-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Medicine
Obrazowanie spektroskopowe w podczerwieni z transformacją Fouriera (FT-IR) o wysokiej rozdzielczo...
Obrazowanie spektroskopowe w podczerwieni z transformacją Fouriera (FT-IR) o wysokiej rozdzielczo...
JoVE Journal
Medicine
This content is Free Access.
JoVE Journal Medicine
High-definition Fourier Transform Infrared (FT-IR) Spectroscopic Imaging of Human Tissue Sections towards Improving Pathology

Obrazowanie spektroskopowe w podczerwieni z transformacją Fouriera (FT-IR) o wysokiej rozdzielczości skrawków tkanek ludzkich w kierunku poprawy patologii

Full Text
33,572 Views
11:05 min
January 21, 2015

DOI: 10.3791/52332-v

Hari Sreedhar*1, Vishal K. Varma*1, Peter L. Nguyen2, Bennett Davidson3,4, Sanjeev Akkina5, Grace Guzman2, Suman Setty2, Andre Kajdacsy-Balla2, Michael J. Walsh2

1Department of Bioengineering,University of Illinois at Chicago, 2Department of Pathology,University of Illinois at Chicago, 3Department of Biological Sciences,University of Illinois at Chicago, 4Department of Chemistry,University of Illinois at Chicago, 5Department of Nephrology,University of Illinois at Chicago

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Obrazowanie spektroskopowe w podczerwieni z transformacją Fouriera (FT-IR) jest szybkim i bezznacznikowym podejściem do uzyskiwania zestawów danych biochemicznych komórek i tkanek. W tym miejscu pokazujemy, jak uzyskać obrazy FT-IR o wysokiej rozdzielczości skrawków tkanek w celu poprawy diagnostyki choroby.

Transcript

Ogólnym celem tej procedury jest uzyskanie obrazów próbek tkanek w podczerwieni o wysokiej rozdzielczości. Osiąga się to poprzez uprzednie przecięcie próbek tkanek na szkiełka kompatybilne z podczerwienią. Drugim krokiem jest skonfigurowanie aparatu do obrazowania o wysokiej rozdzielczości poprzez zainstalowanie odpowiednich obiektywów.

Następnie pobierane jest tło podłoża i skanowana jest próbka tkanki. Ostatnim krokiem jest użycie odpowiedniego oprogramowania do przetwarzania i wizualizacji danych. Ostatecznie obrazowanie w podczerwieni o wysokiej rozdzielczości służy do wizualizacji i uzyskiwania informacji biochemicznych z tkanek biologicznych w sposób niezakłócający.

Główną przewagą tej techniki nad istniejącymi metodami, takimi jak mikroskopia świetlna, jest to, że nieodłączną biochemię tkanki można badać bez użycia barwników lub sond. Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania dotyczące patologii w tej dziedzinie, takie jak przewidywanie nawrotu nefropatii cukrzycowej i klasyfikacja progresji choroby wątroby poprzez osteogenezę samochodową HEPA. Implikacje tej techniki rozciągają się na diagnostykę i rokowanie choroby, biorąc pod uwagę, że dostarcza ona ogromnych ilości informacji biochemicznych niedostępnych w tradycyjnej histopatologii.

Chociaż ta metoda może być stosowana do diagnozy. Może być również używany do śledzenia zmian w procesie gojenia się ran i identyfikacji kluczowych cech tkanek, takich jak komórki macierzyste w przewodzie pokarmowym i mózgu. Pierwszy przekrój formalnego i utrwalonego bloku tkanki zatopionej w parafinie o grubości czterech mikrometrów na szkiełku kompatybilnym z IR za pomocą mikrotomu.

Podążając za tym. Oczyść mikroskop i spektrometr FTIR suchym powietrzem w celu usunięcia wody atmosferycznej z systemu. Następnie schłodzić zarówno detektor matrycy płaszczyzny ogniskowej, jak i wewnętrzny detektor tellurku rtęciowo-kadmowego w mikroskopie za pomocą ciekłego azotu, zamontuj szkiełko próbki na stoliku mikroskopu do obrazowania FTIR po upewnieniu się, że światło widzialne jest włączone, skup się na próbce za pomocą programu do przechwytywania próbki.

