-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Science Education
Basic Biology
Genotypowanie myszy
Genotypowanie myszy
JoVE Science Education
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Science Education Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
Mouse Genotyping

4.10: Genotypowanie myszy

91,466 Views
08:27 min
April 30, 2023
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

Mimo że ludzki genom został zmapowany ponad 10 lat temu, naukowcy wciąż są dalecy od zrozumienia funkcji każdego ludzkiego genu! Jednym ze sposobów oceny funkcjonowania genu jest przerwanie kodującej go sekwencji, a następnie ocena wpływu tej zmiany (fenotypu) na biologię zwierzęcia. Podejście to jest powszechnie stosowane u myszy (Mus musculus), ponieważ wykazuje ona wysoki stopień podobieństwa genetycznego z ludźmi. Aby śledzić zwierzęta, u których zachodzą zmiany genetyczne przez kilka pokoleń, konieczne jest badanie przesiewowe DNA każdej myszy w procesie znanym jako genotypowanie.

Ten film zawiera przegląd teorii i praktyki stojącej za genotypowaniem myszy. Dyskusja rozpoczyna się od podstawowych zasad genetyki myszy, w tym przeglądu terminów homozygota, heterozygota, wildtype, mutant i transgeniczny. Następnie dostarczane są instrukcje krok po kroku dotyczące ekstrakcji i oczyszczania genomowego DNA z tkanki myszy. Podano przykłady pokazujące, jak interpretować wyniki genotypowania, a także jak śledzić myszy o pożądanym genotypie. Na koniec zostaną przedstawione niektóre reprezentatywne zastosowania procedury genotypowania, aby pokazać, dlaczego ta powszechna technika jest tak istotna w badaniach na myszach.

Procedure

Genotypowanie to proces wykrywania obecności lub braku określonych sekwencji DNA w genomie danego organizmu.

Ponieważ geny mogą wpływać na fenotyp myszy, możliwość zbadania składu genetycznego danej myszy lub "genotypu" ma kluczowe znaczenie dla przypisania fenotypu do określonego genu. W tym filmie przyjrzymy się genetyce myszy, zademonstrujemy kluczowe etapy procedury genotypowania i wyjaśnimy, jak interpretować wyniki genotypowania opartego na PCR.

Aby zrozumieć, czego szukają naukowcy, gdy genotypowują myszy, przyjrzyjmy się kilku typowym manipulacjom genetyki myszy.

Aby zbadać gen, naukowcy często zakłócają jego funkcję, zmieniając jego sekwencję genetyczną. Jednak myszy są diploidalne, więc mają dwie kopie dowolnego genu. Ponieważ większość genów potrzebuje tylko jednej normalnej kopii do funkcjonowania, myszy muszą być hodowane, aby wyprodukować zwierzę z zaburzonymi obydwoma genami przed badaniem fenotypu.

Ten genotyp nazywany jest "homozygotycznym nokautem" lub częściej po prostu "nokautem" w skrócie. I odwrotnie, normalna mysz z dwiema funkcjonalnymi kopiami nazywana jest "homozygotycznym typem dzikim" lub po prostu "typem dzikim". Wreszcie, myszy z tylko jedną funkcjonalną kopią są określane jako "heterozygotyczne" lub "hets".

Zamiast usuwać materiał genetyczny, niektóre eksperymenty wymagają wprowadzenia sekwencji DNA do genomu myszy. Te wstawione fragmenty DNA nazywane są "transgenami", a myszy, które je noszą, są "transgeniczne". Najczęstszym "transgenem" wprowadzanym do myszy jest ten, który napędza ekspresję białka zielonej fluorescencji lub GFP z meduz. Dzięki zastosowaniu specyficznego tkankowo promotora (sekwencji regulatorowej, która "promuje" aktywność genu) do napędzania produkcji GFP, komórki z określonego typu tkanki można łatwo zidentyfikować za pomocą zielonej fluorescencji.

