Reakcja łańcuchowa polimerazy lub PCR jest szeroko stosowaną metodą amplifikacji fragmentów DNA. PCR wykorzystuje termocykling, który polega na wielokrotnym ogrzewaniu i chłodzeniu reakcji za pomocą trzech różnych temperatur zwanych denaturacją, wyżarzaniem i wydłużaniem lub wydłużeniem.
Reakcja termocyklingu rozpoczyna się po umieszczeniu odczynników PCR w termocyklerze, maszynie, która jest zaprogramowana do precyzyjnego podgrzewania i chłodzenia reakcji.
Cykl PCR rozpoczyna się od denaturacji, która trwa od 20 do 30 sekund w temperaturze 95 °C, znacznie powyżej temperatury topnienia DNA. Temperatura topnienia to stan, w którym połowa DNA to dwuniciowa helisa, a druga to jednoniciowa losowa cewka. Temperatura denaturacji jest znacznie wyższa od temperatury topnienia, aby zapewnić, że wszystkie wiązania wodorowe między komplementarnymi parami zasad zostaną zerwane, dając tylko jednoniciowe DNA. Sparowane pojedyncze nici nazywane są pasmami sensu i antysensu. Sekwencja zmysłu lub nici kodującej jest identyczna z sekwencją mRNA, która ostatecznie koduje białko. Dlatego ma to sens. Czytany od lewej do prawej zaczyna się od fosforanu 5', a kończy na hydroksylu 3'. Nić antysensowna jest również nazywana nicią komplementarną i zaczyna się od hydroksylu 3' i kończy się fosforanem 5', gdy czyta się ją od lewej do prawej.
W drugim etapie, wyżarzaniu, krótkie fragmenty DNA zwane starterami, które są specyficzne dla nici zmysłowych lub antysensownych, wiążą się wiązaniami wodorowymi. Starter, który wiąże się z nicią antysensowną i ma taką samą sekwencję jak nić sensowna, to starter do przodu lub zmysłowy. Elementarz, który wiąże się z nicią zmysłową i ma sekwencję, która jest odwrotna i komplementarna do nici zmysłu, jest twoim starterem odwrotnym lub antysensownym. W zależności od długości użytych podkładów, temperatura wyżarzania na tym etapie jest zwykle o 3 do 5 °C niższa od dolnej temperatury topnienia dwóch podkładów. Wyżarzanie ma tendencję do zachodzenia w temperaturze od 50 do 65 °C i trwa od 20 do 40 sekund.
Gdy startery zwiążą się z DNA, przygotowują reakcję, tworząc koniec grupy hydroksylowej 3', z którym zwiąże się polimeraza, enzym replikujący DNA.
Następny etap zwany wydłużeniem lub wydłużeniem zachodzi w temperaturze 72 °C, która jest optymalna dla aktywności polimerazy. Po związaniu polimeraza zaczyna dodawać wolne trifosforany nukleotydów lub dNTP do końców startera jeden po drugim w kierunku od 5 'do 3', aby utworzyć dwuniciowy DNA.
Po zakończeniu wydłużania rozpoczyna się następny cykl. W następnym cyklu startery zwiążą się z jednoniciowym DNA powstałym w wyniku wcześniejszego wydłużenia. Krótki fragment, który próbujesz wzmocnić, amplikon, ostatecznie uformuje się, gdy polimeraza rozciągnie się z przedniego startera na nić, która została wygenerowana przez amplifikację z odwrotnego startera lub odwrotnie. Po wygenerowaniu ilość amplikonu będzie rosła wykładniczo w kolejnych cyklach. W zależności od celu twojej reakcji potrzebnych będzie od 20 do 40 cykli.
W przypadku długich amplikonów końcowy etap wydłużania jest zwykle uruchamiany w temperaturze 72 °C przez 5 do 15 minut, aby upewnić się, że całe DNA jest dwuniciowe. Zazwyczaj końcowy etap utrzymywania w temperaturze 4 °C jest programowany w termocyklerze jako krok zapobiegawczy, aby zapewnić, że DNA pozostanie stabilne do momentu wyjęcia z termocyklera.
Reakcja PCR wymaga kilku kluczowych odczynników. Pierwszą z nich jest matryca DNA, która jest próbką DNA, z której zostanie amplifikowany twój fragment. Są też twoje startery, które są krótkimi fragmentami DNA lub oligonukleotydami, które przygotowują reakcję polimerazy.