Następnie otwórz pakiet oprogramowania i kliknij przycisk zbierz. Kliknij opcję diagnostics (diagnostyka) i wybierz spektrometr liniowy. Następnie kliknij Ustawienia obrazowania, aby skalibrować system.

W zakładce optyka wybierz detektor jako detektor mikroskopu naziemnego po lewej stronie, a następnie wybierz transmitancję w trybie optyki. Kliknij ustawienia, co otworzy okno sterowania lansjerem dla trybu transmisji w sterowaniu lancerem. Kliknij na RAW za pomocą joysticka sterującego sceną i obserwuj, jak podgląd na żywo obrazu interferogramu FTIR przesuwa się do czystego obszaru slajdu.

W tym momencie dostosuj czas całkowania do około 8 000 zliczeń i celu dolnego kondensatora. Aby zwiększyć liczbę zliczeń do maksimum, obserwuj kształt prawego dolnego obrazu w kontrolce lansjera, aby upewnić się, że ma wygląd gaussowski i jest stosunkowo jednolity. Po dostosowaniu czasu całkowania, ponownie przesuń stolik, aby znaleźć kawałek tkanki ze strukturą, najlepiej krawędź tkanki.

Następnie udoskonal ostrość obrazu. Za pomocą joysticka sterowania sceną przejdź do czystego obszaru slajdu. Naciśnij przycisk kalibracji po dokonaniu wyboru.

Dobra, dwa razy W zakładce optyka wybierz detektor równa się MCT i detektor mikroskopowy równa się prawy. Następnie kliknij przycisk konfiguracji. Gdy interferogram FTIR zostanie zobrazowany na ekranie, kliknij znajdź środkową serię i w porządku.

W zakładce optyka wybierz ponownie detektor równa się detektor mikroskopu naziemnego równa się lewy. Następnie wybierz pozycję konfiguracji. Po upewnieniu się, że obraz nadal znajduje się w czystym obszarze w sterowaniu lansjerem, kliknij ponownie kalibruj i okej.

Aby zebrać obraz FTIR tła, przejdź do zakładki elektronika i wybierz odpowiednią rozdzielczość spektralną, która zazwyczaj wynosi cztery lub osiem odwrotnych centymetrów. W przypadku tkanki przejdź do zakładki tło i wpisz 128 w skanach do coad. Wybierz przycisk nowego pliku i umieść plik tła w odpowiednim folderze.

Po kliknięciu tła i oczekiwaniu na zakończenie skanowania potwierdź, gdzie zapisać plik. Kliknij region na tle, obraz FTIR i sprawdź spektrum. W tym momencie kliknij setup i w sterowaniu lansjerem użyj widoku IR na żywo.

Aby znaleźć obszar zainteresowania, przejdź do zakładki elektronika i wpisz liczbę skanów do coad. Następnie kliknij skanowanie Aby przygotować mikroskop FTIR do analizy w wysokiej rozdzielczości, przykręć obiektyw o dużym powiększeniu w miejsce obiektywu 15x. W tym momencie otwórz oprogramowanie do przetwarzania i analizy obrazu i załaduj plik z danymi IR.

Zastosuj algorytm korekcji linii bazowej do danych IR, wybierając narzędzia spektralne, a następnie przewiń w dół i kliknij widma absorpcyjne. Gdy pojawi się menu podręczne, wybierz opcję Korekcja linii bazowej. Wykonaj normalizację widma, wybierając znormalizowane widma w opcjach menu widm chłonnych.

Następnie obserwuj listę wszystkich częstotliwości podczerwieni zebranych na obrazie. Kliknij częstotliwości, które odpowiadają określonym biomolekułom, aby obserwować obraz tkanki przy wybranej częstotliwości i tworzyć obrazy, które umożliwią wizualizację różnych składników biomolekularnych. Kliknij narzędzia spektralne, a następnie wybierz współczynniki wysokości pików.

