13 lutego 2014
Tutaj opisujemy metodę szybkiego i dokładnego pomiaru wydajności lotu u Drosophila, umożliwiając wysokoprzepustowe badania przesiewowe.
Ogólnym celem tej procedury jest szybki i dokładny pomiar wydajności lotu u Drosophila. Jest to realizowane poprzez najpierw wrzucenie much do cylindra lotniczego. Drugim krokiem procedury jest utrwalenie obrazu powierzchni lądowania za pomocą kamery cyfrowej.
Ostatnim krokiem jest analiza danych przy użyciu oprogramowania do obrazowania poprzez pomiar wysokości lądowania każdej muchy. W rezultacie procedura ta pomaga w identyfikacji mutacji oraz stanów, takich jak starzenie się lub neurodegeneracja, które upośledzają zdolność lotu, a także pozwala na ilościową ocenę wydajności lotu. Główną zaletą tej techniki w porównaniu z istniejącymi metodami, takimi jak oryginalny tester lotu, jest jej większa przydatność do wysokoprzepustowych przesiewów mutantów i innych stanów upośledzających lot.
Pomysł na tę metodę pojawił się, gdy zdaliśmy sobie sprawę, jak dużo czasu zajmuje testowanie dużej liczby genotypów przy użyciu pierwotnego testera lotu. Przymocuj cylinder do lotu do statywu pierścieniowego za pomocą zacisków łańcuchowych. Pozostaw około trzech centymetrów wolnej przestrzeni pod cylindrem na szalkę wagową.
Napełnij płytkę do ważenia cienką warstwą oleju mineralnego i wsuń ją pod cylinder lotniczy. Przymocuj lejek do drugiego statywu. Dostosuj wysokość lejka tak, aby jego dno znajdowało się na poziomie górnej krawędzi cylindra lotniczego.
Najwęższa część lejka musi być węższa niż fiolka do much. Średnica rurki spustowej powinna być nieco większa niż średnica fiolki do much, aby fiolka mogła swobodnie spadać. Włóż rurkę spustową do górnej części lejka i przymocuj ją za pomocą zacisku laboratoryjnego.
Następnie z arkusza poliakryloamidu wytnij prostokątny fragment o długości równej długości cylindra lotniczego i szerokości nieco mniejszej niż obwód wewnętrzny cylindra lotniczego. Na arkusz nałóż cienką warstwę kleju tangle trap, pozostawiając niepowlekany margines u góry i u dołu, aby móc utrzymać arkusz. Po wyschnięciu kleju na arkuszu przez godzinę, wsuń go do cylindra lotniczego stroną z klejem do wewnątrz.
Następnie zmontuj szynę kamery, używając sosnowych wsporników. Upewnij się, że spód szyny utrzymuje kamerę w taki sposób, aby nie zasłaniać obiektywu. Następnie przykręć ograniczniki w miejscach, w których nie będą one przerywać widoku kamery na arkusz plastiku.
Przygotuj fiolki z muchami do badania, dbając, aby w każdej fiolce znajdowało się nie więcej niż 20 much. Delikatnie ostukaj fiolki, aby muchy opadły na dno. Wyjmij korek z fiolki i umieść ją w rurce do dozowania.
Zwolnij fiolkę. Gdy fiolka uderzy o ścianki zwężającego się lejka, muchy zostaną wyrzucone do cylindra lotniczego. Podnieś rurkę spustową, aby usunąć pustą fiolkę i, jeśli jest to konieczne, załadować więcej much.
Do 200 much z 10 fiolek można łatwo przetestować i obrazować na jednej płycie z poliakryloamidu. Teraz należy zdjąć plastikową płytę i umieścić ją na płaskiej, białej powierzchni; jeśli blaty robocze są ciemne, można użyć białego brystolu. Nad plastikową płytą należy zamontować prowadnicę kamery.
Kamera powinna znajdować się na dostatecznej wysokości nad arkuszem, aby zarówno jego górna, jak i dolna krawędź znajdowały się w polu widzenia. Przesuwaj kamerę wzdłuż prowadnicy, trzymając przycisk przechwytywania obrazu, aby uzyskać zdjęcie panoramiczne. Liczbę much, które wpadły do oleju w naczyniu pod komorą lotu, można policzyć ręcznie.
Przed każdą kolejną próbą muchy można usunąć z arkusza, a sam arkusz można wykorzystać ponownie. Otwórz pliki obrazów w oprogramowaniu ImageJ i w razie potrzeby przytnij obrazy tak, aby obejmowały wyłącznie powierzchnię lądowania. Obszar pokryty pułapką entangle.
Konwertuj obrazy na ośmiobitową skalę szarości i utwórz próg (threshold), aby odfiltrować białe tło. Ustaw parametry w celu zidentyfikowania każdej muchy.
W menu analizy cząstek (analyze particles) należy zdefiniować parametry. Służą one do identyfikacji cząstki przy użyciu zestawu demonstracyjnego. Przedział pola powierzchni od 5 do 90 pikseli kwadratowych oraz kołowość od 0,4 do 1,0 pozwolą na dokładną identyfikację wszystkich próbek.
Następnie należy zmierzyć położenie każdej muchy, korzystając z wygenerowanej listy współrzędnych dla każdej cząstki. Współrzędną X podaną w pikselach można przeliczyć na centymetry. Aby obliczyć wysokość lądowania, należy zaimportować tabelę do arkusza kalkulacyjnego i przystąpić do analizy.
Wydajność lotu much mutantów slow poke, u których stwierdzono defekt lotu, porównano z muchami typu dzikiego canton s. Wszystkie muchy miały trzy dni i były hodowane w temperaturze pokojowej; muchy kontrolne konsekwentnie lądowały w pobliżu górnej części cylindra. Rozproszenie miejsca lądowania było znacznie większe w przypadku mutantów slow poke.
Średnia wysokość lądowania dla much typu canton wynosząca 73 centymetrów była znacząco większa niż w przypadku mutantów slow poke, która wynosiła 44 centymetrów. Po przeprowadzeniu tej procedury można zastosować dodatkowe metody, takie jak histologia, aby odpowiedzieć na kolejne pytania dotyczące integralności strukturalnej mięśni lotnych, neuronów ruchowych lub złączy nerwowo-mięśniowych. Po obejrzeniu tego filmu powinni Państwo mieć dobrą wiedzę na temat tego, jak szybko ocenić zdolności lotne u oph.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy artykuł opisuje metodę szybkiego i dokładnego pomiaru wydajności lotu u Drosophila, co ułatwia wysokoprzepustowe przesiewanie. Procedura polega na wrzucaniu much do cylindra lotniczego, przechwytywaniu obrazów powierzchni lądowania i analizie danych w celu pomiaru wysokości lądowania.
Ilościowy pomiar zdolności lotnych Drosophila umożliwia wysokoprzepustowy screening genetyczny i fenotypowy, wspierając wczesną walidację celów oraz ograniczanie ryzyka mechanistycznego w badaniach nad neurobiologią i starzeniem. Udoskonalony schemat postępowania standaryzuje testy behawioralne, zwiększając pewność predykcyjną dla późniejszych badań funkcjonalnych i selekcji portfolio. Możliwość ta przyspiesza identyfikację modyfikatorów genetycznych i fenotypów istotnych dla chorób w preklinicznych systemach modelowych.
Metoda ta integruje proces odkryć – od wczesnego screeningu genetycznego po walidację w modelach przedklinicznych – zapewniając zestandaryzowany test behawioralny dla badań z zakresu genomiki funkcjonalnej i neurobiologii.