Istnieje kilka ważnych kwestii, które należy wziąć pod uwagę przy wyborze podkładów. Po pierwsze, muszą być komplementarne z regionami 5' i 3' matrycy DNA, które otaczają sekwencję, którą chcesz amplifikować. Po drugie, powinny mieć od 15 do 30 par zasad i składać się z około 50% guaniny i cytozyny. Po trzecie, temperatury topnienia obu podkładów powinny przekraczać 50 °C i mieścić się w odległości od jednego do dwóch stopni od siebie, aby mogły skutecznie wiązać się w tej samej temperaturze wyżarzania. Po czwarte, nie mogą się wzajemnie uzupełniać i tworzyć dimerów starterowych. I po piąte, nie powinny zawierać struktury drugorzędowej, która powstaje w wyniku samoczynnego wyżarzania w jednym ze starterów.
Oprócz starterów i matrycy DNA, polimeraza DNA jest niezbędna do reakcji PCR. Enzymem najczęściej stosowanym w PCR jest polimeraza Taq, która jest termostabilnym enzymem wyizolowanym z bakterii Thermus aquaticus, która zamieszkuje gorące źródła. Polimeraza Taq wytrzymuje temperatury powyżej 90 °C.
dNTP, które będą składać się z par zasad w rosnących niciach, również muszą zostać dodane do reakcji. Bufor reakcyjny, który utrzymuje pH i zawiera ważne jony, takie jak mangan, magnez i potas, jest również niezbędnym składnikiem reakcji, który stabilizuje reakcję i dostarcza ważnych kofaktorów enzymowi polimerazy. Podobnie jak wszystkie reakcje, PCR wymaga rozpuszczalnika, dlatego stosuje się wodę klasy PCR, która jest wolna od jonów, które mogą hamować reakcję.
Przed rozpoczęciem PCR upewnij się, że środowisko pracy jest czyste, aby uniknąć zanieczyszczenia. Należy zawsze nosić rękawice.
Aby pomóc w śledzeniu różnych składników reakcji, które będą potrzebne. Sporządź tabelę objętości i stężeń odczynników dla każdej z próbek, w tym dla próbek. Pod względem objętości typowa reakcja powinna zawierać 5 μL 10X buforu reakcyjnego, 4 μL 25 mM MgCl2, 1 μL dNTP przy 10 mM, 2 μL starterów do przodu i do tyłu przy 50 ng/μL oraz 0,3 μL polimerazy Taq przy 5 U/μL. Chcesz dodać wystarczającą ilość szablonu, aby 100 ng było obecne w reakcji. Wreszcie większość reakcji PCR przeprowadza się w całkowitej objętości 50 μl. Tak więc należy użyć objętości wody klasy PCR, aby upewnić się, że całkowita objętość wynosi rzeczywiście 50 μl.
Gdy reakcja jest zaplanowana na papierze, złóż odczynniki na lodzie.
Następnie dodaj odczynniki do probówki PCR. Najpierw dodaj wodę, następnie szablon, podkłady, bufor, chlorek magnezu i dNTP, na końcu dodaj polimerazę Taq i dokładnie wymieszaj.
Po skonfigurowaniu reakcji umieść próbkę w termocyklerze i uruchom program PCR. Krótko mówiąc, części maszyny składają się z termobloku, do którego wkładana jest probówka lub płytka PCR i podlegają precyzyjnym zmianom temperatury. Podgrzewana pokrywa, która zapobiega kondensacji, dzięki czemu nie dochodzi do utraty próbki oraz interfejs z wyświetlaczem do programowania temperatur PCR i czasu trwania cyklu. Zawsze konfiguruj swój program przed złożeniem reakcji.
Gdy termocykler wykona swoją pracę. Wyjmij swoją reakcję i zweryfikuj produkt PCR za pomocą elektroforezy żelowej. Jeśli PCR się powiedzie, powinieneś zobaczyć amplikon o odpowiednim rozmiarze pary zasad.
A teraz kilka pomocnych wskazówek podczas pracy z PCR. Kiedy próbujesz wzmocnić ten sam produkt PCR z wielu różnych szablonów, a zatem masz wiele różnych reakcji na konfigurację. Przydatne jest zwiększenie skali reakcji w celu stworzenia mieszanki wzorcowej. Główna mieszanina PCR to mieszanina o dużej objętości wszystkich odczynników współdzielonych między próbkami, która jest następnie rozprowadzana do wielu probówek reakcyjnych.
Większość reakcji PCR rozpoczyna się od początkowego etapu denaturacji, który zachodzi w temperaturze 95°C przez 1 do 9 minut. Ten krok zapewnia, że cała matryca jest jednoniciowa dla pierwszego cyklu amplifikacji.
Często pożądane jest użycie komory PCR, gdy ryzyko zanieczyszczenia próbki jest wysokie. Aby sprawdzić, czy w reakcji nie ma zanieczyszczeń, korzystne jest ustawienie kontroli negatywnej, która nie ma matrycy DNA i nie powinna wytwarzać produktu w żelu DNA.