Zeskanuj odpowiedni sąsiedni wycinek barwionej tkanki za pomocą oddzielnego systemu obrazowania całych preparatów, który rejestruje obrazy w jasnym polu wraz z obrazem w podczerwieni. Przywołaj cyfrowy obraz barwionej tkanki za pomocą programu do obrazowania widzialnego. Następnie kliknij prawym przyciskiem myszy na obraz w obszarze zainteresowania i wybierz profil Z, aby podać informacje spektralne na wybranym pikselu.

Aby zaznaczyć określone piksele na obrazie, kliknij obraz prawym przyciskiem myszy i wybierz narzędzie ROI. Utwórz klasy, które mają być oznaczone, na przykład klasy kapsułowe Meuma i Bowmana. Następnie wybierz punkt typu ROI, a następnie wybierz klasę, dla której chcesz wybrać piksele i narysuj odpowiednie piksele na obrazie IR.

Wyprowadź średnie widma dla każdej z klas za pomocą narzędzia średniego zwrotu z inwestycji. Na koniec porównaj uzyskane widma przez wykreślenie. W oprogramowaniu do tworzenia wykresów obrazowanie FT IR pozwala na uzyskanie obrazów w podczerwieni tkanki, które mogą dawać różne kontrasty w zależności od częstotliwości IR.

Każdy piksel składa się z całego spektrum z różnymi pikami odpowiadającymi różnym biomolekułom, które mogą dostarczyć informacji o właściwościach biochemicznych typów komórek lub stanach chorobowych. Oprzyrządowanie FTIR ewoluowało od trybu pomiaru w trybie mapowania pojedynczego punktu przy użyciu nieprzezroczystych apertur do trybu obrazowania z wykorzystaniem obiektywów ziarnistych CASA wykorzystujących obiektyw oświetlający w połączeniu z obiektywem zbierającym w trybie transmisji lub pojedynczy obiektyw, który zarówno oświetla, jak i zbiera w trybie odbicia. Postępy w rozdzielczości przestrzennej w obrazowaniu tkanek mają kluczowe znaczenie, ponieważ można teraz identyfikować typy komórek i struktury tkankowe.

W tym przypadku jednostki funkcjonalne kłębuszków nerkowych obserwowano w rdzeniu tkanki wątroby. Możliwe jest uwidocznienie hepatocytów i regionów naciekającego zwłóknienia, które dzieli dwa odrębne obszary dysplazji i niedysplastycznej marskości wątroby. Zwiększona rozdzielczość przestrzenna pozwala na wyodrębnienie określonych cech strukturalnych, które mogą być chemicznie modyfikowane przez chorobę, zanim pojawią się zmiany histologiczne.

Zmiany biochemiczne w strukturach kłębuszków nerkowych, takich jak torebka Bowmana, meum, błona podstawna kłębuszków nerkowych i błona podstawna kanalików, można zidentyfikować za pomocą obrazowania FTIR. Podczas wykonywania tej procedury należy pamiętać o całkowitym usunięciu slajdów przed skanowaniem Postępując zgodnie z tą procedurą. Inne metody, takie jak tradycyjna analiza immunochemiczna, można przeprowadzić na tym samym fragmencie tkanki w celu skorelowania sygnatur biochemicznych i morfologii tkanki.

Nasze pierwsze osiągnięcie, technika ta utorowała drogę naukowcom zajmującym się obrazowaniem tkanek do zbadania statusu biomolekularnego typów małych komórek i struktur w tkankach. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś mieć podstawową wiedzę, jak uzyskać obrazy FTR w wysokiej rozdzielczości próbek tkanek i wykonać podstawową analizę spektralną. Nie zapominaj, że praca z ciekłym azotem może być bardzo niebezpieczna, a podczas wykonywania tej procedury należy zawsze zadbać o środki ostrożności, takie jak rękawice kriobezpieczne i okulary ochronne.

