RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Mimo że ludzki genom został zmapowany ponad 10 lat temu, naukowcy wciąż są dalecy od zrozumienia funkcji każdego ludzkiego genu! Jednym ze sposobów oceny funkcjonowania genu jest przerwanie kodującej go sekwencji, a następnie ocena wpływu tej zmiany (fenotypu) na biologię zwierzęcia. Podejście to jest powszechnie stosowane u myszy (Mus musculus), ponieważ wykazuje ona wysoki stopień podobieństwa genetycznego z ludźmi. Aby śledzić zwierzęta, u których zachodzą zmiany genetyczne przez kilka pokoleń, konieczne jest badanie przesiewowe DNA każdej myszy w procesie znanym jako genotypowanie.
Ten film zawiera przegląd teorii i praktyki stojącej za genotypowaniem myszy. Dyskusja rozpoczyna się od podstawowych zasad genetyki myszy, w tym przeglądu terminów homozygota, heterozygota, wildtype, mutant i transgeniczny. Następnie dostarczane są instrukcje krok po kroku dotyczące ekstrakcji i oczyszczania genomowego DNA z tkanki myszy. Podano przykłady pokazujące, jak interpretować wyniki genotypowania, a także jak śledzić myszy o pożądanym genotypie. Na koniec zostaną przedstawione niektóre reprezentatywne zastosowania procedury genotypowania, aby pokazać, dlaczego ta powszechna technika jest tak istotna w badaniach na myszach.
Genotypowanie to proces wykrywania obecności lub braku określonych sekwencji DNA w genomie danego organizmu.
Ponieważ geny mogą wpływać na fenotyp myszy, możliwość zbadania składu genetycznego danej myszy lub "genotypu" ma kluczowe znaczenie dla przypisania fenotypu do określonego genu. W tym filmie przyjrzymy się genetyce myszy, zademonstrujemy kluczowe etapy procedury genotypowania i wyjaśnimy, jak interpretować wyniki genotypowania opartego na PCR.
Aby zrozumieć, czego szukają naukowcy, gdy genotypowują myszy, przyjrzyjmy się kilku typowym manipulacjom genetyki myszy.
Aby zbadać gen, naukowcy często zakłócają jego funkcję, zmieniając jego sekwencję genetyczną. Jednak myszy są diploidalne, więc mają dwie kopie dowolnego genu. Ponieważ większość genów potrzebuje tylko jednej normalnej kopii do funkcjonowania, myszy muszą być hodowane, aby wyprodukować zwierzę z zaburzonymi obydwoma genami przed badaniem fenotypu.
Ten genotyp nazywany jest "homozygotycznym nokautem" lub częściej po prostu "nokautem" w skrócie. I odwrotnie, normalna mysz z dwiema funkcjonalnymi kopiami nazywana jest "homozygotycznym typem dzikim" lub po prostu "typem dzikim". Wreszcie, myszy z tylko jedną funkcjonalną kopią są określane jako "heterozygotyczne" lub "hets".
Zamiast usuwać materiał genetyczny, niektóre eksperymenty wymagają wprowadzenia sekwencji DNA do genomu myszy. Te wstawione fragmenty DNA nazywane są "transgenami", a myszy, które je noszą, są "transgeniczne". Najczęstszym "transgenem" wprowadzanym do myszy jest ten, który napędza ekspresję białka zielonej fluorescencji lub GFP z meduz. Dzięki zastosowaniu specyficznego tkankowo promotora (sekwencji regulatorowej, która "promuje" aktywność genu) do napędzania produkcji GFP, komórki z określonego typu tkanki można łatwo zidentyfikować za pomocą zielonej fluorescencji.
Ponieważ wiele zmian genetycznych nie prowadzi do łatwo obserwowalnego fenotypu, takiego jak ekspresja GFP, myszy muszą być genotypowane, aby określić, które konkretne zwierzę powinno być wykorzystane w eksperymentach. Przed genotypowaniem myszy powinny być starannie oznakowane, aby można je było później ponownie zidentyfikować. Nie, będziesz potrzebować czegoś bardziej trwałego. Jedną z powszechnych metod jest wykonanie nacięć w uchu, tak aby pozycja i liczba nacięć odpowiadały numerowi identyfikacyjnemu.
Po oznaczeniu myszy zbierz mały kawałek tkanki (zwykle 2-5 mm ogona, używając żyletki lub nożyczek), z którego chcesz wyekstrahować DNA. Jeśli pobierasz tkankę od więcej niż jednej myszy, zaznacz używane segmenty ostrza, aby upewnić się, że nie użyjesz tej samej części na następnym zwierzęciu, co może prowadzić do zanieczyszczenia krzyżowego próbek.
