Name: Transfekcja białek płuc myszy (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-05-15T12:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 21 s
Description: Poznaj protokół transfekcji białek do płuc myszy przy użyciu mikrospreja i reagenta lipidowego. Ta metoda zwiększa ekspresję białka przy minimalizacji efektów poza docelowych w badaniach pulmonalnych.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Ta praca była wspierana przez National Institutes of Health (7R01HL098528-03) oraz FAMRI's Clinical Innovator Award.

1. Przygotowanie odczynnika do transfekcji białek
<ol>
	<li>Rozpuścić odczynnik Pro-Ject przez dodanie 250 μl metanolu lub chloroformu do probówki zawierającej suchą folię.</li>
	<li>Wiruj przez 10-20 sekund z maksymalną prędkością.</li>
	<li>Odpipetować 20 μl odczynnika Pro-Ject do oddzielnych probówek do mikrowirówek.</li>
	<li>Odparować rozpuszczalnik, umieszczając probówki do mikrowirówek zawierające odczynnik Pro-Ject pod okapem z przepływem laminarnym na co najmniej 6 godzin w temperaturze pokojowej. Musi być całkowicie suchy. Alternatywnie, wysuszyć odczynnik Pro-Ject za pomocą eksykatora próżniowego.</li>
	<li>Przechowywać probówki w temperaturze -20 °C. W tej temperaturze są dobre przez rok.</li>
</ol>
2. Dodawanie białka do odczynnika Pro-Ject
<ol>
	<li>Odpipetować 50 μl PBS, zawierającego 2,0 μg białka będącego przedmiotem zainteresowania, do probówki zawierającej 20 μl wysuszonego odczynnika do transfekcji Pro-Ject.</li>
	<li>Po dodaniu białka wymieszaj roztwór, wirując z małą prędkością przez 3-5 sekund, a następnie inkubując przez 30 minut w temperaturze pokojowej.</li>
</ol>
3. Dotchawicze podawanie białka
<ol>
	<li>Znieczulenie myszy przez dootrzewnowe wstrzyknięcie ketaminy/ksylazyny (100 mg/kg i 10 mg/kg).</li>
	<li>Po osiągnięciu sedacji myszy są zawieszane na górnych siekaczach za pomocą specjalnie zaprojektowanej platformy (ryc. 1).</li>
	<li>Za pomocą kleszczy i spinacza do papieru jako laryngoskopu otwiera się ustno-gardło, aby można było wprowadzić cewnik (ryc. 2). Struny głosowe są wizualizowane poprzez umieszczenie źródła światła na tchawicy myszy.</li>
	<li>Mieszaninę odczynnika białko/ProJect (50 μl) wstrzykuje się przez tchawicę za pomocą rozpylacza Penn Century Microspryskacz.</li>
</ol>