Explore More Videos

Słowa kluczowe: Obrazowanie spektroskopowe FT-IR Obrazowanie w wysokiej rozdzielczości Analiza tkanek Informacje biochemiczne Biomolekuły Klasyfikacja typów komórek Klasyfikacja typów chorób Bez znaczników Bez zakłóceń Patologia Wątroba Nerki

Related Videos

Obrazowanie w dziedzinie częstotliwości optycznej próbek do resekcji płuc ex vivo: uzyskanie obrazu jeden do jednego z korelacją histopatologiczną

14:21

Obrazowanie w dziedzinie częstotliwości optycznej próbek do resekcji płuc ex vivo: uzyskanie obrazu jeden do jednego z korelacją histopatologiczną

Related Videos

14.4K Views

Trójwymiarowe obrazowanie nocyceptywnych śródnaskórkowych włókien nerwowych w biopsjach ludzkiej skóry

11:22

Trójwymiarowe obrazowanie nocyceptywnych śródnaskórkowych włókien nerwowych w biopsjach ludzkiej skóry

Related Videos

13.4K Views

Uniwersalna ręczna trójwymiarowa sonda do obrazowania optoakustycznego do angiografii tkanek głębokich i funkcjonalnych badań przedklinicznych w czasie rzeczywistym

09:56

Uniwersalna ręczna trójwymiarowa sonda do obrazowania optoakustycznego do angiografii tkanek głębokich i funkcjonalnych badań przedklinicznych w czasie rzeczywistym

Related Videos

11K Views

Multimodalna platforma obrazowania i spektroskopii mikroendoskopii z wiązkami włókien do nieinwazyjnej analizy tkanek in vivo

10:35

Multimodalna platforma obrazowania i spektroskopii mikroendoskopii z wiązkami włókien do nieinwazyjnej analizy tkanek in vivo

Related Videos

8.1K Views

Obrazowanie nanoskopowe skrawków tkanek ludzkich poprzez ekspansję fizyczną i izotropową

09:11

Obrazowanie nanoskopowe skrawków tkanek ludzkich poprzez ekspansję fizyczną i izotropową

Related Videos

7.9K Views

Dwukolorowe, stymulowane rozpraszaniem Ramana w czasie rzeczywistym mózgu myszy w celu diagnozowania tkanek

10:57

Dwukolorowe, stymulowane rozpraszaniem Ramana w czasie rzeczywistym mózgu myszy w celu diagnozowania tkanek

Related Videos

3.3K Views

Szybka mikroskopia fotoakustyczna w ultrafiolecie do obrazowania histologicznego z wirtualnym barwieniem wspomagana przez głębokie uczenie

09:31

Szybka mikroskopia fotoakustyczna w ultrafiolecie do obrazowania histologicznego z wirtualnym barwieniem wspomagana przez głębokie uczenie

Related Videos

3.3K Views

Poszerzanie wiedzy na temat mikrośrodowiska guza za pomocą obrazowania spektrometrią mas próbek tkanek utrwalonych w formalinie i zatopionych w parafinie

06:47

Poszerzanie wiedzy na temat mikrośrodowiska guza za pomocą obrazowania spektrometrią mas próbek tkanek utrwalonych w formalinie i zatopionych w parafinie

Related Videos

2.3K Views

Optyczna fototermiczna hybrydyzacja in situ z fluorescencją w podczerwieni (OPTIR-FISH)

04:07

Optyczna fototermiczna hybrydyzacja in situ z fluorescencją w podczerwieni (OPTIR-FISH)

Related Videos

1.6K Views

Korelacyjne metodologie obrazowania spektroskopii optycznej i spektrometrii mas w celu wizualizacji dystrybucji leku w skrawku tkanek miękkich

07:05

Korelacyjne metodologie obrazowania spektroskopii optycznej i spektrometrii mas w celu wizualizacji dystrybucji leku w skrawku tkanek miękkich

Related Videos

1.1K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code