczesnego rozpoznawania nieprawidłowości i prowadzenia obserwacji podłużnych. Nieinwazyjne obrazowanie ultradźwiękowe jest idealną metodą wykrywania i badania wad wrodzonych oraz ich wpływu na funkcję serca przed śmiercią 4. Pozwala ono na wczesne rozpoznanie nieprawidłowości u żywego płodu, a postęp choroby można śledzić wewnątrzmacicznie w ramach badań podłużnych 5,6. Do niedawna obrazowanie serc płodów myszy często wiązało się z metodami inwazyjnymi. Płód musiał zostać uśmiercony w celu wykonania mikroskopii rezonansu magnetycznego i mikroskopii elektronowej lub wyjęty chirurgicznie do mikroskopii prześwietleniowej. Wykazano, że zastosowanie sond wysokiej częstotliwości z konwencjonalnym obrazowaniem 2-D i dopplerowskim w trybie impulsowym pozwala na pomiary skurczu serca i częstotliwości akcji serca podczas rozwoju embrionalnego, a obecnie dostępne są bazy danych dotyczących prawidłowych zmian rozwojowych 6-10. Obrazowanie w trybie M dostarcza dodatkowo ważnych danych funkcjonalnych, choć odpowiednie płaszczyzny obrazowania są często trudne do uzyskania. Wysokoczęstotliwościowe obrazowanie ultradźwiękowe płodu poprawiło rozdzielczość 2-D i może dostarczyć doskonałych informacji o wczesnym rozwoju struktur serca 11.

Śmierć płodowa i okołoporodowa jest częstym zjawiskiem podczas badania zmian genetycznych wpływających na rozwój serca. Obrazowanie za pomocą ultradźwięków o wysokiej częstotliwości poprawiło rozdzielczość 2-D i może dostarczyć doskonałych informacji na temat wczesnego rozwoju serca, stanowiąc idealną metodę wykrywania wpływu na strukturę i funkcję serca przed śmiercią.

Echokardiografia płodowa myszy

Myszy transgeniczne wykazujące nieprawidłowości w rozwoju i funkcji serca stanowią potężne narzędzie do zrozumienia mechanizmów molekularnych...

