Name: Szybkie, wysokoprzepustowe oznaczanie amylozy w liofilizowanych próbkach bulw ziemniaka (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-10-14T21:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 57 s
Description: Poznaj szybką metodę kolorymetryczną do oznaczania zawartości amylozy w skrobi ziemniaczanej. Technika umożliwia badanie dużych populacji klonów ziemniaka w celu hodowli odmian o lepszych właściwościach odżywczych.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Finansowanie tych badań zostało częściowo zapewnione przez USDA-ARS Research Associate Program oraz USDA Crop Germplasm Committee.

1. Oznaczanie amylozy ze skrobi z bulw ziemniaka
<ol>
	<li>Świeże bulwy obrać i pokroić w drobną kostkę.</li>
	<li>Umieść kostki ziemniaczane w małych brązowych torebkach i przechowuj przez noc w temperaturze -80 °C.</li>
	<li>Przenieś kostki ziemniaczane do nylonowych torebek i do liofilizacji.</li>
	<li>Po wysuszeniu liofilizowanym zmiel próbkę ziemniaka na proszek za pomocą moździerza i tłuczka lub młynka Wiley.</li>
	<li>Do probówki o pojemności 50 ml dodać 20-30 mg liofilizowanej, zmielonej próbki bulw.</li>
	<li>Przygotować roztwór 45% (w/v) kwasu nadchlorowego (wymieszać 24,4 ml 60% kwasu nadchlorowego i 25,6 ml ultraczystej wody.</li>
	<li>Dodać 500 μl 45% (w/v) kwasu nadchlorowego i wstrząsnąć lub zamieszać, aby rozproszyć granulki skrobi.</li>
	<li>Po czterominutowym okresie inkubacji w temperaturze pokojowej dodać 16 ml ultraczystej wody do roztworu i wymieszać przez wirowanie.</li>
	<li>Po opadnięciu nierozpuszczalnego materiału na dno probówki (7-10 minut później) przenieś 40 μl roztworu na płytkę do mikromiareczkowania (unikając pipetowania jakichkolwiek cząstek).</li>
	<li>Dodać 50 μl roztworu jodu (2 g KI + 1 g I2 w 900 ml ultraczystej wody) i wymieszać próbkę pipetując.</li>
	<li>Natychmiast odczytać absorbancję przy 550 nm i 620 nm.</li>
	<li>Oznaczyć zawartość procentową amylozy po porównaniu stosunku amylozy do amylopektyny w każdej próbce (absorbancja 620 nm/550 nm) z krzywą wzorcową otrzymaną z roztworów amylozy i amylopektyny w zakresie stężeń. Ta procedura zostanie opisana dalej. Odczytać ślepą próbę (roztwór jodu i kwas nadchlorowy) wraz z próbkami testowymi. Do analiz należy używać pustych danych.</li>
</ol>
2. Krzywa amylozy/amylopektyny
<ol>
	<li>W oddzielnych probówkach odważyć 12,5 mg amylozy i 12,5 mg amylopektyny.</li>
	<li>Dodać do każdej probówki 5 ml 45% (m/v) kwasu nadchlorowego i całkowicie rozpuścić.</li>
	<li>Dla każdego z roztworów (amylozy i amylopektyny) doprowadzić do końcowej objętości 50 ml ultraczystą wodą.</li>
	<li>Wymieszaj 6,25 ml bulionu amylozy z poprzedniego kroku z 18,75 ml ultraczystej wody. W ten sposób otrzymamy 6,25 mg/ml roztworu amylozy.</li>
	<li>Powtórz procedurę dla roztworu amylopektyny.</li>
	<li>Korzystając z roztworów wzorcowych amylozy i amylopektyny z kroków 2.4 i 2.5, przygotuj procentowe wzorce amylozy, które wynoszą 0-100% amylozy (100-0% amylopektyny) do końcowej objętości 5 ml, aby utworzyć krzywą wzorcową w odstępach 10%. 
	Na przykład, aby przygotować: 
	Wzorzec 0% amylozy / 100% amylopektyny, pipeta 5 ml roztworu amylopektyny. 
	Wzorzec 10% amylozy / 90% amylopektyny, połącz 0,5 ml roztworów amylozy i 4,5 ml amylopektyny. 
	Wzorzec 20% amylozy / 80% amylopektyny, połącz 1,0 ml roztworów amylozy i 4,0 ml amylopektyny. 
	Wzorzec 30% amylozy / 70% amylopektyny, połącz 1,5 ml roztworów amylozy i 3,5 ml amylopektyny. 
	Standardowy 40% amylozy / 60% amylopektyny, połącz 2,0 ml roztworów amylozy i 2,0 ml amylopektyny. 
	Wzorzec 50% amylozy / 50% amylopektyny, połącz 2,5 ml roztworów amylozy i 2,5 ml amylopektyny. 
	Standard 60% amylozy / 40% amylopektyny, połącz 3,0 ml amylozy i 2,0 ml amylopektyny i tak dalej).</li>
	<li>Przenieść 40 μl każdej mieszaniny wzorcowej na płytkę do mikromiareczkowania. Jako ślepą próbę należy dołączyć studzienkę z 40 μl 45% (w/v) kwasu nadchlorowego.</li>
	<li>Dodać 50 μl roztworu jodu (2 g KI + 1 g I2 w 900 ml ultraczystej wody) i wymieszać każdą próbkę (łącznie z ślepą próbą) przez pipetowanie.</li>
	<li>Natychmiast odczytać absorbancja przy 550 nm i 620 nm i obliczyć stosunek amylozy do amylopektyny dla każdego stężenia.</li>
</ol>