Aby rozpocząć proces oddzielania materiału genetycznego od innych składników tkanki, próbka jest trawiona w buforze do lizy zawierającym enzym proteinazę K. Po całonocnym trawieniu próbka jest odwirowywana w celu osadzenia włosów i innego niestrawionego materiału. Aby wyizolować DNA z strawionego lizatu, prostą i skuteczną metodą jest dodanie alkoholu w celu wytrącenia kwasów nukleinowych. Po krótkiej inkubacji próbka jest ponownie odwirowywana w celu zebrania DNA w postaci osadu.
Po umyciu 70% etanolem w celu usunięcia nadmiaru soli, osad DNA jest ponownie zawieszany w wodzie lub buforze i jest gotowy do genotypowania.
Istnieje wiele strategii określania, czy określona sekwencja DNA jest obecna u twoich myszy. Większość z nich wymaga uprzedniego amplifikacji interesującego regionu genetycznego za pomocą reakcji łańcuchowej polimerazy lub PCR. Aby uzyskać więcej informacji na temat konfiguracji PCR, zapoznaj się z "Przewodnikiem po PCR" JoVE Science Education.
Jedną z metod rozróżniania genotypów jest wykrywanie zmian w wielkości fragmentu amplifikowanego PCR. Załóżmy, że przeprowadzasz badania przesiewowe myszy z insercją genetyczną 700 par zasad. Po PCR prążki typu dzikiego mają 200 par zasad, a prążki transgenowe powinny mieć 900 par zasad.
Po przeprowadzeniu PCR oddziel produkty reakcji na odpowiednim procentowym żelu agarozowym, aby można było rozróżnić rozmiary swoich fragmentów. Kontrolka typu dzikiego powinna mieć tylko pasmo 200 par zasad typu dzikiego; Kontrola transgeniczna powinna mieć tylko jedną 900 parę zasad, pasmo transgenu; a het control powinien mieć oba pasma. Na koniec dołączona jest kontrola "bez matrycy", aby upewnić się, że odczynniki nie zawierają żadnego zanieczyszczającego DNA, a zatem nie powinny generować żadnych prążków.
Teraz, gdy mamy pewność, że kontrolki działały zgodnie z oczekiwaniami, sprawdźmy nieznane myszy. Ponieważ myszy 1 i 2 mają tylko jeden prążek typu dzikiego, są homozygotyczne typu dzikiego. Myszy 4 i 6 mają tylko jedną prążek transgenową, a zatem są homozygotyczne transgeniczne.
A myszy 3 i 5 mają po dwa pasma, a zatem są hetami.
Wreszcie, kiedy wrócisz, aby znaleźć myszy o pożądanym genotypie, wystarczy dopasować wzór nacięć w uszach do numeru identyfikacyjnego myszy.
Po zrozumieniu, czym jest genotypowanie i jak się je odbywa, przyjrzyjmy się kilku przykładom, dlaczego jest ono przydatne.
W niektórych przypadkach do wytworzenia pożądanego fenotypu wymagane są bardziej złożone modyfikacje genetyczne. Na przykład, aby ustalić ten model raka skóry u myszy, potrzebne są dwa transgeny. Jeden z nich jest nośnikiem indukowalnego "onkogenu" lub genu, który może powodować raka, a drugi przenosi enzym rekombinazę Cre, który ulega ekspresji tylko w komórkach skóry i wycina sekwencję, która zapobiega transkrypcji onkogenu, umożliwiając w ten sposób ekspresję onkogenu. Aby uzyskać potomstwo z obydwoma transgenami, myszy heterozygotyczne dla każdego z nich są kojarzone. Genotypowanie jest następnie wykorzystywane do identyfikacji pożądanego potomstwa.
Czasami genotypowanie myszy przed eksperymentem może nie być możliwe. Na przykład w tym badaniu częstości akcji serca embrionów nie jest możliwe pobranie tkanki do genotypowania z zarodków bez zakłócania ich zachowania. Dlatego pozycje zarodka w obrębie matki są najpierw starannie oznaczane, a następnie rejestrowane są pomiary ultrasonograficzne. Na koniec pobiera się biopsje ogona w celu określenia wpływu genotypu na częstość akcji serca.
Ten film zademonstrował jedną z metod ekstrakcji DNA, ale istnieje wiele odmian. Na przykład system Direct PCR wymaga mniej niż pięć minut trawienia tkankowego. Dodatkowo, po odwirowaniu niestrawionego materiału, supernatant jest gotowy do PCR, eliminując potrzebę oczyszczania DNA.