Często PCR musi być zoptymalizowany poprzez dostosowanie temperatury, stężenia chlorku magnezu lub wypróbowanie nowych starterów. Gdy już Twój PCR będzie działał. Dobrym pomysłem jest zawsze uruchamianie szablonu kontroli pozytywnej, o którym wiesz, że wytworzy produkt.
Istnieje wiele odmian i zastosowań PCR do różnych celów.
Jedna z odmian PCR, hot start PCR, polega na wstrzymaniu polimerazy z reakcji do czasu pierwszego etapu denaturacji, co zapobiega niespecyficznej amplifikacji, która może wystąpić przed cyklem.
PCR może być również modyfikowany w celu jednoczesnej amplifikacji wielu sekwencji DNA poprzez zastosowanie wielu starterów w jednej reakcji PCR zwanej multiplex PCR.
W połączeniu z fluorescencyjnymi sondami oligonukleotydowymi, PCR może stać się techniką, która może mierzyć względne lub bezwzględne poziomy ekspresji genów lub ilość mRNA wytwarzanego dla danego genu lub grupy genów. Ta metoda jest określana jako qPCR.
PCR może być również stosowany do określania obecności określonej sekwencji DNA w organizmie. Ta procedura jest określana jako genotypowanie. Na przykład genotypowanie można wykorzystać do określenia autentyczności próbek ryb poprzez ustalenie, czy w próbce występuje sekwencja specyficzna dla gatunku. Genotypowanie jest również wykorzystywane w analizie kryminalistycznej w celu określenia, czy DNA znalezione na miejscu przestępstwa pasuje do podejrzanego.
Właśnie obejrzałeś wprowadzenie JoVE do PCR. W tym filmie omówiliśmy, czym jest PCR i jak działa, wiele elementów reakcji PCR, mechanizm, za pomocą którego PCR może amplifikować DNA oraz wiele odmian i zastosowań tej bardzo przydatnej techniki. Dzięki za oglądanie!
Reakcja łańcuchowa polimerazy lub PCR to technika stosowana do amplifikacji DNA poprzez termocykle – cykle zmian temperatury w ustalonych odstępach cz…
Reakcja łańcuchowa polimerazy lub PCR jest szeroko stosowaną metodą amplifikacji fragmentów DNA. PCR wykorzystuje termocykling, który polega na wielokrotnym ogrzewaniu i chłodzeniu reakcji za pomocą trzech różnych temperatur zwanych denaturacją, wyżarzaniem i wydłużaniem lub wydłużeniem.
Reakcja termocyklingu rozpoczyna się po umieszczeniu odczynników PCR w termocyklerze, maszynie, która jest zaprogramowana do precyzyjnego podgrzewania i chłodzenia reakcji.
Cykl PCR rozpoczyna się od denaturacji, która trwa od 20 do 30 sekund w temperaturze 95 °C, znacznie powyżej temperatury topnienia DNA. Temperatura topnienia to stan, w którym połowa DNA to dwuniciowa helisa, a druga to jednoniciowa losowa cewka. Temperatura denaturacji jest znacznie wyższa od temperatury topnienia, aby zapewnić, że wszystkie wiązania wodorowe między komplementarnymi parami zasad zostaną zerwane, dając tylko jednoniciowe DNA. Sparowane pojedyncze nici nazywane są pasmami sensu i antysensu. Sekwencja zmysłu lub nici kodującej jest identyczna z sekwencją mRNA, która ostatecznie koduje białko. Dlatego ma to sens. Czytany od lewej do prawej zaczyna się od fosforanu 5', a kończy na hydroksylu 3'. Nić antysensowna jest również nazywana nicią komplementarną i zaczyna się od hydroksylu 3' i kończy się fosforanem 5', gdy czyta się ją od lewej do prawej.
W drugim etapie, wyżarzaniu, krótkie fragmenty DNA zwane starterami, które są specyficzne dla nici zmysłowych lub antysensownych, wiążą się wiązaniami wodorowymi. Starter, który wiąże się z nicią antysensowną i ma taką samą sekwencję jak nić sensowna, to starter do przodu lub zmysłowy. Elementarz, który wiąże się z nicią zmysłową i ma sekwencję, która jest odwrotna i komplementarna do nici zmysłu, jest twoim starterem odwrotnym lub antysensownym. W zależności od długości użytych podkładów, temperatura wyżarzania na tym etapie jest zwykle o 3 do 5 °C niższa od dolnej temperatury topnienia dwóch podkładów. Wyżarzanie ma tendencję do zachodzenia w temperaturze od 50 do 65 °C i trwa od 20 do 40 sekund.