Ogólnym celem następującego eksperymentu jest badanie struktury i funkcji serca w łonie matki przy użyciu wysokoczęstotliwościowej ultrasonografii. Osiąga się to poprzez odpowiednie znieczulenie i przygotowanie samicy. W drugim kroku należy zidentyfikować płody w rogach macicy.Następnie należy pozyskać dane w trybie B, trybie M oraz dane z detektora impulsu (pulse stoper). W celu zidentyfikowania i ilościowego określenia nieprawidłowości strukturalnych lub funkcjonalnych, uzyskuje się wyniki obrazujące in vivo strukturę i funkcję serca płodów myszy z alterations genetycznymi. Główną zaletą tej techniki w porównaniu z istniejącymi metodami, takimi jak histopatologia, jest to, że echokardiografia płodowa dostarcza wglądu w funkcję serca w czasie rzeczywistym i pozwala zidentyfikować wady strukturalne serca in vivo.Przygotuj mysz do obrazowania, wprowadzając ją najpierw w stan anestezji za pomocą 2–3% isofluranu w komorze indukcyjnej. Umieść zanestetyzowaną mysz w pozycji grzbietowej na podgrzewaczu z wbudowanymi elektrodami EKG w celu utrzymania temperatury ciała, a następnie zabezpiecz łapy taśmą. Wyjmij mysz z komory i za pomocą trymera zgól sierść od poziomu środka klatki piersiowej aż po kończyny dolne.Użyj kremu depilacyjnego, aby usunąć pozostałe włosy z ciała. Następnie umieść pysk w stożku nosowym podłączonym do systemu anestezji, aby utrzymać stały poziom sedacji przez cały czas trwania procedury. Dostosuj poziom anestezji tak, aby utrzymać docelową częstotliwość akcji serca na poziomie 450 ± 50 uderzeń na minutę.Następnie nałóż żel do elektrod na cztery łapy i przymocuj je taśmą do elektrod EKG. Następnie nasmaruj i delikatnie wprowadź sondę rektalną do myszy, aby monitorować temperaturę ciała za pomocą mata grzewczego. Utrzymuj temperaturę ciała w granicach 37 °C, plus lub minus 0,5 °C.Kontrolowana anestezja i stała temperatura ciała są niezbędne dla stabilności hemodynamicznej zarówno matki, jak i płodów. Obrazowanie należy rozpocząć, wykorzystując pęcherz matki jako punkt orientacyjny, a następnie wyregulować manipulatory Z, a potem manipulatory XY. Płody w lewym rogu macicy są oznaczone jako L jeden, dwa i trzy.Natomiast te w prawym rogu macicy są oznaczone jako R jeden, dwa i trzy. Zapisanie położenia zarodków jest pomocne podczas ich odzyskiwania. Po obrazowaniu należy przeskanować zarodki znajdujące się głęboko w jamie brzusznej, aby udokumentować ich obecność, ale wykluczyć je z analizy danych ze względu na niską rozdzielczość.Modyfikuj płaszczyzny skanowania, zmieniając orientację myszy względem płaszczyzny skanowania. Uzyskaj obrazy w dwóch płaszczyznach ortogonalnych dla każdego zarodka. Staraj się uzyskać widoki przybliżone do płaszczyzn poprzecznej, czołowej i strzałkowej, choć niekiedy widoki są ograniczone do płaszczyzn ukośnych ze względu na położenie macicy w jamie brzusznej.Wykorzystaj obrazy w trybie B do zidentyfikowania podstawowych struktur serca, takich jak przedsionki, przegroda międzykomorowa, komory oraz drogi odpływu z komory lewej i prawej. Następnie uzyskaj obrazy w trybie M z widoku osi krótkiej i wykorzystaj je do pomiaru grubości ścian komór oraz wymiarów jam serca. W kolejnym kroku zwizualizuj komorę lewą i prawą.Echogeniczna krew zarodkowa tworzy widoczne strumienie przepływu, co ułatwia precyzyjne umieszczenie objętości próbkowania Dopplera w otworze zastawki mitralnej. Wyznacz prędkość przepływu krwi do lewej komory przez zastawki mitralne w widoku długiej osi LV w przekroju czterojamowym zstawnym. Zmierz czas wyrzutu skurczowego, korzystając z pomiarów odpływu z aorty.Oblicz częstość akcji serca na podstawie pomiarów od jednego cyklu przepływu do następnego cyklu przepływu. Wykorzystaj obrazy w trybie B do zidentyfikowania typowych wrodzonych wad strukturalnych, takich jak ubytki w przegrodzie międzykomorowej. Zidentyfikuj przepływ przez przegrodę międzykomorową, stosując próbkę objętościową Dopplera w obrębie komór.Przedstawiono tutaj reprezentatywne oceny funkcji prawej komory. Poniżej znajdują się reprezentatywne obrazy 2D echokardiografii w widoku osi podłużnej serca w 14,5 dniu embrionalnym oraz widok czterojamowy. Przedstawiono zapis w trybie M z liniami wyraźnie wskazującymi wewnętrzną średnicę lewej i prawej komory w rozkurczu, oznaczoną małą literą D, oraz w skurczu, oznaczoną małą literą S. Widoczna jest tutaj również przegroda międzykomorowa (IVS).Przedstawiono reprezentatywne obrazy dwuwymiarowego echokardiograficznego badania serca w 14,5 dobie embrionalnej w widoku czterojamowym koniuszkowym. Lewy przedsionek i jama lewej komory są obrysowane na niebiesko. Pokazano tutaj reprezentacyjne rozmieszczenie bramki próbkowania Dopplerowskiego dla zapisu przepływu przez zastawkę mitralną; przedstawione są wzorce dopplerowskie przepływu mitralnego, z których można zmierzyć prędkość wczesnorozkurczową oznaczoną jako E oraz prędkość skurczu przedsionka oznaczoną jako a.Przedstawiony tutaj reprezentatywny kształt fali dopplerowskiej w aorcie. Strumień dopplerowski w aorcie może być wykorzystany do pomiaru czasu wyrzutu. Częstość akcji serca można również obliczyć na podstawie pomiaru czasu od jednego cyklu przepływu do następnego.Tutaj widzimy reprezentacyjną detekcję ubytku w przegrodzie międzykomorowej lub trybu VSDB; przedstawione są obrazy serca w 14,5 dniu embrionalnym w przekroju czterojamowym w widoku koniuszkowym. Jamy prawej i lewej komory są tutaj obrysowane odpowiednio na niebiesko i czerwono. Zwróćmy uwagę na obecność przegrody międzykomorowej; przedstawiony tutaj przekrój poprzeczny obrazowanego serca został zabarwiony hematoksyliną i eozyną.Jest to obrazowanie w trybie B serca zarodkowego w 14,5 dniu rozwoju z przetrwałością otworu międzykomorowego (VSD) w części przedniej, wskazaną białą strzałką. Tutaj widzimy jamy prawej i lewej komory, obrysowane odpowiednio na niebiesko i czerwono. Przedstawiony tutaj przekrój poprzeczny obrazowanego serca został zabarwiony hematyliną i eozyną.Oto obraz w trybie B serca w 14,5 dniu embrionalnym z defektem przegrody komór przej przejawnionym przez strzałkę, z nałożoną próbką objętościową Dopplera falowego w celu rejestracji przepływu przez przegrodę międzykomorową. Oto reprezentacyjny zapis dopplerowski z poprzedniej ryciny, wykazujący przepływ z komory lewej do prawej po jego powstaniu. Technika ta utorowała drogę badaczom w dziedzinie rozwoju serca do analizy funkcji serca przed etapem rozwoju narządów.