Właśnie obejrzałeś przewodnik JoVE na temat genotypowania myszy. W tym filmie omówiliśmy podstawy genetyki myszy, sposób przygotowywania i analizowania próbek DNA myszy, a także kilka praktycznych zastosowań tej techniki. Dzięki za oglądanie!
Genotypowanie to proces wykrywania obecności lub braku określonych sekwencji DNA w genomie danego organizmu.
Ponieważ geny mogą wpływać na fenotyp myszy, będąc w stanie zbadać skład genetyczny pojedynczej myszy lub ?genotyp,? ma kluczowe znaczenie dla przypisania fenotypu określonemu genowi. W tym filmie przyjrzymy się genetyce myszy, zademonstrujemy kluczowe etapy procedury genotypowania i wyjaśnimy, jak interpretować wyniki genotypowania opartego na PCR.
Aby zrozumieć, czego szukają naukowcy podczas genotypowania myszy, przyjrzyjmy się kilku powszechnym manipulacjom genetyki myszy.
Aby zbadać gen, naukowcy często zakłócają jego funkcję, zmieniając jego sekwencję genetyczną. Jednak myszy są diploidalne, więc mają dwie kopie dowolnego genu. Ponieważ większość genów potrzebuje tylko jednej normalnej kopii do funkcjonowania, myszy muszą być hodowane, aby wyprodukować zwierzę z zaburzonymi obydwoma genami przed badaniem fenotypu.
Ten genotyp nazywa się ?homozygotycznym nokautem'. A częściej po prostu ?nokaut? w skrócie. I odwrotnie, normalna mysz z dwiema funkcjonalnymi kopiami nazywana jest ?homozygotycznym typem dzikim. czy po prostu ?wildtype.? Wreszcie, myszy z tylko jedną funkcjonalną kopią są określane jako "heterozygotyczne". lub ?hets.?
Zamiast usuwać materiał genetyczny, niektóre eksperymenty wymagają wprowadzenia sekwencji DNA do genomu myszy. Te wstawione fragmenty DNA nazywane są "transgenami". A myszy, które je noszą, są ?transgeniczne'. Najczęstszy ?transgen? wprowadzony do myszy to taki, który napędza ekspresję białka zielonej fluorescencji lub GFP z meduz. Dzięki zastosowaniu swoistego tkankowo promotora (sekwencji regulatorowej, która "promuje" aktywność genu) do napędzania produkcji GFP, komórki z określonego typu tkanki można łatwo zidentyfikować za pomocą zielonej fluorescencji.
Ponieważ wiele zmian genetycznych nie prowadzi do łatwo obserwowalnego fenotypu, takiego jak ekspresja GFP, myszy muszą być genotypowane, aby określić, które konkretne zwierzę powinno być wykorzystane w eksperymentach. Przed genotypowaniem myszy powinny być starannie oznakowane, aby można je było później ponownie zidentyfikować. Nie, będziesz potrzebować czegoś bardziej trwałego. Jedną z powszechnych metod jest wykonanie nacięć w uchu, tak aby pozycja i liczba nacięć odpowiadały numerowi identyfikacyjnemu.
Po oznaczeniu myszy zbierz mały kawałek tkanki (zwykle 2 ? 5 mm ogona, używając żyletki lub nożyczek), z którego chcesz wyekstrahować DNA. Jeśli pobierasz tkankę od więcej niż jednej myszy, zaznacz używane segmenty ostrza, aby upewnić się, że nie użyjesz tej samej części na następnym zwierzęciu, co może prowadzić do zanieczyszczenia krzyżowego próbek.
Aby rozpocząć proces oddzielania materiału genetycznego od innych składników tkanki, próbka jest trawiona w buforze do lizy zawierającym enzym proteinazę K. Po całonocnym trawieniu próbka jest odwirowywana w celu osadzenia włosów i innego niestrawionego materiału. Aby wyizolować DNA z strawionego lizatu, prostą i skuteczną metodą jest dodanie alkoholu w celu wytrącenia kwasów nukleinowych. Po krótkiej inkubacji próbka jest ponownie odwirowywana w celu zebrania DNA w postaci osadu.
Po umyciu 70% etanolem w celu usunięcia nadmiaru soli, osad DNA jest ponownie zawieszany w wodzie lub buforze i jest gotowy do genotypowania.
