-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Medicine
Wzdęcie pęcherza moczowego wywołało reakcje trzewnomotoryczne jako model bólu pęcherza moczowego ...
Wzdęcie pęcherza moczowego wywołało reakcje trzewnomotoryczne jako model bólu pęcherza moczowego ...
JoVE Journal
Medicine
Author Produced
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Medicine
Urinary Bladder Distention Evoked Visceromotor Responses as a Model for Bladder Pain in Mice

Wzdęcie pęcherza moczowego wywołało reakcje trzewnomotoryczne jako model bólu pęcherza moczowego u myszy

Full Text
18,379 Views
11:46 min
April 27, 2014

DOI: 10.3791/51413-v

Katelyn E. Sadler1, Jarred M. Stratton1, Benedict J. Kolber1

1Department of Biological Sciences and Chronic Pain Research Consortium,Duquesne University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Około 3-8 milionów ludzi w Stanach Zjednoczonych cierpi na śródmiąższowe zapalenie pęcherza moczowego/zespół bólu pęcherza moczowego (IC/BPS), wyniszczający stan charakteryzujący się częściowo bólem miednicy. W celu zbadania udziału układu nerwowego w tym stanie, stosuje się fizjologiczny model bólu pęcherza moczowego u myszy i szczurów.

Ogólnym celem tej procedury jest ustalenie fizjologicznego modelu szkodliwego bólu pęcherza moczowego i myszy podczas całej procedury. Temperatura ciała jest utrzymywana za pomocą poduszki grzewczej i promiennika górnego. Pierwszym krokiem w operacji jest wprowadzenie cewnika do cewki moczowej znieczulonej myszy.

Drugim krokiem jest wykonanie nacięcia w celu odsłonięcia lewego mięśnia brzucha. Trzecim krokiem jest ugryzienie mięśni za pomocą igły o rozmiarze 21. Następnie do igły wprowadzana jest wygięta elektroda z drutu srebrnego.

Igła jest następnie przeciągana z powrotem przez mięsień, pozostawiając drut w mięśniu. Proces ten powtarza się dla drugiej elektrody z drutu srebrnego. Czwartym krokiem jest umieszczenie przewodu uziemiającego w klatce piersiowej myszy.

Piątym krokiem teraz, gdy operacja została zakończona, jest rozciągnięcie pęcherza moczowego i zarejestrowanie odpowiedzi EMG. Odbywa się to poprzez najpierw podłączenie trzech elektrod ze srebrnego drutu do wzmacniacza i digitizera, aby zarejestrować reakcję motoryczną wnętrzności lub VMR. Następnie cewnik pęcherza moczowego jest podłączony do regulatora ciśnienia czasu i zbiornika powietrza, aby dostarczyć określone bodźce, które rozszerzają pęcherz przy różnym ciśnieniu przy 15 milimetrach słupa rtęci.

Nie jest rejestrowany VMR. Jednak przy 30, 45 i 60 milimetrach słupa rtęci VMR wzrasta wraz ze wzrostem ciśnienia. Na wykresie można zobaczyć stopniowany stopniowy wzrost znormalizowanego VMR wraz ze wzrostem ciśnienia.

Ta procedura może pomóc w zrozumieniu bólu trzewnego pęcherza. W szczególności, korzystając z modelu wzdęcia pęcherza moczowego, można zbadać cały układ nerwowy w kontekście szkodliwej stymulacji trzewnej. Obejmuje to rejestrowanie i badanie samych nerwów obwodowych, neuronów wtórnych w rdzeniu kręgowym oraz wyższych neuronów w pniu mózgu i mózgu.

Ponadto w tym fizjologicznym modelu bólu pęcherza moczowego można testować nowatorskie terapie stosowane w leczeniu bólu pęcherza moczowego. Wywołaj stan znieczulający, umieszczając mysz w komorze indukcyjnej o zawartości od dwóch do 3% fluoru. Wyjmij mysz z komory indukcyjnej po tym, jak utraci ona odruch pisania.

Umieść mysz w stożku nosowym o zawartości od dwóch do 2,5% fluoru. Następnie odwróć mysz tak, aby jej grzbietowa strona była skierowana w dół. Po odwróceniu przetestuj głębokość znieczulenia, ściskając palec u nogi kleszczami.

Nie powinno być żadnej reakcji ze strony zwierzęcia. Następnie delikatnie przytrzymaj otwór cewki moczowej prostopadle do ciała myszy za pomocą kleszczy i włóż końcówkę cewnika do cewki moczowej. Opuść cewnik tak, aby był równoległy do ciała myszy i delikatnie włóż cewnik do ciała myszy.