Gdy startery zwiążą się z DNA, przygotowują reakcję, tworząc koniec grupy hydroksylowej 3', z którym zwiąże się polimeraza, enzym replikujący DNA.
Następny etap zwany wydłużeniem lub wydłużeniem zachodzi w temperaturze 72 °C, która jest optymalna dla aktywności polimerazy. Po związaniu polimeraza zaczyna dodawać wolne trifosforany nukleotydów lub dNTP do końców startera jeden po drugim w kierunku od 5 'do 3', aby utworzyć dwuniciowy DNA.
Po zakończeniu wydłużania rozpoczyna się następny cykl. W następnym cyklu startery zwiążą się z jednoniciowym DNA powstałym w wyniku wcześniejszego wydłużenia. Krótki fragment, który próbujesz wzmocnić, amplikon, ostatecznie uformuje się, gdy polimeraza rozciągnie się z przedniego startera na nić, która została wygenerowana przez amplifikację z odwrotnego startera lub odwrotnie. Po wygenerowaniu ilość amplikonu będzie rosła wykładniczo w kolejnych cyklach. W zależności od celu twojej reakcji potrzebnych będzie od 20 do 40 cykli.
W przypadku długich amplikonów końcowy etap wydłużania jest zwykle uruchamiany w temperaturze 72 °C przez 5 do 15 minut, aby upewnić się, że całe DNA jest dwuniciowe. Zazwyczaj końcowy etap utrzymywania w temperaturze 4 °C jest programowany w termocyklerze jako krok zapobiegawczy, aby zapewnić, że DNA pozostanie stabilne do momentu wyjęcia z termocyklera.
Reakcja PCR wymaga kilku kluczowych odczynników. Pierwszą z nich jest matryca DNA, która jest próbką DNA, z której zostanie amplifikowany twój fragment. Są też twoje startery, które są krótkimi fragmentami DNA lub oligonukleotydami, które przygotowują reakcję polimerazy.
Istnieje kilka ważnych kwestii, które należy wziąć pod uwagę przy wyborze podkładów. Po pierwsze, muszą być komplementarne z regionami 5' i 3' matrycy DNA, które otaczają sekwencję, którą chcesz amplifikować. Po drugie, powinny mieć od 15 do 30 par zasad i składać się z około 50% guaniny i cytozyny. Po trzecie, temperatury topnienia obu podkładów powinny przekraczać 50 °C i mieścić się w odległości od jednego do dwóch stopni od siebie, aby mogły skutecznie wiązać się w tej samej temperaturze wyżarzania. Po czwarte, nie mogą się wzajemnie uzupełniać i tworzyć dimerów starterowych. I po piąte, nie powinny zawierać struktury drugorzędowej, która powstaje w wyniku samoczynnego wyżarzania w jednym ze starterów.
Oprócz starterów i matrycy DNA, polimeraza DNA jest niezbędna do reakcji PCR. Enzymem najczęściej stosowanym w PCR jest polimeraza Taq, która jest termostabilnym enzymem wyizolowanym z bakterii Thermus aquaticus, która zamieszkuje gorące źródła. Polimeraza Taq wytrzymuje temperatury powyżej 90 °C.
dNTP, które będą składać się z par zasad w rosnących niciach, również muszą zostać dodane do reakcji. Bufor reakcyjny, który utrzymuje pH i zawiera ważne jony, takie jak mangan, magnez i potas, jest również niezbędnym składnikiem reakcji, który stabilizuje reakcję i dostarcza ważnych kofaktorów enzymowi polimerazy. Podobnie jak wszystkie reakcje, PCR wymaga rozpuszczalnika, dlatego stosuje się wodę klasy PCR, która jest wolna od jonów, które mogą hamować reakcję.
Przed rozpoczęciem PCR upewnij się, że środowisko pracy jest czyste, aby uniknąć zanieczyszczenia. Należy zawsze nosić rękawice.
Aby pomóc w śledzeniu różnych składników reakcji, które będą potrzebne. Sporządź tabelę objętości i stężeń odczynników dla każdej z próbek, w tym dla próbek. Pod względem objętości typowa reakcja powinna zawierać 5 μL 10X buforu reakcyjnego, 4 μL 25 mM MgCl2, 1 μL dNTP przy 10 mM, 2 μL starterów do przodu i do tyłu przy 50 ng/μL oraz 0,3 μL polimerazy Taq przy 5 U/μL. Chcesz dodać wystarczającą ilość szablonu, aby 100 ng było obecne w reakcji. Wreszcie większość reakcji PCR przeprowadza się w całkowitej objętości 50 μl. Tak więc należy użyć objętości wody klasy PCR, aby upewnić się, że całkowita objętość wynosi rzeczywiście 50 μl.