Ponieważ wiele zmian genetycznych nie prowadzi do łatwo obserwowalnego fenotypu, takiego jak ekspresja GFP, myszy muszą być genotypowane, aby określić, które konkretne zwierzę powinno być wykorzystane w eksperymentach. Przed genotypowaniem myszy powinny być starannie oznakowane, aby można je było później ponownie zidentyfikować. Nie, będziesz potrzebować czegoś bardziej trwałego. Jedną z powszechnych metod jest wykonanie nacięć w uchu, tak aby pozycja i liczba nacięć odpowiadały numerowi identyfikacyjnemu.

Po oznaczeniu myszy zbierz mały kawałek tkanki (zwykle 2-5 mm ogona, używając żyletki lub nożyczek), z którego chcesz wyekstrahować DNA. Jeśli pobierasz tkankę od więcej niż jednej myszy, zaznacz używane segmenty ostrza, aby upewnić się, że nie użyjesz tej samej części na następnym zwierzęciu, co może prowadzić do zanieczyszczenia krzyżowego próbek.

Aby rozpocząć proces oddzielania materiału genetycznego od innych składników tkanki, próbka jest trawiona w buforze do lizy zawierającym enzym proteinazę K. Po całonocnym trawieniu próbka jest odwirowywana w celu osadzenia włosów i innego niestrawionego materiału. Aby wyizolować DNA z strawionego lizatu, prostą i skuteczną metodą jest dodanie alkoholu w celu wytrącenia kwasów nukleinowych. Po krótkiej inkubacji próbka jest ponownie odwirowywana w celu zebrania DNA w postaci osadu.

Po umyciu 70% etanolem w celu usunięcia nadmiaru soli, osad DNA jest ponownie zawieszany w wodzie lub buforze i jest gotowy do genotypowania.

Istnieje wiele strategii określania, czy określona sekwencja DNA jest obecna u twoich myszy. Większość z nich wymaga uprzedniego amplifikacji interesującego regionu genetycznego za pomocą reakcji łańcuchowej polimerazy lub PCR. Aby uzyskać więcej informacji na temat konfiguracji PCR, zapoznaj się z "Przewodnikiem po PCR" JoVE Science Education.

Jedną z metod rozróżniania genotypów jest wykrywanie zmian w wielkości fragmentu amplifikowanego PCR. Załóżmy, że przeprowadzasz badania przesiewowe myszy z insercją genetyczną 700 par zasad. Po PCR prążki typu dzikiego mają 200 par zasad, a prążki transgenowe powinny mieć 900 par zasad.

Po przeprowadzeniu PCR oddziel produkty reakcji na odpowiednim procentowym żelu agarozowym, aby można było rozróżnić rozmiary swoich fragmentów. Kontrolka typu dzikiego powinna mieć tylko pasmo 200 par zasad typu dzikiego; Kontrola transgeniczna powinna mieć tylko jedną 900 parę zasad, pasmo transgenu; a het control powinien mieć oba pasma. Na koniec dołączona jest kontrola "bez matrycy", aby upewnić się, że odczynniki nie zawierają żadnego zanieczyszczającego DNA, a zatem nie powinny generować żadnych prążków.

Teraz, gdy mamy pewność, że kontrolki działały zgodnie z oczekiwaniami, sprawdźmy nieznane myszy. Ponieważ myszy 1 i 2 mają tylko jeden prążek typu dzikiego, są homozygotyczne typu dzikiego. Myszy 4 i 6 mają tylko jedną prążek transgenową, a zatem są homozygotyczne transgeniczne.

A myszy 3 i 5 mają po dwa pasma, a zatem są hetami.

Wreszcie, kiedy wrócisz, aby znaleźć myszy o pożądanym genotypie, wystarczy dopasować wzór nacięć w uszach do numeru identyfikacyjnego myszy.

Po zrozumieniu, czym jest genotypowanie i jak się je odbywa, przyjrzyjmy się kilku przykładom, dlaczego jest ono przydatne.