<ol><li>Composition Hoover, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((molecular+structure%2C+and+physicochemical+properties+of+tuber+and+root+starches%3A+a+review%5BTitle%5D)+AND+%22Carbohydr%22%5BJournal%5D)">molecular structure, and physicochemical properties of tuber and root starches: a review.</a> Carbohydr. 45 (3), 253-267 (2001).</li>
<li>Bertoft, E., Blennow, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structure+of+Potato+Starch%5BTitle%5D)+AND+%22Advances+in+Potato+Chemistry+and+Technology%22%5BJournal%5D)">Structure of Potato Starch.</a> Advances in Potato Chemistry and Technology. , 1st ed, Elsevier Ltd. 83-98 (2009).</li>
<li>Campbell, M. R., Yeager, H., Abdubek, N., Pollak, L., Glover, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+methods+for+amylose+screening+in+maize+starches+from+exotic+backgrounds%5BTitle%5D)+AND+%22Cereal+Chem%22%5BJournal%5D)">Comparison of methods for amylose screening in maize starches from exotic backgrounds.</a> Cereal Chem. 79, 317-321 (2002).</li>
<li>Zhu, T., Jackson, D. S., Wehling, R. L., Geera, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+amylose+determination+methods+and+the+development+of+a+dual+wavelength+iodine+binding+technique%5BTitle%5D)+AND+%22Cereal+Chem%22%5BJournal%5D)">Comparison of amylose determination methods and the development of a dual wavelength iodine binding technique.</a> Cereal Chem. 85, 51-58 (2008).</li>
<li>Hovenkamp-Hermelink, J., Devries, J., Adamse, P., Jacobsen, E., Witholt, B., Feenstra, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+estimation+of+the+amylose+amylopectin+ratio+in+small+amounts+of+tuber+and+leaf+tissue+of+the+potato%5BTitle%5D)+AND+%22Potato+Res%22%5BJournal%5D)">Rapid estimation of the amylose amylopectin ratio in small amounts of tuber and leaf tissue of the potato.</a> Potato Res. 31, 241-246 (1988).</li>
<li>Shannon, J. C., Garwood, D. L., Boyer, C. D. Genetics and Physiology of Starch Development. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aShannon%2C+JC+%22Starch%22">Starch</a>. , 3rd ed, Elsevier Inc. 23-82 (2009).</li>
<li>Haase, N. U., Plate, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Properties+of+potato+starch+in+relation+to+varieties+and+environmental+factors%5BTitle%5D)+AND+%22St%C3%A4rke%22%5BJournal%5D)">Properties of potato starch in relation to varieties and environmental factors.</a> Stärke. 48 (5), 167-171 (1996).</li>
<li>Johnston, F. B., Urbas, B., Khanzada, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+storage+on+the+size+distribution+and+amylose%2Famylopectin+ratio+in+potato+starch+granules%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+Pot.+J%22%5BJournal%5D)">Effect of storage on the size distribution and amylose/amylopectin ratio in potato starch granules.</a> Am. Pot. J. 45, 315-321 (1968).</li>
<li>Gibson, T. S., Solah, V. A., McCleary, B. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+procedure+to+measure+amylose+in+cereal+starches+and+flours+with+concanavalin+A%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cereal+Sci%22%5BJournal%5D)">A procedure to measure amylose in cereal starches and flours with concanavalin A.</a> J. Cereal Sci. 25 (2), 111-119 (1997).</li>
<li>Sun, S., Matheson, N., Yun, S. -H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Estimation+of+amylose+content+of+starches+after+precipitation+of+amylopectin+by+concanavalin+A%5BTitle%5D)+AND+%22Starch%22%5BJournal%5D)">Estimation of amylose content of starches after precipitation of amylopectin by concanavalin A.</a> Starch. 42, 302-305 (1990).</li>
</ol>