Istnieje wiele strategii określania, czy określona sekwencja DNA jest obecna u twoich myszy. Większość z nich wymaga uprzedniego amplifikacji interesującego regionu genetycznego za pomocą reakcji łańcuchowej polimerazy lub PCR. Aby uzyskać więcej informacji na temat tego, jak skonfigurować PCR, zapoznaj się z JoVE Science Education ? Przewodnik po PCR.?
Jedną z metod rozróżniania genotypów jest wykrywanie zmian w wielkości fragmentu amplifikowanego PCR. Załóżmy, że przeprowadzasz badania przesiewowe myszy z insercją genetyczną 700 par zasad. Po PCR prążki typu dzikiego mają 200 par zasad, a prążki transgenowe powinny mieć 900 par zasad.
Po przeprowadzeniu PCR oddziel produkty reakcji na odpowiednim procentowym żelu agarozowym, aby można było rozróżnić rozmiary swoich fragmentów. Kontrolka typu dzikiego powinna mieć tylko pasmo 200 par zasad typu dzikiego; Kontrola transgeniczna powinna mieć tylko jedną 900 parę zasad, pasmo transgenu; a het control powinien mieć oba pasma. Na koniec ?brak szablonu? kontrola jest dołączona, aby upewnić się, że odczynniki nie zawierają żadnego zanieczyszczającego DNA, a zatem nie powinny generować żadnych prążków.
Teraz, gdy mamy pewność, że kontrolki działały zgodnie z oczekiwaniami, sprawdźmy nieznane myszy. Ponieważ myszy 1 i 2 mają tylko jeden prążek typu dzikiego, są homozygotyczne typu dzikiego. Myszy 4 i 6 mają tylko jedną prążek transgenową, a zatem są homozygotyczne transgeniczne.
A myszy 3 i 5 mają po dwa pasma, a zatem są hetami.
Wreszcie, kiedy wrócisz, aby znaleźć myszy o pożądanym genotypie, wystarczy dopasować wzór nacięć w uszach do numeru identyfikacyjnego myszy.
Po zrozumieniu, czym jest genotypowanie i jak się je wykonuje, przyjrzyjmy się kilku przykładom, dlaczego jest ono przydatne.
W niektórych przypadkach do wytworzenia pożądanego fenotypu wymagane są bardziej złożone modyfikacje genetyczne. Na przykład, aby ustalić ten model raka skóry u myszy, potrzebne są dwa transgeny. Jeden jest nosicielem indukowalnego ?onkogenu,? lub gen, który może powodować raka, a drugi przenosi enzym rekombinazę Cre, który ulega ekspresji tylko w komórkach skóry i wycina sekwencję, która zapobiega transkrypcji onkogenu, umożliwiając w ten sposób ekspresję onkogenu. Aby uzyskać potomstwo z obydwoma transgenami, myszy heterozygotyczne dla każdego z nich są kojarzone. Genotypowanie jest następnie wykorzystywane do identyfikacji pożądanego potomstwa.
Czasami genotypowanie myszy przed eksperymentem może nie być możliwe. Na przykład w tym badaniu częstości akcji serca embrionów nie jest możliwe pobranie tkanki do genotypowania z zarodków bez zakłócania ich zachowania. Dlatego pozycje zarodka w obrębie matki są najpierw starannie oznaczane, a następnie rejestrowane są pomiary ultrasonograficzne. Na koniec pobiera się biopsje ogona w celu określenia wpływu genotypu na częstość akcji serca.
Ten film zademonstrował jedną z metod ekstrakcji DNA, ale istnieje wiele odmian. Na przykład system Direct PCR wymaga mniej niż pięć minut trawienia tkankowego. Dodatkowo, po odwirowaniu niestrawionego materiału, supernatant jest gotowy do PCR, eliminując potrzebę oczyszczania DNA.
Właśnie obejrzałeś przewodnik JoVE na temat genotypowania myszy. W tym filmie omówiliśmy podstawy genetyki myszy, sposób przygotowywania i analizowania próbek DNA myszy, a także niektóre praktyczne zastosowania tej techniki. Dzięki za oglądanie!
Related Videos
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
101.7K Wyświetlenia
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
70.2K Wyświetlenia
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
84.0K Wyświetlenia
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
47.7K Wyświetlenia
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
14.8K Wyświetlenia
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
26.0K Wyświetlenia
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
62.8K Wyświetlenia
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
93.5K Wyświetlenia
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
106.9K Wyświetlenia
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
25.9K Wyświetlenia
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
59.8K Wyświetlenia
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
43.4K Wyświetlenia
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
19.4K Wyświetlenia
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
56.4K Wyświetlenia