W niektórych przypadkach do wytworzenia pożądanego fenotypu wymagane są bardziej złożone modyfikacje genetyczne. Na przykład, aby ustalić ten model raka skóry u myszy, potrzebne są dwa transgeny. Jeden z nich jest nośnikiem indukowalnego "onkogenu" lub genu, który może powodować raka, a drugi przenosi enzym rekombinazę Cre, który ulega ekspresji tylko w komórkach skóry i wycina sekwencję, która zapobiega transkrypcji onkogenu, umożliwiając w ten sposób ekspresję onkogenu. Aby uzyskać potomstwo z obydwoma transgenami, myszy heterozygotyczne dla każdego z nich są kojarzone. Genotypowanie jest następnie wykorzystywane do identyfikacji pożądanego potomstwa.

Czasami genotypowanie myszy przed eksperymentem może nie być możliwe. Na przykład w tym badaniu częstości akcji serca embrionów nie jest możliwe pobranie tkanki do genotypowania z zarodków bez zakłócania ich zachowania. Dlatego pozycje zarodka w obrębie matki są najpierw starannie oznaczane, a następnie rejestrowane są pomiary ultrasonograficzne. Na koniec pobiera się biopsje ogona w celu określenia wpływu genotypu na częstość akcji serca.

Ten film zademonstrował jedną z metod ekstrakcji DNA, ale istnieje wiele odmian. Na przykład system Direct PCR wymaga mniej niż pięć minut trawienia tkankowego. Dodatkowo, po odwirowaniu niestrawionego materiału, supernatant jest gotowy do PCR, eliminując potrzebę oczyszczania DNA.

Właśnie obejrzałeś przewodnik JoVE na temat genotypowania myszy. W tym filmie omówiliśmy podstawy genetyki myszy, sposób przygotowywania i analizowania próbek DNA myszy, a także kilka praktycznych zastosowań tej techniki. Dzięki za oglądanie!

Transcript

Genotypowanie to proces wykrywania obecności lub braku określonych sekwencji DNA w genomie danego organizmu.

Ponieważ geny mogą wpływać na fenotyp myszy, będąc w stanie zbadać skład genetyczny pojedynczej myszy lub ?genotyp,? ma kluczowe znaczenie dla przypisania fenotypu określonemu genowi. W tym filmie przyjrzymy się genetyce myszy, zademonstrujemy kluczowe etapy procedury genotypowania i wyjaśnimy, jak interpretować wyniki genotypowania opartego na PCR.

Aby zrozumieć, czego szukają naukowcy podczas genotypowania myszy, przyjrzyjmy się kilku powszechnym manipulacjom genetyki myszy.

Aby zbadać gen, naukowcy często zakłócają jego funkcję, zmieniając jego sekwencję genetyczną. Jednak myszy są diploidalne, więc mają dwie kopie dowolnego genu. Ponieważ większość genów potrzebuje tylko jednej normalnej kopii do funkcjonowania, myszy muszą być hodowane, aby wyprodukować zwierzę z zaburzonymi obydwoma genami przed badaniem fenotypu.

Ten genotyp nazywa się ?homozygotycznym nokautem'. A częściej po prostu ?nokaut? w skrócie. I odwrotnie, normalna mysz z dwiema funkcjonalnymi kopiami nazywana jest ?homozygotycznym typem dzikim. czy po prostu ?wildtype.? Wreszcie, myszy z tylko jedną funkcjonalną kopią są określane jako "heterozygotyczne". lub ?hets.?

Zamiast usuwać materiał genetyczny, niektóre eksperymenty wymagają wprowadzenia sekwencji DNA do genomu myszy. Te wstawione fragmenty DNA nazywane są "transgenami". A myszy, które je noszą, są ?transgeniczne'. Najczęstszy ?transgen? wprowadzony do myszy to taki, który napędza ekspresję białka zielonej fluorescencji lub GFP z meduz. Dzięki zastosowaniu swoistego tkankowo promotora (sekwencji regulatorowej, która "promuje" aktywność genu) do napędzania produkcji GFP, komórki z określonego typu tkanki można łatwo zidentyfikować za pomocą zielonej fluorescencji.