Delikatnie dociśnij brzuch, aby usunąć mocz z pęcherza. Znoksić to kawałkiem ręcznika papierowego. Nałóż alkohol na brzuch, aby zdezynfekować obszar.

Wykonaj jedno- lub dwucentymetrowe nacięcie w wysterylizowanym obszarze, aby odsłonić lewy mięsień brzucha. Użyj nożyczek, aby rozprowadzić skórę i poluzować powięź, tak aby odsłonięty był górny skośny mięsień brzucha. Na tym zdjęciu mięsień brzucha znajduje się w pobliżu górnej części otworu chirurgicznego, a mięsień ucha znajduje się na dole.

Użyj igły o rozmiarze 21, aby wziąć mały kęs mięśni. Wbić igłę przez mięsień. Ważne jest, aby podczas tego procesu unikać jakichkolwiek naczyń krwionośnych.

Następnie wsuń jeden koniec srebrnego drutu do igły. Przeciągnij igłę z powrotem przez mięsień, aby wciągnąć srebrny drut do mięśnia, drut powinien być równo z ugryzieniem mięśnia. Powtórz ten proces.

Wszczep drugi srebrny drut, około 0,5 centymetra od pierwszego drutu. Następnie wszczep trzeci srebrny drut do klatki piersiowej. Ten drut działa jak uziemienie.

Nałóż ciepły olej mineralny na odsłonięte mięśnie brzucha, aby były wilgotne. Ustaw mysz tak, aby leżała na boku w bardzo wygodnej pozycji. Następnie połącz zaciski elektrod z elektrodami z drutu srebrnego.

Ustaw trzy zaciski tak, aby przewody się nie stykały. Obniż znieczulenie do 1,5%Po zakończeniu operacji. Następnie obniżaj poziom znieczulenia o 0,125% co 15 minut, aż mysz wykaże reakcję zgięcia palca

.

Szczypanie bez wokalizacji i poruszania się. Podłącz cewnik pęcherza moczowego do przewodu przewodzącego powietrze, który jest podłączony do regulatora ciśnienia czasu. Służy do kontrolowania długości interwału ciśnienia wstępnego, próby rozprężenia ciśnienia i interwału między próbami po ciśnieniu.

Wykonaj rozciągnięcie przy 60 milimetrach słupa rtęci, aby przetestować reakcję myszy na rozciągnięcie. Powinien być widoczny silny sygnał EMG przekraczający 0,5 wolta. Jeśli tak się stanie, wykonaj jeszcze dwa rozciągnięcia, aby potwierdzić odpowiedź.

Jeśli nie zaobserwuje się odpowiedniej reakcji, należy obniżyć poziom izofluoru. Jeśli mysz zacznie wokalizować lub chodzić w kierunku chodzenia podczas próby wzdęcia, należy podnieść poziom fluoru Isof. W obecnym przykładzie można zaobserwować silną odpowiedź EMG.

Byłoby to uważane za dobrą odpowiedź bimo na wzdęcie pęcherza i nie byłaby konieczna zmiana poziomu fluoru Isof. Wiele badań wykorzystuje stopniowane rozdęcia, które zaczynają się przy niskich ciśnieniach, takich jak 15 milimetrów słupa rtęci i przechodzą do bardziej szkodliwych ciśnień. Teraz dane zostały zebrane.

Musi być przetwarzany i analizowany. Pierwszym krokiem jest skorygowanie całego zestawu danych poprzez przyjęcie wartości bezwzględnej każdego punktu. Najłatwiej jest to osiągnąć za pomocą oprogramowania do analizy danych, ale można to również zrobić ręcznie.

Teraz, gdy masz już poprawione dane, określ średnią odpowiedź EMG podczas części eksperymentu w tle. Odejmij tę odpowiedź EMG tła od każdego punktu danych w eksperymencie, aby uzyskać zestaw danych skorygowanych w tle. Następnie określ obszar pod krzywą dla przedziału ciśnienia wstępnego, a następnie obszar pod krzywą dla próby rozciągania ciśnienia.

Proces ten jest powtarzany dla wszystkich interwałów ciśnienia wstępnego i prób rozdęcia ciśnienia. Oto zrzut ekranu z zestawu analizowanych danych. Wykresy są ułożone w kolejności od góry do dołu, surowe EMG, ciśnienie zarejestrowane przez przetwornik ciśnienia, sygnał bodźca i wreszcie obszar pod wykresem krzywej.

W tym przykładzie, aby określić nieznormalizowany VMR dla pierwszej próby rozdęcia ciśnienia, należy po prostu odjąć obliczony obszar pod krzywą na początku próby od obszaru pod krzywą na końcu próby. Na koniec każdy obszar próby rozdęcia ciśnienia pod krzywą jest normalizowany do najniższej zmierzonej próby przed interwałem ciśnienia. Odbywa się to poprzez podzielenie każdej próby rozdęcia ciśnienia przez próbę najniższego interwału ciśnienia przed uzyskaniem przez sekundy znormalizowanego VMR w woltach.

