17 lutego 2015
Ten artykuł opisuje metodę mechanicznego uszkodzenia naczynia krwionośnego u zarodków danio pręgowanego. Ten model urazów stanowi platformę do badania hemostazy, stanów zapalnych związanych z urazami i gojenia się ran w organizmie idealnie nadającym się do mikroskopii w czasie rzeczywistym.
Ogólnym celem poniższej procedury jest stworzenie mechanicznego uszkodzenia naczynia w zarodkach danio pręgowanego. Osiąga się to poprzez nakłucie żyły rozdętej zarodka danio pręgowanego za pomocą szpilki do minucji. Następnie hemostazę ocenia się, mierząc czas, w którym krew aktywnie wypływa z rany.
Następnie przeprowadzana jest mikroskopia poklatkowa w celu wizualizacji aspektów gojenia się ran, takich jak naprawa naczyń. Wyniki pokazują, że mechaniczne uszkodzenie naczyń krwionośnych w zarodkach danio pręgowanego może być wykorzystane do powtarzalnego pomiaru aspektów hemostazy i gojenia się ran, takich jak czas krwawienia i czas potrzebny do przywrócenia przepływu krwi. Główną przewagą tej techniki nad mysimi i innymi standardowymi modelami urazów jest to, że w zarodku danio pręgowanego stan zapalny, hemostaza i naprawa mogą być łatwo uwidocznione za pomocą mikroskopii w czasie rzeczywistym.
Aby rozpocząć, włóż szpilkę do drobiazgów do uchwytu na szpilki i zaciśnij szpilkę za pomocą drobnych kleszczyków. Ostrożnie zegnij końcówkę szpilki, aby utworzyć lekki haczyk do manipulowania i stabilizowania zarodka podczas urazu. Użyj szczypiec półcalowych z igłami, aby zgiąć koniec półcalowej igły o rozmiarze 28 zamontowanej na strzykawce insulinowej.
Następnie przygotuj zarodki danio pręgowanego, ustawiając pary lęgowe i zbierając jaja w wodzie z jajami, jak pokazano wcześniej. Gdy zarodki osiągną osiem do 24 godzin po zapłodnieniu lub HPF, dodaj PTU do wody jajecznej, aby zapobiec melonowi po dwóch dniach. Po zapłodnieniu lub DPF użyj cienkich kleszczyków do usunięcia powłoki zarodków, znieczul zarodki przy użyciu końcowego stężenia 0,02% buforowanej triki, aby mechanicznie uszkodzić zarodkowe naczynia krwionośne.
Użyj pipety transferowej, aby umieścić znieczulone zarodki na szkiełku depresyjnym. Opierając się na mikroskopie preparacyjnym z krótką, płaską stroną igły strzykawkowej w ręce dominującej, ustaw zarodek na boku z powierzchnią brzuszną skierowaną w stronę przeciwną do igły. Teraz umieść szpilkę minucji z końcówką skierowaną bezpośrednio na brzuszną powierzchnię ryby za otworem moczowo-płciowym.
Trzymaj go pod niewielkim kątem, aby zakrzywiona końcówka była w stanie przebić się przez perydermę bezpośrednio do żyły rozpieszczonej. Następnie za pomocą igły strzykawkowej manipuluje zarodkiem. Użyj szpilki do minucji, aby przekłuć żyłę rozpieszczoną, wkłuwając zarodek w szpilkę, aby lekko zaczepić szpilkę w żyle za pomocą igły strzykawki.
Odciągnij zarodek od szpilki do drobiazgów, aby utworzyć małe rozdarcie w naczyniu. Udana kontuzja spowoduje natychmiastowe krwawienie z żyły. Do tej procedury wybieraj tylko zarodki z widocznie krążącymi krwinkami.
Mając szpilkę do drobiazgów na miejscu, wyciągnij ją z naczynia, a gdy tylko będzie można zobaczyć utratę krwi z rany, uruchom minutnik Gdy utrata krwi z rany ustaje, zatrzymaj minutnik i zapisz całkowity czas jako czas krwawienia, jeśli krzepnięcie jest zahamowane, zapisz czas, w którym nie ma już widocznie krążących komórek. Przenieś zwierzęta po urazie do naczyń obrazowych ze szklanym dnem w celu mikroskopii i usuń większość wody z jaj, a następnie za pomocą 0,3 do 1,2% niskotopliwych aeros uzupełnionych 0,02% trica i podgrzanych do temperatury od 42 do 45 stopni Celsjusza. Przykryj zarodki.
Użyj kleszczy, aby ułożyć zarodki na bokach. Po ostygnięciu aro napełnij naczynie 0,02% trica w wodzie jajecznej. Użyj fluorescencji epi w jasnym polu lub mikroskopii konfokalnej, aby uzyskać obrazy po obrazowaniu.
Użyj kleszczy, aby przenieść zarodki z powrotem do wody z jaj. Ten film pokazuje mechaniczne uszkodzenie naczynia, które zostało wykonane na zarodku PF 2D. Można zaobserwować aktywną utratę krwi, po której następuje ustanie krwawienia, co skutkuje szybką i niezawodną reakcją krzepnięcia, mierzoną czasem do ustania krwawienia, w celu określenia, czy można zmierzyć różnice w odpowiedzi krzepnięcia.
Antykoagulant odyny podawano zarodkom przez wstrzyknięcie do przewodu QVA bezpośrednio przed zranieniem. Jak pokazano tutaj, lek znacznie wydłużył czas krwawienia w porównaniu z kontrolą pojazdu. Na tym filmie dowody uszkodzenia naczyń krwionośnych i krzepnięcia można zobaczyć natychmiast po urazie przy użyciu linii transgenicznych dla markerów śródbłonka i czerwonych krwinek.
Obrazy były rejestrowane co pięć minut przez okres 12 godzin, pokazując różne etapy gojenia się rany. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak spowodować uraz mechaniczny u zarodków zebry.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy artykuł opisuje metodę wywoływania mechanicznego uszkodzenia naczynia w embrionach rybek danio-zebrafish. Ten model uszkodzenia stanowi platformę do badania hemostazy, stanu zapalnego związanego z urazem oraz gojenia ran w organizmie idealnie nadającym się do mikroskopii w czasie rzeczywistym.
Mechaniczne uszkodzenie naczyń w embrionach danio-ostrobramkowego stanowi powtarzalną platformę do obrazowania w czasie rzeczywistym, służącą do badania hemostazy i naprawy naczyniowej w kontekście całego organizmu. Model ten wspiera walidację celów oraz ograniczanie ryzyka mechanistycznego w badaniach nad zakrzepicą i gojeniem ran, umożliwiając ilościowy pomiar dynamiki krwawienia i regeneracji naczyń. Przezroczystość optyczna oraz podatność genetyczna pozwalają na bezpośrednią wizualizację odpowiedzi komórkowych, co zwiększa pewność prognostyczną w programach wczesnego odkrywania leków.
Metoda ta wpisuje się w kontinuum odkrywania leków, od walidacji celu, przez identyfikację związku wiodącego, aż po przedkliniczne badania skuteczności, w szczególności w obszarach terapeutycznych hematologii i naczyniowo-krążenia.