Gdy reakcja jest zaplanowana na papierze, złóż odczynniki na lodzie.
Następnie dodaj odczynniki do probówki PCR. Najpierw dodaj wodę, następnie szablon, podkłady, bufor, chlorek magnezu i dNTP, na końcu dodaj polimerazę Taq i dokładnie wymieszaj.
Po skonfigurowaniu reakcji umieść próbkę w termocyklerze i uruchom program PCR. Krótko mówiąc, części maszyny składają się z termobloku, do którego wkładana jest probówka lub płytka PCR i podlegają precyzyjnym zmianom temperatury. Podgrzewana pokrywa, która zapobiega kondensacji, dzięki czemu nie dochodzi do utraty próbki oraz interfejs z wyświetlaczem do programowania temperatur PCR i czasu trwania cyklu. Zawsze konfiguruj swój program przed złożeniem reakcji.
Gdy termocykler wykona swoją pracę. Wyjmij swoją reakcję i zweryfikuj produkt PCR za pomocą elektroforezy żelowej. Jeśli PCR się powiedzie, powinieneś zobaczyć amplikon o odpowiednim rozmiarze pary zasad.
A teraz kilka pomocnych wskazówek podczas pracy z PCR. Kiedy próbujesz wzmocnić ten sam produkt PCR z wielu różnych szablonów, a zatem masz wiele różnych reakcji na konfigurację. Przydatne jest zwiększenie skali reakcji w celu stworzenia mieszanki wzorcowej. Główna mieszanina PCR to mieszanina o dużej objętości wszystkich odczynników współdzielonych między próbkami, która jest następnie rozprowadzana do wielu probówek reakcyjnych.
Większość reakcji PCR rozpoczyna się od początkowego etapu denaturacji, który zachodzi w temperaturze 95°C przez 1 do 9 minut. Ten krok zapewnia, że cała matryca jest jednoniciowa dla pierwszego cyklu amplifikacji.
Często pożądane jest użycie komory PCR, gdy ryzyko zanieczyszczenia próbki jest wysokie. Aby sprawdzić, czy w reakcji nie ma zanieczyszczeń, korzystne jest ustawienie kontroli negatywnej, która nie ma matrycy DNA i nie powinna wytwarzać produktu w żelu DNA.
Często PCR musi być zoptymalizowany poprzez dostosowanie temperatury, stężenia chlorku magnezu lub wypróbowanie nowych starterów. Gdy już Twój PCR będzie działał. Dobrym pomysłem jest zawsze uruchamianie szablonu kontroli pozytywnej, o którym wiesz, że wytworzy produkt.
Istnieje wiele odmian i zastosowań PCR do różnych celów.
Jedna z odmian PCR, hot start PCR, polega na wstrzymaniu polimerazy z reakcji do czasu pierwszego etapu denaturacji, co zapobiega niespecyficznej amplifikacji, która może wystąpić przed cyklem.
PCR może być również modyfikowany w celu jednoczesnej amplifikacji wielu sekwencji DNA poprzez zastosowanie wielu starterów w jednej reakcji PCR zwanej multiplex PCR.
W połączeniu z fluorescencyjnymi sondami oligonukleotydowymi, PCR może stać się techniką, która może mierzyć względne lub bezwzględne poziomy ekspresji genów lub ilość mRNA wytwarzanego dla danego genu lub grupy genów. Ta metoda jest określana jako qPCR.
PCR może być również stosowany do określania obecności określonej sekwencji DNA w organizmie. Ta procedura jest określana jako genotypowanie. Na przykład genotypowanie można wykorzystać do określenia autentyczności próbek ryb poprzez ustalenie, czy w próbce występuje sekwencja specyficzna dla gatunku. Genotypowanie jest również wykorzystywane w analizie kryminalistycznej w celu określenia, czy DNA znalezione na miejscu przestępstwa pasuje do podejrzanego.
Właśnie obejrzałeś wprowadzenie JoVE do PCR. W tym filmie omówiliśmy, czym jest PCR i jak działa, wiele elementów reakcji PCR, mechanizm, za pomocą którego PCR może amplifikować DNA oraz wiele odmian i zastosowań tej bardzo przydatnej techniki. Dzięki za oglądanie!
Zaloguj się lub , aby uzyskać dostęp do pełnej treści. Dowiedz się więcej o dostępie Twojej instytucji do treści JoVE tutaj
Reakcja łańcuchowa polimerazy lub PCR jest szeroko stosowaną metodą amplifikacji fragmentów DNA. PCR wykorzystuje termocykling, który polega na wielokrotnym ogrzewaniu i chłodzeniu reakcji za pomocą trzech różnych temperatur zwanych denaturacją, wyżarzaniem i wydłużaniem lub wydłużeniem.