<ol><li>Glasser, S. W., Korfhagen, T. R., Wert, S. E., Whitsett, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transgenic+models+for+study+of+pulmonary+development+and+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Transgenic models for study of pulmonary development and disease.</a> Am. J. Physiol. 267, 489-497 (1994).</li>
<li>D'Armiento, J., Dalal, S. S., Okada, Y., Berg, R. A., Chada, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Collagenase+expression+in+the+lungs+of+transgenic+mice+causes+pulmonary+emphysema%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Collagenase expression in the lungs of transgenic mice causes pulmonary emphysema.</a> Cell. 71, 955-961 (1992).</li>
<li>Foronjy, R. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Superoxide+dismutase+expression+attenuates+cigarette+smoke-+or+elastase-generated+emphysema+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Respir+Crit.+Care+Med%22%5BJournal%5D)">Superoxide dismutase expression attenuates cigarette smoke- or elastase-generated emphysema in mice.</a> Am. J. Respir Crit. Care Med. 173, 623-631 (2006).</li>
<li>Foronjy, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+divergent+roles+of+secreted+frizzled+related+protein-1+%28SFRP1%29+in+lung+morphogenesis+and+emphysema%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Pathol%22%5BJournal%5D)">The divergent roles of secreted frizzled related protein-1 (SFRP1) in lung morphogenesis and emphysema.</a> Am. J. Pathol. 177, 598-607 (2010).</li>
<li>Costa, R. H., Kalinichenko, V. V., Lim, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcription+factors+in+mouse+lung+development+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Lung+Cell+Mol.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Transcription factors in mouse lung development and function.</a> Am. J. Physiol. Lung Cell Mol. Physiol. 280, 823-838 (2001).</li>
<li>Perl, A. K., Tichelaar, J. W., Whitsett, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Conditional+gene+expression+in+the+respiratory+epithelium+of+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Transgenic+Research%22%5BJournal%5D)">Conditional gene expression in the respiratory epithelium of the mouse.</a> Transgenic Research. 11, 21-29 (2002).</li>
<li>Morimoto, M., Kopan, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((rtTA+toxicity+limits+the+usefulness+of+the+SP-C-rtTA+transgenic+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">rtTA toxicity limits the usefulness of the SP-C-rtTA transgenic mouse.</a> Dev. Biol. 325, 171-178 (2009).</li>
<li>Waehler, R., Russell, S. J., Curiel, D. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Engineering+targeted+viral+vectors+for+gene+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+reviews.+Genetics%22%5BJournal%5D)">Engineering targeted viral vectors for gene therapy.</a> Nature reviews. Genetics. 8, 573-587 (2007).</li>
<li>Crystal, R. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Administration+of+an+adenovirus+containing+the+human+CFTR+cDNA+to+the+respiratory+tract+of+individuals+with+cystic+fibrosis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Genet%22%5BJournal%5D)">Administration of an adenovirus containing the human CFTR cDNA to the respiratory tract of individuals with cystic fibrosis.</a> Nat. Genet. 8, 42-51 (1994).</li>
<li>Merkel, O. M., Zheng, M., Debus, H., Kissel, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pulmonary+gene+delivery+using+polymeric+nonviral+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Bioconjugate+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Pulmonary gene delivery using polymeric nonviral vectors.</a> Bioconjugate Chemistry. 23, 3-20 (2012).</li>
<li>Yang, Y., Li, Q., Ertl, H. C., Wilson, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+and+humoral+immune+responses+to+viral+antigens+create+barriers+to+lung-directed+gene+therapy+with+recombinant+adenoviruses%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol%22%5BJournal%5D)">Cellular and humoral immune responses to viral antigens create barriers to lung-directed gene therapy with recombinant adenoviruses.</a> J. Virol. 69, 2004-2015 (1995).</li>
<li>Liu, Q., Muruve, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+basis+of+the+inflammatory+response+to+adenovirus+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">Molecular basis of the inflammatory response to adenovirus vectors.</a> Gene Ther. 10, 935-940 (2003).</li>
<li>Pfeifer, C., Aneja, M. K., Hasenpusch, G., Rudolph, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adeno-associated+virus+serotype+9-mediated+pulmonary+transgene+expression%3A+effect+of+mouse+strain%2C+animal+gender+and+lung+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">Adeno-associated virus serotype 9-mediated pulmonary transgene expression: effect of mouse strain, animal gender and lung inflammation.</a> Gene Ther. 18, 1034-1042 (2011).</li>
<li>Wallace, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protein+phosphatase+2A+regulates+innate+immune+and+proteolytic+responses+to+cigarette+smoke+exposure+in+the+lung%5BTitle%5D)+AND+%22Toxicol.+Sci%22%5BJournal%5D)">Protein phosphatase 2A regulates innate immune and proteolytic responses to cigarette smoke exposure in the lung.</a> Toxicol. Sci. 126, 589-599 (2012).</li>
<li>Wallace, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protein+Phosphatase+2a+%28Pp2a%29+Regulates+Innate+Immune+and+Proteolytic+Responses+to+Cigarette+Smoke+Exposure+in+the+Lung%5BTitle%5D)+AND+%22Toxicol.+Sci%22%5BJournal%5D)">Protein Phosphatase 2a (Pp2a) Regulates Innate Immune and Proteolytic Responses to Cigarette Smoke Exposure in the Lung.</a> Toxicol. Sci. , (2012).</li>
<li>Brown, R. H., Walters, D. M., Greenberg, R. S., Mitzner, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+method+of+endotracheal+intubation+and+pulmonary+functional+assessment+for+repeated+studies+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Appl.+Physiol%22%5BJournal%5D)">A method of endotracheal intubation and pulmonary functional assessment for repeated studies in mice.</a> J. Appl. Physiol. 87, 2362-2365 (1999).</li>
</ol>