Nie mamy nic do ujawnienia.

Zawartość amylozy w bulwach ziemniaka waha się zazwyczaj od 20 do 35%7,8. Jeśli większość wartości wykracza poza ten zakres, należy wziąć pod uwagę następujące możliwe błędy: 1) do budowy krzywej standardowej amylozy/amylopektyny użyto surowych danych zamiast pustych danych; 2) zamiast danych zerowych wykorzystano surowe dane do określenia stosunku amylozy do amylopektyny w próbkach ziemniaków; lub 3) woda użyta do analizy nie była wystarczająco czysta. Zauważyliśmy, że przy użyciu w analizie wody destylowanej...

Około 80% świeżej masy bulwy ziemniaka to woda; prawie cała pozostała sucha masa to skrobia1. Większość skrobi (70%) składa się z amylopektyny, a pozostała część to amyloza. Stosunek amylozy do amylopektyny jest najważniejszą właściwością wpływającą na właściwości fizyczne skrobi. Amyloza jest liniowym łańcuchem glukozy alfa 1-4, podczas gdy amylopektyna jest liniowym łańcuchem alfa 1-4 z gałęziami alfa 1-62. Opracowano metody takie jak wiązanie jodu, różnicowa kalorymetria skaningowa (DSC), wysokosprawna chromatografia wykluczająca (HPSEC) i interakcje konkanawaliny A do oznaczania skrobi w różnych gatunkach roślin uprawnych3,4. Każdy protokół wymaga specjalnych umiejętności i sprzętu, co utrudnia zwiększenie skali w celu ilościowego oznaczania wielu próbek jednocześnie. Metoda, którą tutaj prezentujemy, to zmodyfikowany protokół firmy Hovenkamp-Hermelink i wsp.5, która jest metodą wiązania jodu o podwójnej długości fali opartą na barwionych granulkach skrobi. Do zalet tej metody w porównaniu z innymi należy oznaczanie amylozy z surowej skrobi bez jej oczyszczania oraz zastosowanie systemu podwójnej długości fali w celu zwiększenia precyzji metody4,6.

<table><tbody><tr><td colspan="4"><silny> Odczynniki</td></tr><tr><td>Amyloza </td><td>Sigma</td><td>859656</td><td></td></tr><tr><td>Amylopektyna </td><td>Sigma</td><td>A8515</td><td></td></tr><tr><td>Kwas nadchlorowy 60%</td><td>Sigma</td><td>311413</td><td>Bardzo niebezpieczny dla skóry i oczu</td></tr><tr><td>Jod</td><td>Sigma</td><td>23214TD</td><td></td></tr><tr><td>Jodek potasu</td><td>Sigma</td><td>08625JE</td><td></td></tr><<tr>td colspan="4"><mocny>Sprzęt</mocny></td></tr><tr><td>Czytnik płytek</td><td>Bio Tek</td><td>ELx800</td><td></td></tr></tbody></table>

szybkie, wysokoprzepustowe oznaczanie amylozy w liofilizowanych próbkach bulw ziemniaka

Rapid High Throughput Amylose Determination in Freeze Dried Potato Tuber Samples

Ten protokół opisuje metodę kolorymetryczną o wysokiej przepustowości, która opiera się na tworzeniu kompleksu pomiędzy jodem a łańcuchami cząsteczek glukozy w skrobi. Jod tworzy kompleksy zarówno z amylozą, jak i długimi łańcuchami w amylopektynie. Po dodaniu jodu do próbki skrobi maksymalne wchłanianie amylozy i amylopektyny następuje odpowiednio przy 620 i 550 nm. Stosunek amylozy do amylopektyny można oszacować na podstawie stosunku wartości absorbancji 620 i 550 nm i porównać je z krzywą standardową, w której określone znane stężenia są wykreślane w stosunku do wartości absorpcji. Ta wysokowydajna, niedroga metoda jest niezawodna i powtarzalna, umożliwiając ocenę dużych populacji klonów ziemniaków.