Reakcja termocyklingu rozpoczyna się po umieszczeniu odczynników PCR w termocyklerze, maszynie, która jest zaprogramowana do precyzyjnego podgrzewania i chłodzenia reakcji.
Cykl PCR rozpoczyna się od denaturacji, która trwa od 20 do 30 sekund w temperaturze 95 °C, znacznie powyżej temperatury topnienia DNA. Temperatura topnienia to stan, w którym połowa DNA to dwuniciowa helisa, a druga to jednoniciowa losowa cewka. Temperatura denaturacji jest znacznie wyższa od temperatury topnienia, aby zapewnić, że wszystkie wiązania wodorowe między komplementarnymi parami zasad zostaną zerwane, dając tylko jednoniciowe DNA. Sparowane pojedyncze nici nazywane są pasmami sensu i antysensu. Sekwencja zmysłu lub nici kodującej jest identyczna z sekwencją mRNA, która ostatecznie koduje białko. Dlatego ma to sens. Czytany od lewej do prawej zaczyna się od fosforanu 5', a kończy na hydroksylu 3'. Nić antysensowna jest również nazywana nicią komplementarną i zaczyna się od hydroksylu 3' i kończy się fosforanem 5', gdy czyta się ją od lewej do prawej.
W drugim etapie, wyżarzaniu, krótkie fragmenty DNA zwane starterami, które są specyficzne dla nici zmysłowych lub antysensownych, wiążą się wiązaniami wodorowymi. Starter, który wiąże się z nicią antysensowną i ma taką samą sekwencję jak nić sensowna, to starter do przodu lub zmysłowy. Elementarz, który wiąże się z nicią zmysłową i ma sekwencję, która jest odwrotna i komplementarna do nici zmysłu, jest twoim starterem odwrotnym lub antysensownym. W zależności od długości użytych podkładów, temperatura wyżarzania na tym etapie jest zwykle o 3 do 5 °C niższa od dolnej temperatury topnienia dwóch podkładów. Wyżarzanie ma tendencję do zachodzenia w temperaturze od 50 do 65 °C i trwa od 20 do 40 sekund.
Gdy startery zwiążą się z DNA, przygotowują reakcję, tworząc koniec grupy hydroksylowej 3', z którym zwiąże się polimeraza, enzym replikujący DNA.
Następny etap zwany wydłużeniem lub wydłużeniem zachodzi w temperaturze 72 °C, która jest optymalna dla aktywności polimerazy. Po związaniu polimeraza zaczyna dodawać wolne trifosforany nukleotydów lub dNTP do końców startera jeden po drugim w kierunku od 5 'do 3', aby utworzyć dwuniciowy DNA.
Po zakończeniu wydłużania rozpoczyna się następny cykl. W następnym cyklu startery zwiążą się z jednoniciowym DNA powstałym w wyniku wcześniejszego wydłużenia. Krótki fragment, który próbujesz wzmocnić, amplikon, ostatecznie uformuje się, gdy polimeraza rozciągnie się z przedniego startera na nić, która została wygenerowana przez amplifikację z odwrotnego startera lub odwrotnie. Po wygenerowaniu ilość amplikonu będzie rosła wykładniczo w kolejnych cyklach. W zależności od celu twojej reakcji potrzebnych będzie od 20 do 40 cykli.
W przypadku długich amplikonów końcowy etap wydłużania jest zwykle uruchamiany w temperaturze 72 °C przez 5 do 15 minut, aby upewnić się, że całe DNA jest dwuniciowe. Zazwyczaj końcowy etap utrzymywania w temperaturze 4 °C jest programowany w termocyklerze jako krok zapobiegawczy, aby zapewnić, że DNA pozostanie stabilne do momentu wyjęcia z termocyklera.
Reakcja PCR wymaga kilku kluczowych odczynników. Pierwszą z nich jest matryca DNA, która jest próbką DNA, z której zostanie amplifikowany twój fragment. Są też twoje startery, które są krótkimi fragmentami DNA lub oligonukleotydami, które przygotowują reakcję polimerazy.