Autorzy nie mają do ujawnienia żadnych konfliktów interesów.

Przewagą tej techniki nad innymi metodami jest to, że powoduje ona wzrost poziomu białka i aktywności w samej tkance płucnej. Co więcej, przenika do najbardziej dystalnych obszarów płuc, a nie pozostaje tylko w drogach oddechowych. Zmierzyliśmy zwiększoną aktywność białkową naszego zastrzyku nawet po płukaniu dróg oddechowych solą fizjologiczną15. Analizy aktywności tkanek wskazują, że białko wnika do komórek, a nie tylko pozostaje w przestrzeniach powietrznych myszy. Zostało to dodatkowo potwierdzone przez i...

<table><tbody>Mikroopryskiwacz <tr><td>Pro-Ject</td><td>Pierce Bio</td><td>89850</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Penn Century</td><td>FMJ-250</td><td></td></tr><tr><td>Beta-galaktozydaza</td><td>Pierce Bio</td><td>89850</td><td></td></tr><tr><td>Przeciwciało beta-galaktozydazy</td><td>Santa Cruz Bio</td><td>SC-19119</td><td></td></tr><tr><td>Albumina surowicy myszy</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A3139</td><td></td></tr><tr><td>Ketamina/ksylazyna</td><td>Sigma Aldrich</td><td>Zobacz materiał K113</td><td></td></tr></tbody></table>