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Echokardiografia płodów mysich

Echokardiografia przezklatkowa stanowi nieinwazyjną metodę oceny funkcji serca u myszy. Połączenie obrazowania ultradźwiękowego i dopplerowskiego pozwala na wykonanie pomiarów wymiarów serca oraz przepływu krwi wewnątrzsercowego, co łącznie umożliwia ocenę funkcji skurczowej i rozkurczowej serca.

Echokardiografia przezklatkowa u myszy

W niniejszym filmie zaprezentowano zastosowanie zamontowanej na szynie głowicy ultradźwiękowej o wysokiej częstotliwości do wykonywania echokardiografii u znieczulonej myszy. Metody obejmują zarówno konwencjonalne pomiary funkcji serca w trybie dwuwymiarowym i M-mode, jak i nowsze, bardziej zaawansowane narzędzia, takie jak kolorowy Doppler, analiza odkształceń (strain) oraz ogólne i ukierunkowane obrazowanie kontrastowe.

Echokardiografia i obrazowanie ultrasonograficzne u myszy

Ten film opisuje protokół wykonywania echokardiografii na myszy laboratoryjnej.

Echokardiografia myszy: nieinwazyjna technika oceny morfologii serca

Opisujemy badanie funkcji serca płodu za pomocą współczesnej funkcjonalnej echokardiografii płodu i ultrasonografii dopplerowskiej płodu za pomocą mikroultrasonografii VisualSonics VEVO 2100 w chirurgicznie indukowanym modelu wewnątrzmacicznego ograniczenia wzrostu płodu u królika.

Echokardiografia płodu i USG Dopplera falami pulsacyjnymi w króliczym modelu wewnątrzmacicznego ograniczenia wzrostu

Ultra-wysokiej częstotliwości ultrasonografia to potężne narzędzie do obrazowania na żywo do badania nieprawidłowości w pracy serca u małych zwierząt. Jego nieinwazyjność pozwala na utrzymanie stanu fizjologicznego zarodków. W tym artykule pokazujemy zastosowanie ultrasonografii w trybie M do pomiaru częstości akcji serca zarodków przy E18,5 w macicy.

W macicy Pomiar tętna u myszy za pomocą nieinwazyjnej echokardiografii w trybie m

Poniższy protokół opisuje metodologię pozyskiwania i analizy obrazów echokardiograficznych używanych do uzyskania objętości lewego przedsionka (LAV), średnicy aorty (Ao) i średnicy tętnicy płucnej (PA) u myszy. Technika ta jest nieinwazyjnym, nieterminalnym zabiegiem, który umożliwia ocenę funkcji krążeniowo-oddechowej.

Echokardiografia mysia lewego przedsionka, aorty i tętnicy płucnej

Badanie echokardiograficzne jest często stosowane u myszy. W tym celu opracowano drogie urządzenia ultrasonograficzne o wysokiej rozdzielczości. Protokół ten opisuje niedrogą procedurę echokardiograficzną połączoną z histologicznymi analizami morfometrycznymi w celu określenia morfologii serca.

Echokardiograficzne i histologiczne badanie morfologii serca u myszy

Obrazowanie ultrasonograficzne o wysokiej częstotliwości u płodu myszy poprawiło rozdzielczość obrazowania i może zapewnić precyzyjną, nieinwazyjną charakterystykę rozwoju serca i wad strukturalnych. Opisany w niniejszym dokumencie protokół jest przeznaczony do wykonywania echokardiografii płodu u myszy w czasie rzeczywistym in vivo.

Obrazowanie układu sercowo-naczyniowego u płodu myszy za pomocą systemu ultrasonograficznego o wysokiej częstotliwości (30/45 MHZ)

Obecny protokół opisuje echokardiograficzną ocenę morfologii, funkcji i przepływu krwi w naczyniach wieńcowych lewej komory serca u 7-dniowych noworodków myszy.

Echokardiograficzna charakterystyka struktury, funkcji i przepływu wieńcowego lewej komory u nowonarodzonych myszy

Ten artykuł szczegółowo opisuje metody diagnostyki mysiej wrodzonej wady serca (CHD) za pomocą echokardiografii płodu, sekcji zwłok i episkopowego przechwytywania obrazu fluorescencyjnego (EFIC) za pomocą episkopowej mikroskopii konfokalnej (ECM), a następnie trójwymiarowej (3D) rekonstrukcji.

Linia do charakteryzowania strukturalnych wad serca u płodu myszy

Poznaj echokardiografię płodu u myszy w celu badania struktury i funkcji serca in utero przy użyciu ultrasonografii wysokiej częstotliwości. Ta metoda pozwala na nieinwazyjną ocenę wad serca w czasie rzeczywistym.

Echokardiografia płodowa myszy

Przeglądaj więcej filmów