Ponieważ wiele zmian genetycznych nie prowadzi do łatwo obserwowalnego fenotypu, takiego jak ekspresja GFP, myszy muszą być genotypowane, aby określić, które konkretne zwierzę powinno być wykorzystane w eksperymentach. Przed genotypowaniem myszy powinny być starannie oznakowane, aby można je było później ponownie zidentyfikować. Nie, będziesz potrzebować czegoś bardziej trwałego. Jedną z powszechnych metod jest wykonanie nacięć w uchu, tak aby pozycja i liczba nacięć odpowiadały numerowi identyfikacyjnemu.

Po oznaczeniu myszy zbierz mały kawałek tkanki (zwykle 2 ? 5 mm ogona, używając żyletki lub nożyczek), z którego chcesz wyekstrahować DNA. Jeśli pobierasz tkankę od więcej niż jednej myszy, zaznacz używane segmenty ostrza, aby upewnić się, że nie użyjesz tej samej części na następnym zwierzęciu, co może prowadzić do zanieczyszczenia krzyżowego próbek.

Aby rozpocząć proces oddzielania materiału genetycznego od innych składników tkanki, próbka jest trawiona w buforze do lizy zawierającym enzym proteinazę K. Po całonocnym trawieniu próbka jest odwirowywana w celu osadzenia włosów i innego niestrawionego materiału. Aby wyizolować DNA z strawionego lizatu, prostą i skuteczną metodą jest dodanie alkoholu w celu wytrącenia kwasów nukleinowych. Po krótkiej inkubacji próbka jest ponownie odwirowywana w celu zebrania DNA w postaci osadu.

Po umyciu 70% etanolem w celu usunięcia nadmiaru soli, osad DNA jest ponownie zawieszany w wodzie lub buforze i jest gotowy do genotypowania.

Istnieje wiele strategii określania, czy określona sekwencja DNA jest obecna u twoich myszy. Większość z nich wymaga uprzedniego amplifikacji interesującego regionu genetycznego za pomocą reakcji łańcuchowej polimerazy lub PCR. Aby uzyskać więcej informacji na temat tego, jak skonfigurować PCR, zapoznaj się z JoVE Science Education ? Przewodnik po PCR.?

Jedną z metod rozróżniania genotypów jest wykrywanie zmian w wielkości fragmentu amplifikowanego PCR. Załóżmy, że przeprowadzasz badania przesiewowe myszy z insercją genetyczną 700 par zasad. Po PCR prążki typu dzikiego mają 200 par zasad, a prążki transgenowe powinny mieć 900 par zasad.

Po przeprowadzeniu PCR oddziel produkty reakcji na odpowiednim procentowym żelu agarozowym, aby można było rozróżnić rozmiary swoich fragmentów. Kontrolka typu dzikiego powinna mieć tylko pasmo 200 par zasad typu dzikiego; Kontrola transgeniczna powinna mieć tylko jedną 900 parę zasad, pasmo transgenu; a het control powinien mieć oba pasma. Na koniec ?brak szablonu? kontrola jest dołączona, aby upewnić się, że odczynniki nie zawierają żadnego zanieczyszczającego DNA, a zatem nie powinny generować żadnych prążków.

Teraz, gdy mamy pewność, że kontrolki działały zgodnie z oczekiwaniami, sprawdźmy nieznane myszy. Ponieważ myszy 1 i 2 mają tylko jeden prążek typu dzikiego, są homozygotyczne typu dzikiego. Myszy 4 i 6 mają tylko jedną prążek transgenową, a zatem są homozygotyczne transgeniczne.

A myszy 3 i 5 mają po dwa pasma, a zatem są hetami.

Wreszcie, kiedy wrócisz, aby znaleźć myszy o pożądanym genotypie, wystarczy dopasować wzór nacięć w uszach do numeru identyfikacyjnego myszy.

Po zrozumieniu, czym jest genotypowanie i jak się je wykonuje, przyjrzyjmy się kilku przykładom, dlaczego jest ono przydatne.