transfekcja białek płuc myszy

Protein Transfection of Mouse Lung

Zwiększenie ekspresji białka pozwala naukowcom lepiej zrozumieć funkcjonalną rolę tego białka w regulacji kluczowych procesów biologicznych1. W płucach udało się to osiągnąć zazwyczaj dzięki podejściach genetycznych, które wykorzystują transgeniczne myszy2,3 lub wektory wirusowe lub niewirusowe, które podnoszą poziom białka poprzez zwiększoną ekspresję genów4. Myszy transgeniczne są kosztowne i czasochłonne w generacji, a losowe wprowadzenie transgenu lub przewlekła ekspresja genu może zmienić normalny rozwój płuc, a tym samym ograniczyć użyteczność modelu5. Podczas gdy transgeniki warunkowe zapobiegają problemom związanym z przewlekłą ekspresją genów6, myszy z odwróconym transaktywatorem sterowanym tetracykliną (rtTA), które są używane do generowania ekspresji warunkowej, rozwijają spontaniczne powiększenie przestrzeni powietrznej7. Podobnie jak w przypadku transgeników, stosowanie wektorów wirusowych i niewirusowych jest kosztowne8 i może wywołać zależne od dawki reakcje zapalne, które zakłócają wyniki9 i utrudniają ekspresję10. Co więcej, skuteczność powtarzanych dawek jest ograniczona przez wzmocnioną odpowiedź immunologiczną na wektor11,12. Naukowcy opracowują wektory wirusowe związane z adenowirusem (AAV), które wywołują mniej stanów zapalnych i mają dłuższą ekspresję w płucach13.
Korzystając z β-galaktozydazy, prezentujemy metodę szybkiego i skutecznego zwiększania ekspresji białka w płucach za pomocą techniki bezpośredniej transfekcji białek. Protokół ten polega na zmieszaniu ustalonej ilości oczyszczonego białka z 20 μl odczynnika do transfekcji na bazie lipidów (Pro-Ject, Pierce Bio), aby umożliwić przenikanie do samej tkanki płucnej. Liposomalna mieszanina białek jest następnie wstrzykiwana do płuc myszy przez tchawicę za pomocą mikrorozpylacza (Penn Century, Philadelphia, PA). Mikrorozpylacz wytwarza drobny pióropusz ciekłego aerozolu w płucach. Korzystając z tej techniki, wykazaliśmy równomierne osadzanie wstrzykniętego białka w drogach oddechowych i pęcherzykach płucnychmyszy 14. Technika transfekcji lipidów pozwala na użycie niewielkiej ilości białka w celu uzyskania efektu. Ogranicza to reakcję zapalną, która w przeciwnym razie zostałaby wywołana przez podawanie dużej ilości białka. Rzeczywiście, korzystając z tej techniki, opublikowaliśmy, że byliśmy w stanie znacznie zwiększyć aktywność PP2A w płucach bez wpływu na komórkowość płukania płuc15. Komórkowość płukania płuc pobrana 24 godziny po prowokacji była porównywalna z grupą kontrolną (27±4 kontrola vs. 31±5 albuminy transfekowanej; N=6 na grupę). Co więcej, zwiększa poziom białka bez wywoływania zmian rozwojowych płuc lub zmian architektonicznych, które mogą wystąpić w modelach transgenicznych. Jednak konieczność wielokrotnego podawania może sprawić, że technika ta będzie mniej korzystna dla badań oceniających skutki długoterminowego wzrostu ekspresji białek. Byłoby to szczególnie prawdziwe w przypadku białek o krótkim okresie półtrwania.

Aby zademonstrować skuteczność naszej techniki, użyto mikrospryskiwacza (Penn Century) do wstrzyknięcia do tchawki myszy 2 μg albuminy mysiej (Sigma) rozpuszczonej w 50 μl PBS zawierającego 20 μl odczynnika do transfekcji Pro-Ject. Myszy traktowane albuminą porównano z myszami traktowanymi w identyczny sposób 2 μg białka beta-galaktozydazy (Pierce Bio). Po dwudziestu czterech godzinach myszy poddano eutanazji, a płuca przetworzono do analizy histologicznej. Immunohistochemię beta-galaktozydazy przeprowadzono na utrwalony...

Transgeniczne myszy lub wektory wirusowe zostały użyte do zwiększenia ekspresji białka w płucach. Jednak techniki te są czasochłonne, trudne technicznie i mają niezamierzone skutki, które mogą zakłócić wyniki. Nasz protokół transfekcji białek wykorzystuje odczynnik do transfekcji na bazie lipidów i ultradrobny mikrorozpylacz, aby równomiernie dostarczyć aktywne białko do komórek płuc.

Transfekcja białek płuc myszy

Increasing protein expression enables researchers to  better understand the functional role of that protein in regulating key  biological processes1. In ...