Krzywa wzorcowa sporządzona na podstawie danych po odjęciu tła dla roztworów o różnych stężeniach amylozy/amylopektyny wykazuje przybliżone stosunki absorbancji w zakresie od 0,7 do 1,6 (Tabela 1). Linia trendu regresji liniowej uzyskana z tych danych jest następnie wykorzystywana do wyznaczenia zawartości amylozy w liofilizowanych próbkach ziemniaka (Rysunek 1).
Środowisko produkcji roślin ma pewien wpływ na zawartość amylozy w bulwach ziemniaka7. ...

Szybkie, wysokoprzepustowe oznaczanie amylozy w liofilizowanych próbkach bulw ziemniaka

This protocol describes a high through put colorimetric method that relies on the formation of a complex between iodine and chains of glucose molecules in ...

Ogólnym celem tej procedury jest wysokoprzepustowe oznaczenie względnych proporcji AMLO oraz amylopektyny. W skrobi z bulw ziemniaka pożądana jest wysoka zawartość skrobi AMLO ze względu na jej niższą strawność. Ziemniaki o wysokiej zawartości skrobi AMLO charakteryzują się niższym indeksem glikemicznym i wyższą zawartością błonnika.Technika ta jest prezentowana przez Philipa Smitha, studenta studiów licencjackich na University of Wisconsin Madison. W naszym laboratorium zajmujemy się hodowlą odmian ziemniaka o wyższej wartości odżywczej. Jednym ze sposobów realizacji tego celu jest zwiększenie zawartości AMLO w skrobi ziemniaczanej.Skrobia o wysokiej zawartości amylopektyny (AMLO) jest bardziej wartościowa odżywczo, ponieważ posiada niższy indeks glikemiczny. W niniejszym badaniu opracowaliśmy procedurę umożliwiającą dość szybką analizę dużej liczby próbek; jest to powtarzalny, wysokoprzepustowy i niedrogi test. Badanie to stanowi modyfikację procedury barwienia jodem. Jest to analiza kolorymetryczna, którą można przeprowadzić z wykorzystaniem płytki 96-dołkowej. W tej metodzie wykorzystuje się świeże bulwy ziemniaka; należy pokroić bulwy w kostkę o boku około 1 cm i odrzucić kawałki zawierające skórkę.Krojarka do frytek pozwala na sprawne przeprowadzenie tego etapu. Kostki umieszcza się w opisanej torbie. Stosujemy nylonowe skarpetki, takie jak te używane w sklepach obuwniczych.Są one niedrogie i pozwalają na szybkie oraz równomierne wysuszenie próbek w liofilizatorze. Nylonowe woreczki zawierające próbki umieszcza się w papierowej kopercie i mrozi przez noc w temperaturze -80 °C. Zamrożone próbki wyjmuje się z papierowej koperty i umieszcza w liofilizatorze. W przypadku naszego liofilizatora.Całkowite wysuszenie próbek zajmuje około pięciu dni. Po wysuszeniu kostki są gotowe do dalszej obróbki. Wysuszone kostki ziemniaka rozcierga się na drobny proszek za pomocą młyna Wiley lub przy użyciu moździerza z napędem mechanicznym.Kostki lub proszek można przechowywać do momentu ich przetworzenia. Należy jednak upewnić się, że są one szczelnie zamknięte w plastikowych woreczkach lub pojemnikach, aby zapobiec pochłanianiu wody. Proszek umieszcza się w plastikowym woreczku do czasu przeprowadzenia analiz AMLO.Za pomocą wagi analitycznej odważa się około 20 milligrams proszku ziemniaczanego, który następnie umieszcza się w plastikowej probówce o pojemności 50 mil. Próbki o masie mniejszej niż 20 milligrams lub większej niż 30 milligrams nie dają wiarygodnych wyników w procesie rozpuszczania skrobi. Do każdej probówki dodaje się 500 microliters 45% kwasu nadchlorowego.Należy zachować ostrożność podczas pracy z kwasem nadchlorowym; pracę należy prowadzić w dygestorium i stosować środki ochrony osobistej. Po czterominutowym czasie inkubacji próbkę rozcieńcza się 16 mililitrami wody Milli Q, mieszając ją na wstrząsarze Vortex. Po opadnięciu nierozpuszczalnych składników na dno probówki, przenieś 40 mikrolitrów cieczy na płytkę mikrotitracyjną.Należy uważać, aby nie przenieść żadnego materiału nierozpuszczalnego. Do próbki dodaje się 50 µL roztworu jodu i miesza poprzez ostrożne pipetowanie. Nie należy dopuścić do pozostania pęcherzyków powietrza w próbce lub na ściankach dołka.Jeśli powstaną pęcherzyki powietrza, delikatnie opukać płytkę o blat laboratoryjny, aby je usunąć. Umieścić płytkę mikrotitracyjną w czytniku płytek i zmierzyć absorbancję każdej próbki przy 550 nanometrach i 620 nanometrach. Po uzyskaniu wyników z czytnika płytek można porównać dane z krzywą wzorcową i wyznaczyć stosunek AMLO do amylopektyny w próbce skrobi zgodnie z tabelą 1.Jest to typowy wynik krzywej wzorcowej, zgodnie z opisem w protokole. Na rysunku pierwszym przedstawiono wykres stosunków absorbancji oraz wyznaczoną linię regresji dla oznaczenia AMLO w próbkach ziemniaka. Podczas konstruowania krzywej wzorcowej każdy punkt na krzywej powinien odpowiadać wartości absorbancji próbki o znanym stężeniu AMLO.Po odjęciu wartości absorbancji próbki ślepej. Obliczając wartość dla próbki nieznanej, należy również odjąć wartość absorbancji z tabeli ślepej. Dwa. Jest to typowy wynik zawartości AMLO w bulwach ziemniaka.Stosując tę metodę KOLORYMETRYKZNĄ, wykorzystaliśmy ten analiz w naszym laboratorium do określenia względnego wpływu genotypu i środowiska na stosunek AMLO do amylopektyny w skrobi ziemniaczanej. Naszym ostatecznym celem jest opracowanie markerów molekularnych powiązanych z wysoką zawartością skrobi AMLO w ziemniakach, a także stworzenie materiału genetycznego, który hodowcy będą mogli wykorzystać do opracowania odmian ziemniaków o wysokiej zawartości amylozy.