Oto wykres przedstawiający znormalizowany VMR dla pojedynczego zestawu rozdęć w zakresie od 15 do 75 milimetrów słupa rtęci. Można zaobserwować stopniowany wzrost VMR na osi Y wraz ze wzrostem nacisków na oś x. Co więcej, w trzech zestawach stopniowanych rozciągnięć w zakresie od 15 do 75 milimetrów słupa rtęci widać, że ogólny VMR z tej myszy jest spójny między seriami.

Stabilność tej techniki pozwala na wykonywanie manipulacji, które mogą trwać wiele godzin. Na koniec zilustrowano znaczenie starannego monitorowania temperatury ciała podczas procedury VMR rozdęcia pęcherza. Oto zestaw danych pokazujących, że spadek temperatury ciała z 37,5 do 33,5 stopni Celsjusza prowadzi do znacznego spadku VMR do 60 milimetrów rozdęcia pęcherza rtęciowego.

Po obejrzeniu tego filmu powinieneś mieć dobre pojęcie o tym, jak chirurgicznie wszczepić elektrody druciane i cewnik do pęcherza moczowego do użytku z modelem rozdęcia pęcherza moczowego bólu trzewnego. Powinieneś również lepiej zrozumieć, w jaki sposób analizowane są dane generowane przez ten test. Dziękujemy za oglądanie i życzymy powodzenia w eksperymentach.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Słowa kluczowe: wzdęcie pęcherza moczowego reakcja trzewnoruchowa śródmiąższowe zapalenie pęcherza moczowego zespół bólu pęcherza moczowego nocycepcja model mysim pierwotne neurony czuciowe aferenty rdzenia kręgowego ośrodkowy układ nerwowy

Related Videos

Zastosowanie cystometrii u małych gryzoni: badanie chemosensacji pęcherza moczowego

08:08

Zastosowanie cystometrii u małych gryzoni: badanie chemosensacji pęcherza moczowego

Related Videos

23.8K Views

Ocena biomateriałów do augmentacji pęcherza moczowego z wykorzystaniem analiz cystometrycznych w różnych modelach gryzoni

10:19

Ocena biomateriałów do augmentacji pęcherza moczowego z wykorzystaniem analiz cystometrycznych w różnych modelach gryzoni

Related Videos

19.9K Views

Pomiar dotykowej allodynii w mysim modelu bakteryjnego zapalenia gruczołu krokowego

06:46

Pomiar dotykowej allodynii w mysim modelu bakteryjnego zapalenia gruczołu krokowego

Related Videos

16.5K Views

Ocena wrażliwości okołopłciowej i aktywacji komórek tucznych gruczołu krokowego w mysim modelu separacji noworodków od matek

09:49

Ocena wrażliwości okołopłciowej i aktywacji komórek tucznych gruczołu krokowego w mysim modelu separacji noworodków od matek

Related Videos

9.8K Views

Ocena procedury wykonywania cystometrii w stanie czuwania w modelu mysim

09:31

Ocena procedury wykonywania cystometrii w stanie czuwania w modelu mysim

Related Videos

13.4K Views

Procedura wkraplania przezcewkowego u dorosłego samca myszy

04:01

Procedura wkraplania przezcewkowego u dorosłego samca myszy

Related Videos

17.3K Views

Zdecentralizowany (ex vivo) mysi model pęcherza moczowego z usuniętym mięśniem wypierającym w celu uzyskania bezpośredniego dostępu do błony dróg moczowych podczas napełniania pęcherza

06:36

Zdecentralizowany (ex vivo) mysi model pęcherza moczowego z usuniętym mięśniem wypierającym w celu uzyskania bezpośredniego dostępu do błony dróg moczowych podczas napełniania pęcherza

Related Videos

7.6K Views

Model bólu pleców myszy wywołany aktywatorem plazminogenu typu urokinazy

06:20

Model bólu pleców myszy wywołany aktywatorem plazminogenu typu urokinazy

Related Videos

1.7K Views

In vivo (in vivo) Pomiar luminalny wywołanego rozdęciem urotelialnego uwalniania ATP u gryzoni

09:17

In vivo (in vivo) Pomiar luminalny wywołanego rozdęciem urotelialnego uwalniania ATP u gryzoni

Related Videos

1.9K Views

Test pustej przestrzeni w czasie rzeczywistym

06:39

Test pustej przestrzeni w czasie rzeczywistym

Related Videos

2.7K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code