Ogólnym celem niniejszej procedury jest transfekcja białka do płuca myszy. Osiąga się to poprzez uprzednie zawieszenie badanego białka w odczynniku do transfekcji. Następnie mysz zostaje znieczulona i umieszczona na specjalnej platformie do iniekcji.Źródło światła jest wykorzystywane w celu ułatwienia wprowadzenia mikrorozpylacza do tchawicy. Na koniec wstrzykuje się 50 µL płynu zawierającego badane białko. Ostatecznie ta technika transfekcji białek jest stosowana w celu wykazania zwiększonego poziomu białek w płucach myszy.Choć metoda ta została opracowana z myślą o zastosowaniu w przewlekłej obturacyjnej chorobie płuc, może być ona również wykorzystana w innych stanach chorobowych, takich jak astma lub włóknienie płuc. Kluczowe jest wizualne zaprezentowanie tej metody. Ponieważ etapy wstrzykiwania dotchawiczego są trudne do opanowania, wymagają one prawidłowego ułożenia dróg oddechowych myszy oraz prześwietlenia strun głosowych.W pierwszej kolejności należy przygotować odczynnik do transfekcji białek. Do probówki zawierającej suchy produkt dodaj 250 µL metanolu lub chloroformu. Następnie mieszaj probówkę w wirówce typu vortex przez 10 do 20 sekund z maksymalną prędkością.Po rozpuszczeniu odpipetować 20 µL odczynnika projektowego do oddzielnych probówek do mikrocentryfugi. Umieścić probówki w komorze z laminarnym przepływem powietrza w celu odparowania rozpuszczalnika przez minimum sześć godzin. W temperaturze pokojowej probówki muszą być całkowicie suche.Przechowywać probówki w temperaturze -20 °C, gdzie pozostaną stabilne przez jeden rok. W dniu transfekcji pobrać alikwot odczynnika do transfekcji i dodać 50 µL PBS zawierającego 2 µg białka zainteresowania. Wymieszać roztwór za pomocą wortexa z niską prędkością przez trzy do pięciu sekund, a następnie inkubować w temperaturze pokojowej przez 30 minut przed użyciem.Po przygotowaniu białka, znieczul mysz w celu przeprowadzenia podania wewnątrztchawiczego. Do iniekcji wewnątrztchawiczej stosuje się specjalnie zaprojektowaną platformę. Posiada ona rampę ustawioną pod kątem 45 stopni względem podstawy oraz metalowy drut zwisający z dwóch haków u góry.Po znieczuleniu drut ten służy do zawieszenia myszy za górnymi siekaczami. Po unieruchomieniu myszy należy umieścić źródło światła przy tchawicy, aby ułatwić wizualizację strun głosowych za pomocą pęsety i spinacza do papieru. Używając ich jako laryngoskopu, należy otworzyć jamę ustno-gardłową i wprowadzić cewnik.Podczas korzystania z rozpylacza Micros ważne jest zastosowanie odpowiedniej siły podczas naciskania tłoka. W przeciwnym razie, zamiast drobnej mgiełki, powstaną krople, które mogą doprowadzić do niedrożności dróg oddechowych myszy. Po przygotowaniu wszystkich elementów wstrzyknij 50 µL mieszaniny białek przez tchawicę, używając mikro-rozpylacza Pen Century.W tym przykładzie myszom podano wlewami intratrachealnymi albo albuminę mysią, albo beta-galaktozydazę. 24 godziny po transfekcji białka stwierdzono intensywne barwienie na beta-galaktozydazę, oznaczone tutaj dużymi strzałkami, w drogach oddechowych myszy traktowanych beta-galaktozydazą, czego nie zaobserwowano u myszy traktowanych albuminą. Po opanowaniu metody, technika ta może zostać wykonana w ciągu 10 lub 15 minut, o ile jest przeprowadzana prawidłowo. Po obejrzeniu tego filmu powinni Państwo posiadać dobrą wiedzę na temat wykonywania intratrachealnych iniekcji u myszy w celu transfekcji białka.

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Transfekcja białka do płuc myszy

Ten film demonstruje metodę generowania mysiego modelu rozprzestrzeniania się opłucnej poprzez wstrzykiwanie zawiesiny komórek raka płuc do klatki piersiowej myszy z niedoborem odporności.

Opracowanie mysiego modelu rozsianego raka płuc w opłucnej

Pierwotne ludzkie komórki nabłonka oskrzeli są trudne do transdukcji. Protokół ten opisuje produkcję lentiwirusów i ich koncentrację, a także optymalne warunki hodowli niezbędne do osiągnięcia wysoce wydajnych transdukcji w tych komórkach poprzez różnicowanie do pseudostratyfikowanego nabłonka.