rapid-high-throughput-amylose-determination-freeze-dried-potato-tuber

Research

JoVE Journal

Chemistry

Chemia

Szybkie oznaczanie amilozy o wysokiej wydajności w próbkach suszonych mrożonych bulw ziemniaka

Struktura ściany komórkowej roślin i cechy chemiczne są oceniane w celu zidentyfikowania idealnych surowców do produkcji biopaliw i biomateriałów. Standardowe metody mają ograniczenia, gdy są stosowane do dużych zestawów danych. Te wysokoprzepustowe metody obróbki wstępnej, scukrzania enzymatycznego i pirolizy ze spektrometrią mas wiązki molekularnej porównują dużą liczbę próbek biomasy przy skróconym czasie i kosztach eksperymentu.

Wysokoprzepustowe badania przesiewowe zmian oporności biomasy lignocelulozowej: lignina całkowita, monomery ligniny i enzymatyczne uwalnianie cukru

Prezentujemy zautomatyzowaną, modułową, wysokoprzepustową metodę identyfikacji i charakterystyki mikrobiologicznych egzopolisacharydów w małej skali. Metoda ta łączy szybką preselekcję w celu analizy całkowitej ilości wydzielanych polisacharydów ze szczegółowym odciskiem palca węglowodanów, aby umożliwić szybkie badanie przesiewowe nowo wyizolowanych szczepów bakteryjnych lub całych kolekcji szczepów.