Istnieje kilka ważnych kwestii, które należy wziąć pod uwagę przy wyborze podkładów. Po pierwsze, muszą być komplementarne z regionami 5' i 3' matrycy DNA, które otaczają sekwencję, którą chcesz amplifikować. Po drugie, powinny mieć od 15 do 30 par zasad i składać się z około 50% guaniny i cytozyny. Po trzecie, temperatury topnienia obu podkładów powinny przekraczać 50 °C i mieścić się w odległości od jednego do dwóch stopni od siebie, aby mogły skutecznie wiązać się w tej samej temperaturze wyżarzania. Po czwarte, nie mogą się wzajemnie uzupełniać i tworzyć dimerów starterowych. I po piąte, nie powinny zawierać struktury drugorzędowej, która powstaje w wyniku samoczynnego wyżarzania w jednym ze starterów.
Oprócz starterów i matrycy DNA, polimeraza DNA jest niezbędna do reakcji PCR. Enzymem najczęściej stosowanym w PCR jest polimeraza Taq, która jest termostabilnym enzymem wyizolowanym z bakterii Thermus aquaticus, która zamieszkuje gorące źródła. Polimeraza Taq wytrzymuje temperatury powyżej 90 °C.
dNTP, które będą składać się z par zasad w rosnących niciach, również muszą zostać dodane do reakcji. Bufor reakcyjny, który utrzymuje pH i zawiera ważne jony, takie jak mangan, magnez i potas, jest również niezbędnym składnikiem reakcji, który stabilizuje reakcję i dostarcza ważnych kofaktorów enzymowi polimerazy. Podobnie jak wszystkie reakcje, PCR wymaga rozpuszczalnika, dlatego stosuje się wodę klasy PCR, która jest wolna od jonów, które mogą hamować reakcję.
Przed rozpoczęciem PCR upewnij się, że środowisko pracy jest czyste, aby uniknąć zanieczyszczenia. Należy zawsze nosić rękawice.
Aby pomóc w śledzeniu różnych składników reakcji, które będą potrzebne. Sporządź tabelę objętości i stężeń odczynników dla każdej z próbek, w tym dla próbek. Pod względem objętości typowa reakcja powinna zawierać 5 μL 10X buforu reakcyjnego, 4 μL 25 mM MgCl2, 1 μL dNTP przy 10 mM, 2 μL starterów do przodu i do tyłu przy 50 ng/μL oraz 0,3 μL polimerazy Taq przy 5 U/μL. Chcesz dodać wystarczającą ilość szablonu, aby 100 ng było obecne w reakcji. Wreszcie większość reakcji PCR przeprowadza się w całkowitej objętości 50 μl. Tak więc należy użyć objętości wody klasy PCR, aby upewnić się, że całkowita objętość wynosi rzeczywiście 50 μl.
Gdy reakcja jest zaplanowana na papierze, złóż odczynniki na lodzie.
Następnie dodaj odczynniki do probówki PCR. Najpierw dodaj wodę, następnie szablon, podkłady, bufor, chlorek magnezu i dNTP, na końcu dodaj polimerazę Taq i dokładnie wymieszaj.
Po skonfigurowaniu reakcji umieść próbkę w termocyklerze i uruchom program PCR. Krótko mówiąc, części maszyny składają się z termobloku, do którego wkładana jest probówka lub płytka PCR i podlegają precyzyjnym zmianom temperatury. Podgrzewana pokrywa, która zapobiega kondensacji, dzięki czemu nie dochodzi do utraty próbki oraz interfejs z wyświetlaczem do programowania temperatur PCR i czasu trwania cyklu. Zawsze konfiguruj swój program przed złożeniem reakcji.
Gdy termocykler wykona swoją pracę. Wyjmij swoją reakcję i zweryfikuj produkt PCR za pomocą elektroforezy żelowej. Jeśli PCR się powiedzie, powinieneś zobaczyć amplikon o odpowiednim rozmiarze pary zasad.
A teraz kilka pomocnych wskazówek podczas pracy z PCR. Kiedy próbujesz wzmocnić ten sam produkt PCR z wielu różnych szablonów, a zatem masz wiele różnych reakcji na konfigurację. Przydatne jest zwiększenie skali reakcji w celu stworzenia mieszanki wzorcowej. Główna mieszanina PCR to mieszanina o dużej objętości wszystkich odczynników współdzielonych między próbkami, która jest następnie rozprowadzana do wielu probówek reakcyjnych.
Większość reakcji PCR rozpoczyna się od początkowego etapu denaturacji, który zachodzi w temperaturze 95°C przez 1 do 9 minut. Ten krok zapewnia, że cała matryca jest jednoniciowa dla pierwszego cyklu amplifikacji.
Często pożądane jest użycie komory PCR, gdy ryzyko zanieczyszczenia próbki jest wysokie. Aby sprawdzić, czy w reakcji nie ma zanieczyszczeń, korzystne jest ustawienie kontroli negatywnej, która nie ma matrycy DNA i nie powinna wytwarzać produktu w żelu DNA.