Optymalna produkcja lentiwirusa i warunki hodowli komórkowej niezbędne do skutecznej transdukcji pierwotnych ludzkich komórek nabłonka oskrzeli

Ten protokół opisuje użycie mikroskopii wielofotonowej do wykonywania długoterminowego, wysokorozdzielczego, jednokomórkowego obrazowania nienaruszonego płuca w czasie rzeczywistym przy użyciu stabilizowanego próżniowo okna obrazowania.

Długotrwała mikroskopia przyżyciowa o wysokiej rozdzielczości w płucach z okienkiem obrazowania stabilizowanym podciśnieniowo

Ten manuskrypt zawiera opis metodologii użytej do ustanowienia modeli myszy transdukcyjno-transplantacyjnych. Przedstawiono szczegółowe informacje na temat błędów technicznych, których należy unikać podczas wykonywania przeszczepów szpiku kostnego. Należy uzyskać jasne zrozumienie znaczenia wysokiego miana wirusa, transfekcji/transdukcji i napromieniania.

Mysi model transdukcyjno-transplantacyjny nowotworu mieloproliferacyjnego

Tutaj prezentujemy protokół promujący integrację transgenów i produkcję założycielskich myszy transgenicznych z wysoką skutecznością poprzez proste wstrzyknięcie wektora lentiwirusowego w przestrzeń okołobrewą zapłodnionego oocytu.

Produkcja transgenicznych myszy za pośrednictwem lentiwirusa: prosta i wysoce skuteczna metoda bezpośredniego badania założycieli

Tutaj opisujemy minimalnie inwazyjny model syngenicznego przeszczepu ortotopowego komórek gruczolakoraka płuc myszy jako model redukujący czas i koszty do badania niedrobnokomórkowego raka płuc.

Ortotopowe przeszczepienie komórek syngenicznego gruczolakoraka płuc w celu zbadania ekspresji PD-L1

Ten protokół opisuje kroki podjęte w celu wywołania guzów płuc KRAS u myszy, jak również ilościowe określenie powstałych guzów za pomocą obrazowania ultradźwiękowego. Małe guzy są wizualizowane we wczesnych punktach czasowych jako linie B. W późniejszych punktach czasowych pomiary względnej objętości guza są osiągane za pomocą narzędzia pomiarowego w oprogramowaniu ultrasonograficznym.

Wykrywanie progresji guza płuc u myszy za pomocą obrazowania ultrasonograficznego

Pokazujemy krok po kroku protokół badania funkcji genów w makrofagach rezydujących w tkance otrzewnej in vivo, przy użyciu wektorów lentiwirusowych.

Preparat wektora lentiwirusowego do skutecznej modulacji genów i mikroRNA makrofagów rezydujących w tkankach jamy otrzewnej in vivo u myszy

Tutaj prezentowany jest protokół produkcji zawiesiny HEK293 oparty na komórkach AAV, co skutkuje zmniejszeniem czasu i pracy potrzebnej do produkcji wektorów przy użyciu komponentów, które są dostępne do celów badawczych od komercyjnych dostawców.

Produkcja wysokowydajnych partii wektorów związanych z adeno przy użyciu komórek zawiesinowych HEK293

Ten protokół opisuje skalowalne podejście do wewnątrzkanalikowego przesiewania CRISPR, umożliwiające równoległe in vivo badania nad wyłączeniem genów i aktywacją w gruczołach piersiowych myszy.

Równoległe in vivo badanie wyłączania i aktywacji genów w gruczołach piersiowych myszy

Poznaj protokół transfekcji białek do płuc myszy przy użyciu mikrospreja i reagenta lipidowego. Ta metoda zwiększa ekspresję białka przy minimalizacji efektów poza docelowych w badaniach pulmonalnych.

Transfekcja białek płuc myszy

Przeglądaj więcej filmów