W niektórych przypadkach do wytworzenia pożądanego fenotypu wymagane są bardziej złożone modyfikacje genetyczne. Na przykład, aby ustalić ten model raka skóry u myszy, potrzebne są dwa transgeny. Jeden jest nosicielem indukowalnego ?onkogenu,? lub gen, który może powodować raka, a drugi przenosi enzym rekombinazę Cre, który ulega ekspresji tylko w komórkach skóry i wycina sekwencję, która zapobiega transkrypcji onkogenu, umożliwiając w ten sposób ekspresję onkogenu. Aby uzyskać potomstwo z obydwoma transgenami, myszy heterozygotyczne dla każdego z nich są kojarzone. Genotypowanie jest następnie wykorzystywane do identyfikacji pożądanego potomstwa.

Czasami genotypowanie myszy przed eksperymentem może nie być możliwe. Na przykład w tym badaniu częstości akcji serca embrionów nie jest możliwe pobranie tkanki do genotypowania z zarodków bez zakłócania ich zachowania. Dlatego pozycje zarodka w obrębie matki są najpierw starannie oznaczane, a następnie rejestrowane są pomiary ultrasonograficzne. Na koniec pobiera się biopsje ogona w celu określenia wpływu genotypu na częstość akcji serca.

Ten film zademonstrował jedną z metod ekstrakcji DNA, ale istnieje wiele odmian. Na przykład system Direct PCR wymaga mniej niż pięć minut trawienia tkankowego. Dodatkowo, po odwirowaniu niestrawionego materiału, supernatant jest gotowy do PCR, eliminując potrzebę oczyszczania DNA.

Właśnie obejrzałeś przewodnik JoVE na temat genotypowania myszy. W tym filmie omówiliśmy podstawy genetyki myszy, sposób przygotowywania i analizowania próbek DNA myszy, a także niektóre praktyczne zastosowania tej techniki. Dzięki za oglądanie!

Explore More Videos

Genotypowanie myszy sekwencje DNA genotyp fenotyp genotypowanie oparte na PCR genetyka myszy manipulacja genetyczna nokaut homozygotyczny typ dziki heterozygota transgeny myszy transgeniczne

Related Videos

Wprowadzenie do myszy laboratoryjnej: <i>Mus musculus</i>

Wprowadzenie do myszy laboratoryjnej: <i>Mus musculus</i>

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

101.7K Wyświetlenia

Wprowadzenie do pisklęcia: <i>Gallus gallus domesticus</i>

Wprowadzenie do pisklęcia: <i>Gallus gallus domesticus</i>

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

70.2K Wyświetlenia

Wprowadzenie do danio pręgowanego: <i>Danio rerio</i>

Wprowadzenie do danio pręgowanego: <i>Danio rerio</i>

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

84.0K Wyświetlenia

Podstawowa pielęgnacja i konserwacja myszy

Podstawowa pielęgnacja i konserwacja myszy

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

47.7K Wyświetlenia

Podstawowa pielęgnacja i utrzymanie piskląt

Podstawowa pielęgnacja i utrzymanie piskląt

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

14.8K Wyświetlenia

Utrzymanie i hodowla danio pręgowanego

Utrzymanie i hodowla danio pręgowanego

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

26.0K Wyświetlenia

Rozwój i reprodukcja myszy laboratoryjnej

Rozwój i reprodukcja myszy laboratoryjnej

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

62.8K Wyświetlenia

Rozwój pisklęcia

Rozwój pisklęcia

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

93.5K Wyświetlenia

Rozmnażanie i rozwój danio pręgowanego

Rozmnażanie i rozwój danio pręgowanego

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

106.9K Wyświetlenia

<em>In ovo</em> Elektroporacja zarodków kurczaka

<em>In ovo</em> Elektroporacja zarodków kurczaka

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

25.9K Wyświetlenia

Hodowla danio pręgowanego i postępowanie z zarodkami

Hodowla danio pręgowanego i postępowanie z zarodkami

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

59.8K Wyświetlenia

Wprowadzanie czynników eksperymentalnych do myszy

Wprowadzanie czynników eksperymentalnych do myszy

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

43.4K Wyświetlenia

Pisklę <em>ex ovo</em> Kultura

Pisklę <em>ex ovo</em> Kultura

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

19.4K Wyświetlenia

Techniki mikroiniekcji danio pręgowanego

Techniki mikroiniekcji danio pręgowanego

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

56.4K Wyświetlenia

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code