Zautomatyzowana, modułowa, wysokowydajna platforma przesiewowa egzopolisacharydów w połączeniu z bardzo czułą analizą odcisków palców węglowodanów

Analogi trehalozy stają się ważnymi cząsteczkami do zastosowań bio(technicznych)logicznych i biomedycznych. Opisujemy zoptymalizowany protokół enzymatycznej syntezy i oczyszczania analogów trehalozy, który jest prosty, wydajny, szybki i przyjazny dla środowiska. Wykazano jego zastosowanie do szybkiej produkcji i podawania sondy do wykrywania prątków.

Szybka jednoetapowa synteza enzymatyczna i całkowicie wodne oczyszczanie analogów trehalozy

Tutaj prezentujemy wiarygodny i łatwy test do pomiaru zawartości glikogenu w komórkach sinic. Procedura polega na wytrącaniu, selektywnej depolimeryzacji i wykrywaniu pozostałości glukozy. Metoda ta jest odpowiednia zarówno dla szczepów dzikich, jak i genetycznie modyfikowanych i może ułatwić inżynierię metaboliczną sinic.

Oznaczanie zawartości glikogenu w sinicach

Protokół opisany tutaj jest metodą pomiaru endoreduplikacji w bulwach ziemniaka (Solanum tuberosum). Obejmuje etapy plazmolizy i ekstrakcji protoplastów w celu zmniejszenia szumów i zanieczyszczeń w dalszej analizie cytometrycznej przepływowej.

Pomiar endoreduplikacji za pomocą cytometrii przepływowej izolowanych protoplastów bulw

Przedstawiona tutaj jest procedura do powtarzalnego i statystycznie ważnego oznaczania rozkładów wielkości granulek skrobi, oraz do określania ustalonych rozkładów wielkości granulek logarytmicznie za pomocą dwuparametrowej formy multiplikatywnej. Ma zastosowanie do wszystkich analiz wielkości granulek próbek skrobi w skali gramowej do badań naukowych nad roślinami i żywnością.

Analiza i specyfikacja rozkładu wielkości granulek skrobi

Ten artykuł przedstawia zastosowanie PSYCHE i SAPPHIRE-PSYCHE w profilowaniu metabolicznym roślin i zawiera szczegółowe procedury przygotowania próbek i optymalnego zapisu widm NMR Pure Shift. Omówiono przykłady, dzięki którym przyrost rozdzielczości osiągnięty przez rozprzęganie homojądrowe pozwala na pełniejsze zrozumienie systemu.

Magnetyczny rezonans jądrowy z czystym przesunięciem: nowe narzędzie do metabolomiki roślin

Optymalne stężenie sacharozy zostało określone do ekstrakcji glikogenu wątrobowego za pomocą wirowania w gradicynie gęstości sacharozy. Korzystne okazało się dodanie 10-minutowego etapu wrzenia w celu zahamowania enzymów rozkładających glikogen.

Ekstrakcja cząsteczek glikogenu wątrobowego w celu określenia struktury glikogenu

W obecnym protokole, technika elektroforezy węglowodanowej wspomaganej fluoroforem (FACE) jest używana do określenia rozkładu długości łańcucha (CLD) i średniej długości łańcucha (ACL) glikogenu.

Oznaczanie rozkładu długości łańcucha glukanowego glikogenu metodą elektroforezy węglowodanowej wspomaganej fluoroforem (FACE)

Zaprojektowaliśmy protokół fenotypowania oparty na obrazach, aby określić morfologiczne i fizjologiczne reakcje na pojedyncze i skojarzone zabiegi upałów, suszy i podlewania. Podejście to umożliwiło identyfikację wczesnych, późnych i regeneracyjnych reakcji na poziomie całego zakładu, w szczególności części nadziemnych, a także podkreśliło konieczność stosowania wielu czujników obrazowania.

Wysokoprzepustowe fenotypowanie oparte na obrazie w celu określenia morfologicznych i fizjologicznych odpowiedzi na pojedyncze i połączone stresy u ziemniaka

Poznaj szybką metodę kolorymetryczną do oznaczania zawartości amylozy w skrobi ziemniaczanej. Technika umożliwia badanie dużych populacji klonów ziemniaka w celu hodowli odmian o lepszych właściwościach odżywczych.

Szybkie, wysokoprzepustowe oznaczanie amylozy w liofilizowanych próbkach bulw ziemniaka

Przeglądaj więcej filmów