Często PCR musi być zoptymalizowany poprzez dostosowanie temperatury, stężenia chlorku magnezu lub wypróbowanie nowych starterów. Gdy już Twój PCR będzie działał. Dobrym pomysłem jest zawsze uruchamianie szablonu kontroli pozytywnej, o którym wiesz, że wytworzy produkt.
Istnieje wiele odmian i zastosowań PCR do różnych celów.
Jedna z odmian PCR, hot start PCR, polega na wstrzymaniu polimerazy z reakcji do czasu pierwszego etapu denaturacji, co zapobiega niespecyficznej amplifikacji, która może wystąpić przed cyklem.
PCR może być również modyfikowany w celu jednoczesnej amplifikacji wielu sekwencji DNA poprzez zastosowanie wielu starterów w jednej reakcji PCR zwanej multiplex PCR.
W połączeniu z fluorescencyjnymi sondami oligonukleotydowymi, PCR może stać się techniką, która może mierzyć względne lub bezwzględne poziomy ekspresji genów lub ilość mRNA wytwarzanego dla danego genu lub grupy genów. Ta metoda jest określana jako qPCR.
PCR może być również stosowany do określania obecności określonej sekwencji DNA w organizmie. Ta procedura jest określana jako genotypowanie. Na przykład genotypowanie można wykorzystać do określenia autentyczności próbek ryb poprzez ustalenie, czy w próbce występuje sekwencja specyficzna dla gatunku. Genotypowanie jest również wykorzystywane w analizie kryminalistycznej w celu określenia, czy DNA znalezione na miejscu przestępstwa pasuje do podejrzanego.
Właśnie obejrzałeś wprowadzenie JoVE do PCR. W tym filmie omówiliśmy, czym jest PCR i jak działa, wiele elementów reakcji PCR, mechanizm, za pomocą którego PCR może amplifikować DNA oraz wiele odmian i zastosowań tej bardzo przydatnej techniki. Dzięki za oglądanie!
View the full transcript and gain access to JoVE Science Education videos
Q1: What are the three main temperature steps in a PCR cycle?
PCR uses three distinct temperature steps called denaturation, annealing, and extension. Denaturation at 95°C breaks hydrogen bonds between DNA base pairs, creating single-stranded DNA. Annealing at 50-65°C allows primers to bind to the template. Extension at 72°C enables DNA polymerase to synthesize new complementary strands by adding nucleotides.
Q2: Why is Taq polymerase used in PCR reactions?
Taq polymerase is a thermostable enzyme isolated from the bacterium Thermus aquaticus, which lives in hot springs. It can withstand temperatures exceeding 90°C, making it ideal for PCR because it remains active throughout repeated heating and cooling cycles without denaturing, unlike standard DNA polymerases.
Q3: What are the key requirements for designing PCR primers?
Effective primers must be 15-30 base pairs long with approximately 50% guanine and cytosine content. Both primers should have melting temperatures above 50°C and within 1-2 degrees of each other. Primers must be complementary to flanking regions of your target sequence, avoid forming primer dimers, and lack secondary structure from self-annealing.
Q4: How does PCR amplify DNA exponentially?
After each cycle, primers bind to newly synthesized single-stranded DNA. The amplicon forms when polymerase extends from the forward primer on a strand generated by reverse primer amplification, or vice versa. Once created, this amplicon serves as template in subsequent cycles, doubling the target DNA with each cycle and producing exponential amplification after 20-40 cycles.
Q5: What essential reagents must be included in a PCR reaction?
A complete PCR reaction requires DNA template, forward and reverse primers, Taq polymerase, dNTPs (nucleotide building blocks), reaction buffer containing magnesium and other ions, and PCR-grade water. A typical 50-microliter reaction includes specific concentrations of each component. The buffer maintains pH and provides cofactors necessary for polymerase function and reaction stability.
Q6: How do you verify successful PCR amplification?
After PCR completes, verify the product using gel electrophoresis concept procedure and applications to visualize DNA fragments. Successful amplification appears as a band at the correct base pair size matching your expected amplicon. Running negative controls without template and positive controls with known template helps confirm specificity and detect contamination in your reactions.
Q7: What is a PCR master mix and when should you use it?
A PCR master mix is a large-volume mixture of all shared reagents distributed into multiple reaction tubes, useful when amplifying the same product from numerous different templates. This approach reduces setup time and minimizes pipetting errors across many reactions. Each tube receives the master mix plus its specific DNA template, streamlining high-throughput PCR workflows.
Rozdziały w tym filmie
0:00
Overview
0:35
The Reaction
4:46
Reaction Components
7:10
Setting up the Reaction
9:54
Helpful Hints
11:23
Applications
12:56
Summary